Name: 热红外成像来检测迟发性肌肉酸痛 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: 了解如何使用热红外成像技术检测迟发性肌肉酸痛（DOMS）。本研究通过对比运动前后24小时和48小时的皮肤温度变化，提供客观量化的肌肉疼痛评估方法，帮助运动生理学研究获得更精确的数据。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们希望感谢辉瑞制药公司提供的合同（WS1763368）对本工作的支持。我们还要感谢沙特阿拉伯高等教育部（MOHE）给予的支持。

1. 实验操作
<ol>
 <li>本实验所关注的肌肉为肘屈肌（肱二头肌）。</li>
 <li>为每位参与者测量肌肉力量，以确定适合其个体的适当阻力。该阻力通过测试每位参与者的最大阻力（RM）来确定。</li>
 <li>在进行RM测试时，我们使用一个与计算机连接的应变仪装置，该装置通过BioPac（DA-100C）生物电放大模块（BioPac Systems, Goleta, CA）进行信号采集。该模块连接至MP-100模拟-数字转换器，采样频率为每秒1,000赫兹，分辨率为24位（图10）。</li>
 <li>应变仪装置固定在实验台面上，呈45°角。受试者被要求坐在装置后方，将肘部置于带衬垫的区域，使施力通过手腕进行。这是确保受试者仅使用肱二头肌而不募集其他肌肉的最佳方式（图11）。</li>
 <li>肌肉力量在三个时间点进行测定，每次收缩持续3秒，各次收缩之间间隔约45秒。三次测量结果的平均值即为RM。</li>
 <li>在确定每位受试者肱二头肌的RM后，以该RM值的35%进行预定的锻炼实验。</li>
 <li>所有受试者均采用适当的负重哑铃进行相同的锻炼，以诱导延迟性肌肉酸痛（DOMS）。具体操作为：受试者坐在椅子上，肘部支撑于大腿，完成4组、每组25次的肱二头肌集中弯举（图12）。</li>
 <li>每组之间给予受试者90秒的休息时间。受试者需完成完整的25次重复动作，若在锻炼过程中无法稳定控制哑铃，则被要求停止。</li>
</ol>
2. 红外相机准备与设置
<ol>
 <li>进行红外成像的房间应保持恒定温度，以尽量减少因室温差异导致的外部干扰，从而避免产生错误的热读数。本实验中，我们使用一个温度受控的房间，温度维持在约23°C（±0.5°C）。</li>
 <li>相机应设置在距离被测皮肤1米远的位置，并与皮肤表面呈垂直角度（图9a）*。</li>
 <li>在设定好所需距离后，应提醒受试者保持静止，直至图像采集完成。该过程通常不超过几秒钟，但为确保所采集图像的准确性，尽量减少移动至关重要。</li>
 <li>为尽量减少红外干扰，建议房间墙壁涂成较深颜色，而非浅色。</li>
 <li>照明在进行红外成像时也至关重要，因为荧光灯或钨丝灯等会发射红外波的光源可能导致错误的高读数。最佳照明选择是配备均匀LED光源的房间，因为LED灯几乎不会产生红外干扰（图9b）*。</li>
</ol>
* 我们的实验室使用FLIR 660红外热像仪（图8）进行了一系列测试，通过在不同角度（0（垂直）、15、30、45和60度）以及不同距离（1、2和5米）对皮肤成像，以准确检测皮肤温度。所有图像均与校准后的热电偶读数进行比较，结果发现，当角度为垂直且距离皮肤1米时，图像与热电偶读数之间的相关性最佳（r = 0.93）。不同的角度和距离会导致像素损失，从而降低图像与热电偶读数之间的整体相关性。
3. 图像采集
<ol>
 <li>本实验中，分别在运动前以及运动后24小时和48小时采集受试肌肉的图像。</li>
 <li>来自非目标区域的体热可能干扰热成像结果并导致错误读数。因此，不应有人站在目标受试者的侧面或后方。</li>
 <li>本研究中，同时采集了运动手臂与未运动手臂的图像，以便进行比较。如前所述，我们对其中一条手臂进行运动处理，另一条手臂则作为对照（图4和图5）。</li>
 <li>红外相机拍摄的图像编号需立即记录于单独的电子表格中，以避免难以分辨各图像对应的受试者。</li>
</ol>
4. 图像处理与分析
<ol>
 <li>使用“ThermoVision ExaminIR”软件（版本：1.10.2）对获取的红外图像进行处理。</li>
 <li>在选择需要分析的图像后，通过软件界面中的统计框在手臂的采集图像上确定四个感兴趣区域（图6）。</li>
 <li>当在手臂上定位好所需的各个区域后，软件将显示每个选定区域温度的平均值和标准差。随后，我们可以对各区域进行相互比较，或获得整个手臂的平均温度（图7）。</li>
</ol>
5. 视觉模拟评分与血液分析
<ol>
 <li>采用视觉模拟评分法（VAS）评估受试者上臂的主观酸痛程度。该量表为一条10 cm（100 mm）长的直线，一端标记为“无疼痛”，另一端标记为“极度酸痛”。要求每位受试者在10 cm直线上做一标记，以表示其对酸痛程度的感受。</li>
 <li>在运动前、运动后24小时及48小时对受试者进行VAS评分。</li>
 <li>采集受试者的外周血，用于测定血液中肌红蛋白的浓度水平。</li>
 <li>在运动前、运动结束后30分钟以及48小时时，从受试者的肘前静脉抽取血液。</li>
 <li>将血液以4000 rpm离心10分钟，以分离血清与细胞成分。样本随后储存在-80°C，直至完成肌红蛋白分析。</li>
 <li>使用TOSOH“AIA-360”全自动酶免疫分析仪（TOSOH Corp., Tokyo, Japan）测定肌红蛋白。肌红蛋白检测试剂盒（Myo 025297, ST AIA-PACK Myoglobin）按照制造商提供的说明书进行操作。</li>
</ol>
6. 代表性结果
本研究中采集的红外热成像结果在图1中清晰呈现。对41名受试者运动手臂在3个时间点（运动前、运动后24小时和运动后48小时）拍摄的图像显示，与运动前及运动后48小时的温度相比，运动后第2天（24小时）的皮肤温度明显升高。如图1所示，第1天（运动前）的平均皮肤温度为32.80 ± 1.03 °C，第2天（运动后24小时）为33.96 ± 1.46 °C，第3天（运动后48小时）为32.82 ± 1.29 °C。从第1天到第2天的皮肤温度变化具有统计学意义（ANOVA，p &lt; 0.01）。
然而，未进行锻炼的手臂在三个时间段之间的变化并不明显。图1显示，第1天（运动前）的平均皮肤温度为33.08 ± 0.83 °C，第2天（运动后24小时）为32.79 ± 1.42 °C，第3天（运动后48小时）为33.17 ± 0.95 °C。这三天之间的皮肤温度差异无统计学意义（ANOVA p = 0.38）。
视觉模拟评分法（VAS）的疼痛评分结果如图2所示。如图2所示，受试者报告的疼痛在第2天和第3天显著升高。锻炼肌肉的疼痛水平从第1天的3.6 ± 6.1上升至第2天的36.3 ± 22.8，以及第3天的37.5 ± 25.3。与第1天相比，该升高具有显著性差异（ANOVA，p &lt; 0.01）。
肌红蛋白浓度水平的结果如图3所示。从该图可以看出，在第1天（运动前及运动后30分钟）的两个肌红蛋白浓度之间几乎没有变化。但在第3天，肌红蛋白浓度显著升高。与第1天前两个时间点相比，第3天的升高幅度约为每毫升血液147纳克（ng/mL）。肌红蛋白浓度在基线时为30.12 ± 7.66 ng/mL，运动后30分钟为31.66 ± 11.89 ng/mL，第3天为178.96 ± 249.51 ng/mL。第3天的这一升高具有高度显著性（ANOVA p < 0.01）。
