肌萎缩侧索硬化症体外模型中突触钙动力学的荧光成像

0 次观看3:18 分钟 • June 17th, 2025

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取在含有培养基的涂层玻璃底培养皿上培养的原代啮齿动物皮质神经元。

这些细胞表达遗传编码的 ALS 相关蛋白和钙生物传感器。

低氯化钾缓冲液代替培养基。

孵育以维持静息神经元活动和基线钙水平。

培养皿安装在共聚焦显微镜载物台上并定位灌注管。

使用明场照明,聚焦于神经元,然后切换到荧光成像。

使用显微镜的激光,激发生物传感器并记录荧光发射以确定基线细胞内钙水平。

接下来,用高氯化钾缓冲液灌注培养皿。

高钾浓度使神经元去极化,在突触前末端打开电压门控钙通道。这允许钙流入,从而启动神经元突触活动。

增加的细胞内钙与生物传感器结合,引起构象变化,增强荧光。

继续记录荧光以测量细胞内钙水平的实时变化,揭示神经元突触活动。

GCaMP6m转染后48小时,将原代啮齿动物皮质神经元与低氯化钾ACSF孵育15分钟。然后将培养皿安装在成像平台上,并使用 FITC 滤光片和 20 倍或 40 倍物镜可视化 GCaMP6m 荧光。选择成像场并进行完美聚焦后,拍摄具有明场 FITC 和荧光标记通道的单个静止图像以标记神经元边界。

接下来,在采集软件中启动"立即运行"并进行三到五分钟的基础记录。然后如前所述将含有50毫摩尔氯化钾的ACSF灌注到神经元中,并记录五分钟。当图像采集停止时,保存实验并使用共聚焦软件进行数据分析。

对于图像分析,打开延时图像和共聚焦软件,然后单击图像,然后单击处理,然后单击对齐当前文档来对齐图像。然后选择"与第一帧对齐"。使用 ROI 选择工具沿神经突选择感兴趣区域,并标记代表背景荧光强度的 ROI。接下来,从时间测量面板启动测量功能,以测量所选 ROI 随时间变化的原始荧光。测量后,将原始荧光强度导出到电子表格软件。

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最后更新:1 八月 2026