2011年9月28日
microRNA(miRNA)是基因表达的重要调控因子,已被证明在多种生物学过程中发挥作用。为了更深入地理解miRNA与非翻译区(UTR)之间的相互作用,我们构建了一个全基因组范围的3' UTR荧光素酶报告系统文库,并结合了一种新型荧光素酶基因及检测试剂——LightSwitch系统。
本实验的总体目标是通过将报告基因载体与microRNA模拟物共转染,以验证在人源3'非翻译区(3' UTR)中预测的microRNA靶点。该目标的实现首先需要设计实验方案,包括选择合适的细胞系、选定microRNA模拟物,以及相应的实验组和对照组3' UTR GoClone报告基因载体。转染前约24小时,将贴壁细胞接种培养。随后,将每个实验组或对照组的3' UTR GoClone报告基因载体与microRNA模拟物或非靶向对照共转染入细胞,并进行24至48小时的孵育。最后一步是直接向细胞培养物中加入LightSwitch荧光素酶检测试剂,并使用酶标仪读取发光信号。
最终可以通过报告基因检测技术测量荧光素酶信号的抑制情况,获得结果以显示哪些人类3'非翻译区(3' UTR)是特定microRNA的作用靶点。该方法可帮助microRNA研究人员回答关键问题,因为它提供了一种功能性检测手段,用于在活细胞中验证预测的microRNA与3' UTR靶点之间的相互作用。实验设计首先需要选择合适的高转染效率且贴壁良好的细胞系;基于microRNA模拟物的检测在内源性microRNA表达水平较低的细胞系中效果最佳。
然后选择microRNA模拟物(mimic)与非靶向对照(non-target control)配对,包含非靶向对照至关重要,因为共转染质粒和小RNA寡核苷酸所获得的信号低于单独转染质粒时的信号。接下来,从SwitchGear基因组范围文库中选择预先克隆的3'非翻译区(3' UTR)GoClone报告基因构建体。进入在线目录并点击UTR搜索按钮。
输入基因名称、基因符号或登录号列表后,搜索结果将提供载体信息、序列信息以及库存状态。接下来选择对照报告基因载体。应选择带有3'非翻译区(3'UTR)的对照载体,这些区域不太可能被所选的microRNA靶向,例如管家基因的3'UTR或随机片段,以排除microRNA过表达对细胞整体健康状况或检测信号产生的非特异性影响。
还可考虑在第1天使用合成的microRNA靶标报告基因作为模拟物活性的阳性对照,接种低传代贴壁细胞,使其在24小时后转染时融合度达到80%至100%。使用高融合度的细胞是获得良好实验结果的关键。将细胞以100微升总体积接种于白色96孔组织培养板中。
同时进行。在第2天(细胞接种后24小时),于透明培养板中观察细胞密度,以达到合适的汇合度。准备进行转染前的解冻步骤。
在室温下解冻报告基因构建体和微小RNA。解冻后充分混匀,将微小RNA用无RNA酶的水稀释至工作浓度为2 µM。Goone血浆DNA的浓度为30 ng/µL,无需进一步稀释。配制转染混合物时,需考虑每种DNA-RNA组合应设三个重复,总体积应根据所进行的实验数量按比例放大。
通过将每转染 9.85 µL 无血清培养基与 0.15 µL DharmaFECT DUO 混合,制备转染试剂混合物。将该混合物在室温下孵育 5 分钟。然后,通过将每项检测 3.33 µL 的 GoClone 报告质粒与适量 microRNA 模拟物混合,以达到所需的最终浓度,制备 DNA-RNA 混合物。
用无血清培养基将体积补至10微升。接着,将10微升转染试剂混合物与每种DNA-RNA混合物的10微升混合,并充分混匀。每个检测的最终体积为20微升。
盖好培养板,室温孵育20分钟。孵育结束后,每孔加入80微升预热的无抗生素完全培养基,使每孔总体积达到100微升,从而在检测中获得10至15纳摩尔的终模仿浓度。
最后一步,小心吸出接种细胞各孔中的培养基,每孔加入 100 微升相应的最终转染混合液。将培养板放回培养箱,孵育 24 至 48 小时。大多数转染混合物在 24 小时内即可产生显著结果。
48 小时的孵育期将导致信号的孔间差异增大。在转染后第 3 天(即转染后 24 小时),使用 LightSwitch 荧光素酶检测试剂进行荧光素酶检测;细胞可立即检测,或在 -80 °C 冻存后择时检测。增加冻融循环可增强细胞裂解,提高报告基因信号。将转染后的细胞板恢复至室温。
然后根据试剂盒说明书配制光开关荧光素酶检测试剂,并倒入无菌储液槽中。使用多通道移液器将100 µL光开关检测试剂直接加入每个样品孔中。将样品置于白色96孔板中,盖上盖板,避光并在室温下孵育30分钟。孵育结束后进行后续操作。
使用酶标仪对每孔进行两秒的读数,通过共转染let-7a模拟物或非靶向对照,在HT 1080细胞中检测LE7A对3'非翻译区(3'UTR)荧光素酶报告基因活性的敲低效果。分析结果时,将每种构建体的非靶向对照信号设为100%。
通过将特定 micro RNA 模拟物的信号除以非靶向对照信号,计算敲低百分比。任何给定的 micro RNA 模拟物都可能对整体细胞活力或检测信号产生非特异性影响,需对此类非特异性效应进行校正。将实验性 UTR 靶标观察到的敲低效果与管家基因或随机对照 T 观察到的敲低效果进行比较,如下图所示。
PONC 和 ARID3B 人类 3' 非翻译区(UTR)是 let-7a 微小 RNA 的靶点。在存在 let-7a 微小 RNA 模拟物的情况下,PONC 和 ARID3B 基因的 3' UTR 报告系统信号显著被抑制,而管家基因和随机序列 UTR 的信号则不受影响。观看本视频后,您应能够充分掌握如何在活细胞中成功共转染微小 RNA 模拟物与 3' UTR 报告质粒,并利用化学发光仪检测信号,以评估靶向抑制效应。
本研究聚焦于微小RNA(miRNA)通过与3'非翻译区(UTR)相互作用来调控基因表达的作用机制。为此,开发了一种新型的荧光素酶检测系统——LightSwitch,用于在人源细胞中验证这些相互作用。
microRNA靶标相互作用的功能验证对于降低早期发现阶段治疗假设的风险至关重要。LightSwitch荧光素酶报告基因检测系统能够在贴壁细胞中对miRNA与3'非翻译区(3'UTR)的相互作用进行定量且可重复的测量,有助于提高靶标可信度并支持预测性建模。该方法可在推进至先导化合物筛选或表型筛选研究之前,优先选择具有机制证据的靶标。
该方法适用于早期发现阶段,可在先导化合物筛选或检测方法开发之前,将计算靶点预测与功能验证相衔接。