对从红外图像获得的皮肤温度与VAS酸痛评分进行了相关性分析。结果显示，第2天的VAS评分与第2天的皮肤温度测量值之间存在较明显的相关性，且该相关性具有统计学意义（r = 0.312，p &lt; 0.05）。然而，第3天的VAS评分与皮肤温度之间未见明显相关性，该相关性无统计学意义（r = 0.047，p = 0.77）。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig1.jpg" alt="皮肤温度变化折线图；运动前后数据对比；运动肢体与未运动肢体" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图1"> 
图1. 41名受试者在连续3天内运动肢体（菱形）与未运动肢体（方形）皮肤温度变化的代表性图示。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig2.jpg" alt="VAS评分折线图；运动前至运动后48小时；疼痛评估趋势；研究数据。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Figure 2"> 
图2. 41名受试者在3天时间内使用视觉模拟评分法（VAS）测量的肌肉酸痛感知差异的代表性图表。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig3.jpg" alt="肌红蛋白浓度图，显示从运动前到运动后48小时的增加。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图3"> 
图3. 41名受试者在三个时间段内肌红蛋白浓度变化的代表性图表。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig4.jpg" alt="热成像，手臂热量分布，红外分析，温度测量对比，示意图。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图4"> 
图4. A) 受试者运动前运动手臂的典型红外图像。B) 同一受试者手臂在运动后24小时的红外图像。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig5.jpg" alt="热成像对比，红外分析，温度分布，热图，实验结果。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图 5"> 
图 5. A) 受试者运动前未运动手臂的典型红外图像。B) 同一受试者手臂在运动后24小时的红外图像。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig6.jpg" alt="肱二头肌解剖图，肌肉区域标注为1-4，用于说明上臂解剖学研究。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图6"> 
图6. 分析上臂热成像图像时所采用的4个感兴趣区域示意图。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig7.jpg" alt="热成像分析、温度分布、红外相机、热量图、数据可视化。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图 7"> 
图 7. “ThermoVision ExaminIR”软件界面，显示运动后手臂红外图像上的四个感兴趣区域，以及各区域的统计分析结果。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig8.jpg" alt="热成像相机设置；用于热分布分析和红外数据采集的设备。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图 8"> 
图 8. 本研究中使用的红外热成像相机（FLIR 660）。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig9.jpg" alt="物理治疗诊所布局、检查床、头顶外科灯、设备设置。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图9"> 
图9. A) 红外相机设置在受试者手臂前方1米处。B) 拍摄图像时实验室中使用的LED灯。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig10.jpg" alt="生物力学分析装置；设备监测肌肉力量；数据采集；实验室环境。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图10"> 
图10. A) 用于测量肌肉力量的 BioPac 模块。B) 固定在45°倾斜凳上的应变仪装置，并连接至 BioPac 系统。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig11.jpg" alt="生物力学测试；带传感器的手臂；评估肌肉活动；实验室设置。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图11"> 
图11. 一名典型受试者在应变仪装置上施加力。
<img src="/files/ftp_upload/3551/3551fig12.jpg" alt="静态平衡；哑铃弯举方法示意图显示手臂位置；运动生物力学。" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="图12"> 
图12. 受试者正在进行诱发肌肉酸痛的运动方案。

<ol><li>Cheung, K., Hume, P. A., Maxwell, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+Onset+Muscle+Soreness%3A+Treatment+strategies+and+Performance+Factors%5BTitle%5D)+AND+%22Sports.+Med%22%5BJournal%5D)">Delayed Onset Muscle Soreness: Treatment strategies and Performance Factors.</a> Sports. Med. 33, 145-164 (2003).</li>
<li>MacIntyre, D. L., Reid, W. D., McKenzie, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+Muscle+Soreness%3A+The+Inflammatory+Response+to+Muscle+Injury+and+its+Clinical+Implications%5BTitle%5D)+AND+%22Sports.+Med%22%5BJournal%5D)">Delayed Muscle Soreness: The Inflammatory Response to Muscle Injury and its Clinical Implications.</a> Sports. Med. 20, 24-40 (1995).</li>
