2011年9月12日
在脉冲施加过程中改变电场方向,可使电穿孔介导的基因转染效率提高约两倍,同时不影响细胞活力。基因转染效率的提升是由于细胞膜上具备DNA进入能力的区域面积增加所致。
基因电穿孔转移是一种通过施加短暂而强烈的电脉冲将基因导入细胞的物理方法。在成功的基因电穿孔转移过程中,涉及多个步骤:DNA与细胞膜形成复合物、DNA跨过电穿孔后的膜进行转位、DNA从细胞质转移至细胞核,以及基因的表达。为了实现最高的基因转染效率,常采用不同的电脉冲方案。
其中一种方法是在脉冲递送过程中改变电场方向。在本视频中,我们展示了当所有脉冲沿同一方向递送与改变电场方向递送时,基因电穿孔转染效率的差异。本实验以中国仓鼠卵巢细胞(CHOK1)进行。
按照以下步骤操作:将细胞在培养箱中的培养瓶内培养24小时。实验当天,使用含0.25%胰蛋白酶的EDTA溶液制备细胞悬液,并计数细胞;在4°C条件下,以1000转/分钟离心5分钟,收集细胞沉淀,然后将细胞沉淀重悬于ISO OSM Miller磷酸钠缓冲液中,调整细胞密度至每毫升500万个细胞。将样品转移至合适的培养皿中,使细胞在带有集成电极的移液枪头中暴露于电场,电极连接至高压原型发生器。
这些电极可在不同方向上施加相对均匀的电场。电极尖端和发生器由电气工程生物控制论学院实验室研制。卢安那大学将质粒 E-G-F-P-N1 以每毫升 10 微克的浓度加入细胞悬液中。
将细胞与质粒DNA充分混合,在室温下孵育2至3分钟,然后施加电脉冲。用带有集成电极的移液器吸头吸取100微升细胞悬液。在本实验中,使用高压原型发生器施加一串八个矩形脉冲,针对不同的电场方案,在第一个方案中采用这些参数。
所有脉冲均沿同一方向施加,而在第二种方案中,通过改变电场方向来施加脉冲。第二种方案只能使用能够施加不同方向电脉冲的专用脉冲发生器。脉冲施加后,立即将细胞从移液管尖转移至六孔板中,并加入胎牛血清。
将样品体积的25%在37摄氏度下孵育细胞5分钟。为使细胞膜重新封闭,在6孔板中每份样品加入2毫升HAMF 12,并在37摄氏度、湿润的5%CO2气氛中孵育细胞24小时。基因电转效率通过脉冲施加后24小时表达GFP的细胞百分比来确定。
使用成像软件在荧光显微镜下观察细胞。将激发波长设置为 488 纳米,并选择适当的带通滤光片以获取绿色荧光图像,用于检测表达 GFP 的细胞。以 20 倍放大倍数采集至少五张明场对比度和绿色荧光图像。
通过物镜放大倍数在明场对比图像中计数细胞,并在绿色荧光图像中计数表达GFP的细胞,将表达GFP的细胞数量除以每幅对应图像中总细胞数量,从而计算基因电转效率的百分比。当所有电脉冲均沿同一方向施加,以及通过改变电场方向施加电脉冲时,表达GFP的细胞百分比随之变化。结果表明,改变电场方向后,表达GFP的细胞百分比显著增加。
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本研究探讨了通过电穿孔进行基因转染的方法,重点阐述了电场方向对转染效率的影响。研究结果表明,在脉冲施加过程中改变电场方向可使基因转染率提高一倍,同时不损害细胞活力。
在电穿孔过程中优化电场方向可提高质粒基因转导效率,为早期靶点验证和先导化合物筛选工作流程中提升转染效率提供了一种非病毒策略。该方法通过扩大细胞膜的通透性以增加DNA进入细胞,同时不损害细胞活力,从而在机制层面降低风险,提高临床前模型的预测可信度。该技术可实现可重复、可放大的基因递送,适用于生物制药研发中的检测方法开发和表型筛选应用。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物鉴定的发现连续过程,在此过程中需要高效的基因递送技术,以评估靶点功能并调控细胞模型中的信号通路。