November 16th, 2011
描述一个分析,定量分析转化生长因子(TGF)-β诱导的三维胶原凝胶侵袭。这个实验需要的细胞株MCF10A系列,代表不同阶段乳腺癌的发展优势。通过这种方法可以用于其他细胞系,并可能被用来调查其他潜在的激活或入侵抑制剂。
以下实验的总体目标是在三维环境中测量 TGF β 诱导的侵袭的潜在调节因子的影响。这是通过首先制作细胞的球状体来实现的。然后将 PHE 嵌入胶原蛋白中,从而提供 3D 环境。
接下来,对侵袭区域进行量化。为了确定治疗对 TGF β 诱导的侵袭的影响,结果表明 TGF-β 通路的调节剂会影响 3D 胶原蛋白基质中类固醇的侵袭特性。与现有方法(如 scratch ass essay)相比,这种技术的主要优点是它更好地概括了 3D 环境。
这种方法可以帮助回答 T meter 领域中的关键问题,例如鉴定参与教师 β 诱导入侵的新基因。为了制备用于 TGF β 诱导侵袭测定的甲基细胞溶液,首先将 6 克甲基纤维素高压灭菌在含有磁力搅拌的 500 毫升瓶中。将甲基纤维素溶解在 250 毫升预热的不含血清的 D-M-E-M-F 12 中 20 分钟,第二天加入 250 毫升含有 10% 马血清混合物的室温 D-M-E-M-F 12 过夜,在 4 摄氏度下以 5, 000 G 离心 2 小时澄清溶液。
将透明、高粘度的溶液转移到 4 摄氏度的新试管中,直到用于培养 phe。使用 10 毫升制备的甲基细胞原液和 40 毫升生长物制备 20% 甲基细胞溶液。培养基用 PBS 洗涤 MCF 10 A 细胞两次。
加入 0.1% 胰蛋白酶并在 37 摄氏度下孵育细胞,直到所有细胞分离。将细胞重悬于 10 mL生长培养基中,并使用细胞计数仪对细胞进行计数。在 20% 甲基细胞中制备每毫升 10, 000 个细胞的悬浮液。
对于每种测试条件,将 100 微升细胞悬液添加到 96 孔圆底悬吊板的 12 个孔中。将细胞在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳的加湿培养箱中孵育过夜。第二天检查球体的形成。
球体将在 1 到 3 天内准备好使用。在冰上制备 8 毫升胶原蛋白、1 毫升 10 XPBS、1 毫升 0.1 正常氢氧化钠和 3 滴 0.1 正常盐酸的溶液。在 pH 试纸上点样,检查溶液的 pH 值为 7.4。
如果 pH 值超出范围,请调整 pH 值。将 50 微升中和胶原蛋白溶液加入 96 孔板的孔中,在 37 摄氏度下孵育约 90 分钟或直到胶原蛋白凝固。对于每个待测配体,在冰上制备甲基细胞胶原配体溶液。
从每次治疗 1 毫升胶原蛋白溶液开始,然后加入 20 纳克 TGF β,最终浓度为每毫升 5 纳克,通过涡旋混合。然后加入 1 毫升甲基细胞溶液,使最终体积为 2 毫升并涡旋。再次,要嵌入类固醇,放置一个 200 微升的移液器吸头,在 200 微升移液器上,该吸头的吸头被切断了 5 毫米或更多。
然后用移液管拿起一个 s 球体。小心地将培养基分配到空板中,同时确保 S 球体保持在吸头内。不要松开柱塞。
取 100 微升胶原蛋白甲基细胞混合物,并将 S 球状胶原蛋白混合物分配到 96 的胶原蛋白包被孔中。孔板为每种条件填充 12 个孔。让胶原蛋白在 30 摄氏度下凝固至少 37 分钟,然后用 200 微升的尖端去除气泡。
通过将 4 微升 SB 4 31 542 储备溶液加入 1 毫升含有 1.6% 马血清的 D-M-E-M-F 12 中,制备 40 微摩尔的 TGF β 抑制剂 SB 4 31 542 溶液。扩散后,向每个孔中加入 50 微升含抑制剂的培养基。抑制剂的最终浓度为 10 微摩尔。
在显微镜下使用 40 倍放大倍率拍摄类固醇的照片,然后在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳的加湿培养箱中孵育。孵育两天后,再次拍照,并通过在 Adobe Photoshop 中打开球状体图片来测量侵入类固醇的面积。extended 并选择快速选择工具。
将光标拖动到椭球体上时,鼠标指针将变为带加号的圆圈。软件将识别椭球体的边界。如果选择了类固醇之外的区域,则通过按 alt 键或使用负数选择工具(工具栏中的负号)来排除该区域。
将光标拖动到错误选择的区域上,软件会将其从选择中删除。如果取消选择椭球体中的某个区域,则可以通过在按住 Shift 键的同时拖动来再次包含该区域。要更准确地工作,请通过更改工具栏中的画笔直径来调整鼠标指针的大小。
要计算所有活动选择项的面积,请在菜单栏中选择 analysis measure (分析度量)。将出现一个测量记录窗口,以像素为单位显示文件名和选择区域。如果在一个椭球体内测量多个选择,则第一行将显示所有区域和下面行的总和。
它将列出各个选择的值。将数据导出为文本文件并在 Excel 中打开它。此处显示了 MCF 10 A 1、正常乳腺上皮细胞、HAS 转化的 MCF 10 A neo T 细胞和 M 2 衍生的 MCF 10 CA one A 的 S 球体测定的实例。
M1 细胞在没有刺激的情况下仅表现出微弱的侵袭,但在 TGF β 刺激后侵袭明显更好。相比之下,RAs 转化的 M1 衍生物 M 2 在没有添加刺激的情况下有效侵袭,并且进一步增加了 4 到 5 倍。TGF β 处理后,M 4 细胞在无 TGF β 版和有 TGF β 版的情况下均表现出最强的侵袭性。
使用 Photoshop 获得该实验结果的图形表示,在本例中所示,SB 4 31 5 42 一种 A TP 类似物和 TGF β 受体 1 激酶活性的选择性抑制剂,以及在 1 型 B 受体中具有活性和在激酶 7 受体样受体中具有活性,被添加到细胞培养物 SB 4 31 5 42 中, TGF β 诱导的 M1、M 2 和 M 4 细胞的侵袭有效抑制,表明 TGF-β 诱导的侵袭是 TGF-β 受体 1 激酶依赖性的。此外,PHE 的基础侵袭受到强烈抑制。该实验结果的图形表示再次使用 Photoshop 创建,如下所示。
在此程序之后,可以执行其他方法,如 RNA 分离或蛋白质分离,以回答其他问题,例如表达哪些基因或表达哪些蛋白质。看完这个视频,你应该对如何找到 tavita 诱导的侵袭的新调节剂有一个很好的了解。
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本文描述了一种用于定量测量转化生长因子(TGF)-β诱导的MCF10A细胞系在三维胶原凝胶中侵袭的测定方法。该方法可以适用于其他细胞系,以探索各种侵袭的激活剂或抑制剂。
This assay enables quantitative measurement of TGF-β-induced invasion in a 3D collagen matrix, addressing a key challenge in modeling metastatic potential in breast cancer. By using the MCF10A isogenic series, it supports target validation and mechanistic de-risking in early discovery. The method improves predictive confidence by recapitulating in vivo-like invasion dynamics better than 2D assays.
The assay fits within the discovery continuum from target validation to lead identification, offering a 3D-functional readout that bridges phenotypic screening and mechanistic follow-up.