<li>Armstrong, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+exercise-induced+delayed+onset+muscular+soreness%3A+a+brief+review%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+and+Science+in+Sports+and+Exercise%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of exercise-induced delayed onset muscular soreness: a brief review.</a> Medicine and Science in Sports and Exercise. 16, 529-538 (1984).</li>
<li>Howatson, G., Someren, K. A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Prevention+and+Treatment+of+Exercise-Induced+Muscle+Damage%5BTitle%5D)+AND+%22Sports.+Med%22%5BJournal%5D)">The Prevention and Treatment of Exercise-Induced Muscle Damage.</a> Sports. Med. 38, 483-503 (2008).</li>
<li>Petrofsky, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+Different+Heat+Modalities+for+Treating+Delayed-Onset+Muscle+Soreness+in+People+with+Diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Technology+%26+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">Comparison of Different Heat Modalities for Treating Delayed-Onset Muscle Soreness in People with Diabetes.</a> Diabetes Technology & Therapeutics. 13, 645-655 (2011).</li>
<li>Warren, G. L., Lowe, D. A., Armstrong, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+Tools+Used+in+the+Study+of+Eccentric+Contraction-Induced+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22Sports.+Med%22%5BJournal%5D)">Measurement Tools Used in the Study of Eccentric Contraction-Induced Injury.</a> Sports. Med. 27, 43-59 (1999).</li>
<li>Hilbert, J. E., Sforzo, G. A., Swensen, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Effects+of+Massage+on+Delayed+Onset+Muscle+Soreness%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Sports.+Med%22%5BJournal%5D)">The Effects of Massage on Delayed Onset Muscle Soreness.</a> Br. J. Sports. Med. 37, 72-75 (2003).</li>
<li>Symons, T. B., Clasey, J. L., Gater, D. R., Yates, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Deap+Heat+as+a+Preventative+Mechanism+on+Delayed+Onset+Muscle+Soreness%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Strength+and+Conditioning+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of Deap Heat as a Preventative Mechanism on Delayed Onset Muscle Soreness.</a> Journal of Strength and Conditioning Research. 18, 155-161 (2004).</li>
<li>Vaile, J. M., Gill, N. D., Blazevich, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Effect+of+Contrast+Water+Therapy+on+Symptoms+of+Delayed+Onset+Muscle+Soreness%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Strength+and+Conditioning+Research%22%5BJournal%5D)">The Effect of Contrast Water Therapy on Symptoms of Delayed Onset Muscle Soreness.</a> Journal of Strength and Conditioning Research. 21, 697-702 (2007).</li>
<li>Stone, M. B., Merrick, M. A., Ingersoll, C. D., Edwards, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preliminary+Comparison+of+Bromelain+and+Ibuprofen+for+Delayed+Onset+Muscle+Soreness+Management%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Preliminary Comparison of Bromelain and Ibuprofen for Delayed Onset Muscle Soreness Management.</a> Clinical Journal of Sports Medicine. 12, 373-378 (2002).</li>
<li>Barlas, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Managing+Delayed-Onset+Muscle+Soreness%3A+Lack+of+Effect+of+Selected+Oral+Systemic+Analgesics%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Phys.+Med.+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Managing Delayed-Onset Muscle Soreness: Lack of Effect of Selected Oral Systemic Analgesics.</a> Arch. Phys. Med. Rehabil. 81, 966-972 (2000).</li>
<li>Jackman, S. R., Witard, O. C., Jeukendrup, A. E., Tipton, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branched-Chain+Amino+Acid+Ingestion+Can+Ameliorate+Soreness+from+Eccentric+Exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+%26+Science+in+Sports+%26+Exercise%22%5BJournal%5D)">Branched-Chain Amino Acid Ingestion Can Ameliorate Soreness from Eccentric Exercise.</a> Medicine & Science in Sports & Exercise. 42, 962-970 (2010).</li>
<li>Law, F. rey, A, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Massage+Reduces+Pain+Perception+and+Hyperalgesia+in+Experimental+Muscle+Pain%3A+A+Randomized%2C+Controlled+Trial%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Pain%22%5BJournal%5D)">Massage Reduces Pain Perception and Hyperalgesia in Experimental Muscle Pain: A Randomized, Controlled Trial.</a> The Journal of Pain. 9, 714-721 (2008).</li>
<li>Vaile, J., Halson, S., Gill, N., Dawson, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+hydrotherapy+on+the+signs+and+symptoms+of+delayed+onset+muscle+soreness%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Effect of hydrotherapy on the signs and symptoms of delayed onset muscle soreness.</a> European Journal of Applied Physiology. 102, 447-455 (2007).</li>
<li>Vinck, E., Cagnie, B., Coorevits, P., Vanderstraeten, G., Cambier, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pain+reduction+by+infrared+light-emitting+diode+irradiation%3A+a+pilot+study+on+experimentally+induced+delayed-onset+muscle+soreness+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+in+Medical+Science%22%5BJournal%5D)">Pain reduction by infrared light-emitting diode irradiation: a pilot study on experimentally induced delayed-onset muscle soreness in humans.</a> Lasers in Medical Science. 21, 11-18 (2006).</li>
<li>Clarkson, P. M., Ebbeling, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigation+of+Serum+Creatine+Kinase+Variability+after+Muscle-Damaging+Exercise%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Sci%22%5BJournal%5D)">Investigation of Serum Creatine Kinase Variability after Muscle-Damaging Exercise.</a> Clin. Sci. 75, 257-261 (1988).</li>
<li>Jiang, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+perspective+on+medical+infrared+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Engineering+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">A perspective on medical infrared imaging.</a> Journal of Medical Engineering & Technology. 29, 257-267 (2005).</li>
<li>Pennes, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+Tissue+and+Arterial+Blood+Temperatures+in+the+Resting+Human+Forearm%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Analysis of Tissue and Arterial Blood Temperatures in the Resting Human Forearm.</a> J. Appl. Physiol. 1, 93-122 (1948).</li>
<li>Ivanitsky, G. R., Khizhnyak, E. P., Deev, A. A., Khizhnyak, L. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermal+imaging+in+medicine%3A+A+comparative+study+of+infrared+systems+operating+in+wavelength+ranges+of+3%E2%80%935+and+8-12+%CE%BCm+as+applied+to+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22Doklady+Biochemistry+and+Biophysics%22%5BJournal%5D)">Thermal imaging in medicine: A comparative study of infrared systems operating in wavelength ranges of 3–5 and 8-12 μm as applied to diagnosis.</a> Doklady Biochemistry and Biophysics. 407, 59-63 (2006).</li>
<li>Herman, C., Cetingul, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Visualization+and+Detection+of+Skin+Cancer+Using+Dynamic+Thermal+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Quantitative Visualization and Detection of Skin Cancer Using Dynamic Thermal Imaging.</a> J. Vis. Exp. (51), e2679-e2679 (2011).</li>
<li>Wang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+diagnostic+performance+of+infrared+imaging+of+the+breast%3A+a+preliminary+study%5BTitle%5D)+AND+%22BioMedical+Engineering+OnLine%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the diagnostic performance of infrared imaging of the breast: a preliminary study.</a> BioMedical Engineering OnLine. 9, 3-3 (2010).</li>
<li>Murray, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+imaging+techniques+in+the+assessment+of+scleroderma+spectrum+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+%26+Rheumatism%22%5BJournal%5D)">Noninvasive imaging techniques in the assessment of scleroderma spectrum disorders.</a> Arthritis & Rheumatism. 61, 1103-1111 (2009).</li>
<li>Zaproudina, N., Ming, Z., Hanninen, O. O. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plantar+Infrared+Thermography+Measurements+and+Low+Back+Pain+Intensity%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Manipulative+and+Physiological+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">Plantar Infrared Thermography Measurements and Low Back Pain Intensity.</a> Journal of Manipulative and Physiological Therapeutics. 29, 219-223 (2006).</li>
<li>Kim, Y. -C., Bahk, J. -H., Lee, S. -C., Lee, Y. -W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infrared+Thermographic+Imaging+in+the+Assessment+of+Successful+Block+on+Lumbar+Sympathetic+Ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22Yonsei+Medical+Journal%22%5BJournal%5D)">Infrared Thermographic Imaging in the Assessment of Successful Block on Lumbar Sympathetic Ganglion.</a> Yonsei Medical Journal. 44, 119-124 (2003).</li>
<li>Brancaccio, P., Lippi, G., Maffulli, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biochemical+markers+of+muscular+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Chemistry+and+Laboratory+Medicine%22%5BJournal%5D)">Biochemical markers of muscular damage.</a> Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 48, 757-767 (2010).</li>
<li>Neubauer, O., König, D., Wagner, K. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+after+an+Ironman+triathlon%3A+sustained+inflammatory+responses+and+muscular+stress%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Recovery after an Ironman triathlon: sustained inflammatory responses and muscular stress.</a> European Journal of Applied Physiology. 104, 417-426 (2008).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

本研究的主要目的是评估热红外成像在检测和量化剧烈运动后肌肉酸痛方面的有效性。我们的结果表明，红外成像可能是一种有效的检测延迟性肌肉酸痛（DOMS）的技术，尤其是在运动后的最初24小时内。这一点并不令人意外，因为Pennes18曾提出了一个关于肢体肌肉向皮肤传热的非常详细的模型。该模型预测，深层组织（如肌肉）中的热量可通过传导性热交换传递至血液和皮肤。肌肉运动时，由于肌纤维之间的摩擦力以及代谢率的升高，肌肉内部会产生大量热量。此外，运动后流向肌肉的血流量增加也会导致肌肉温度升高。由于肌肉属于壳层组织，其通常温度为32至33 °C；然而当运动肌肉的血流量增加时，其温度会接近核心组织的温度，即37 °C18,19。这种血流量的增加通常在运动停止后数小时内恢复至正常水平。但如果在运动后24小时仍观察到温度持续升高，则表明运动肌肉已发生损伤。这种肌肉损伤会导致额外的热量从肌肉传递至表层皮肤，从而在皮肤下形成可检测到的热点。
红外成像已被用于检测和诊断多种疾病17,19-24。人体温度的变化始终是功能异常的指标，其中温度升高主要...

<table><tbody><tr><td>红外热成像相机</td><td>FLIR Systems Inc.</td><td>FLIR SC660</td><td></td></tr><tr><td>热红外分析软件</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>Software Version 1.10.2</td><td></td></tr><tr><td>生物&amp;#8211;电放大模块</td><td>Biopac Systems, Inc.</td><td>DA100C</td><td>DA100C 提供可变增益设置和可调电压参考。</td></tr><tr><td>模数转换模块</td><td>Biopac Systems, Inc.</td><td>MP100</td><td></td></tr><tr><td>全自动酶联免疫分析仪</td><td>Tosoh Corp.</td><td>AIA -360</td><td>该设备用于分析血液样本，并获取肌红蛋白读数。</td></tr></tbody></table>

利用红外热成像技术检测延迟性肌肉酸痛

The Use of Thermal Infra-Red Imaging to Detect Delayed Onset Muscle Soreness

延迟性肌肉酸痛（DOMS），也称为运动诱导的肌肉损伤（EIMD），常见于长时间缺乏体力活动的人群，在突然开始一次意外的锻炼后出现1-4，也可能发生在超出其常规训练强度的运动员身上5。与这种疼痛现象相关的症状可从轻微的肌肉压痛到严重的致残性疼痛不等1,3,5。这些症状的强度及相关不适感在运动结束后最初24小时内逐渐加剧，并在运动后24至72小时达到高峰1,3。因此，DOMS 是一种最常见的反复发作的运动损伤，可能影响个体的运动表现，并使许多人望而生畏1,4。
近30年来，延迟性肌肉酸痛（DOMS）现象在运动生理学、体育运动和康复领域的研究人员及专家中引起了广泛关注6。已有大量发表的研究针对这一疼痛现象的潜在机制、治疗干预措施及预防策略进行了探讨1-5,7-12。然而，从现有文献可以看出，DOMS并非一种易于量化的病理状态，因为在用于量化该状况的测量工具和方法之间存在较大的差异性6。显然，目前尚未就DOMS的最佳评估方法达成共识，这使得难以确认某种特定干预措施是否真正有助于减轻此类酸痛的相关症状。因此，DOMS在一定程度上具有模糊性，因为许多研究依赖视觉模拟评分法（VAS）来测量酸痛程度10,13-15，而这种方法属于主观评估而非客观测量。尽管肌肉组织针刺活检和肌纤维蛋白的血液水平在某些人看来可能是“金标准”6，但已有文献记录显示这些血液蛋白水平存在较大变异6,16，此外，侵入性技术有时还伴随较高的风险。
因此，在本项研究中，我们测试了一种利用运动后肌肉上方皮肤的热红外（IR）成像技术来检测相关肌肉酸痛的方法。自20世纪50年代以来，红外热成像技术已被应用，并被证实可用于成功检测多种类型的疾病和感染17。但令人惊讶的是，关于延迟性肌肉酸痛（DOMS）与皮肤温度变化的研究却几乎未见报道。本研究的主要目的是利用这种安全且无创的技术来观察DOMS过程中的变化。

本研究的目的是评估使用红外热成像相机是否是检测和量化运动后肌肉酸痛的有效工具。

延迟性肌肉酸痛（DOMS），也称为运动诱导的肌肉损伤（EIMD），常见于近期进行过剧烈或不习惯的体力活动的个体中……

本实验的总体目标是利用热红外成像仪在延迟性肌肉酸痛（DOMS）的早期阶段对其进行识别与测量。第一步是采集双臂的基线图像。使用视觉模拟量表进行疼痛程度评估，并采集血液样本以检测血清肌红蛋白水平。接下来测量将进行锻炼的手臂的肌肉力量。根据该肌肉力量测量值，计算出锻炼所需的适当重量百分比。然后，受试者使用计算出的重量完成4组，每组25次重复动作。最后一步是在运动后24小时和48小时分别对运动手臂和非运动手臂进行成像。运动后，在多个时间点采集血液样本，并实施视觉模拟评分法以确认疼痛强度。最终，使用Thermo Vision Examiner软件分析所获得的红外图像，结果显示运动肌肉上方的皮肤温度显著升高。该技术的主要优势在于，与视觉模拟评分法（一种主观评估个体是否感到肌肉酸痛的方法）不同，该技术可提供可量化的绝对数据。该方法的另一优势在于能够早期检测延迟性肌肉酸痛（DOMS）。这使得研究人员能够对运动及肌肉酸痛的微细生理学机制开展更为详尽的研究，而非仅依赖简单的主观评分量表。演示该技术的将为 Ha Ley Hani，他是洛马琳达大学联合健康学院康复科学专业在读的博士候选人，正在攻读康复科学博士学位。为准备红外成像，应将温控室设定为恒定温度，以尽量减少因室温差异导致的外部干扰，从而避免产生错误的热读数。建议使用深色涂料的房间，以最大限度减少红外干扰。此外，房间照明不应发射红外波，否则可能导致错误的高温读数。建议使用均匀的LED光源，而非荧光灯或钨丝灯，因为LED光源在肘部屈肌运动前产生的红外干扰较小。将相机设置在距离测量皮肤一米远且与皮肤表面垂直的角度。本实验中使用的是FLIR six 60红外相机。应隔离目标区域，避免来自非目标区域的体热干扰热成像，导致出现错误读数。相机设置完成后，应告知受试者保持静止，直至完成图像采集。成像过程不应超过几秒钟，但为确保所获取图像的准确性，必须尽量减少移动。需对将要进行锻炼的前臂采集一幅红外图像，同时也应采集未进行锻炼的前臂图像，以便进行对比分析。立即在单独的电子表格中记录红外相机的图像编号，以关联受试者手臂的时间点与图像编号。采用视觉模拟评分法在运动前后评估手臂的主观酸痛程度。该量表为一条10厘米长的直线，一端标记为“无疼痛”，另一端标记为“极度酸痛”。指导每位受试者在10厘米长的视觉模拟线上做标记，以表示运动前的肌肉酸痛程度。同时在运动前采集受试者的外周血，用于检测血液中肌红蛋白浓度水平，具体方法见书面操作流程。将血液以4,000 RPM离心10分钟，以分离血清与血细胞。在开始运动前，将样本储存于零下80摄氏度，直至进行肌红蛋白分析。应为每位参与者测试其最大阻力（RM）。为此，使用通过BioPack生物电放大模块与计算机连接的应变仪设备来测量肌肉力量。该模块连接至MP 100模数转换器，采样频率为每秒1000赫兹，分辨率为24位。将应变仪装置以45度角固定在实验台上。指导受试者坐在装置后方，将肘部置于带衬垫的区域，使施力通过手腕进行。这是确保受试者不会动用肱二头肌以外其他肌肉的最佳方式。在三个时间点测定力量，每次收缩持续3秒，各次收缩之间间隔约45秒。三次测量的平均值即为rm。在确定每位受试者肱二头肌的RM后，应使用相应重量的哑铃，以受试者RM的35%进行预定的锻炼，以诱导肌肉酸痛。受试者坐在椅子上，肘部支撑在大腿上，完成一组25次重复的肱二头肌集中弯举动作。指导受试者完成完整的25次重复动作，但如果他们在锻炼过程中无法稳定地控制重量，则应立即停止。锻炼结束后，让每位受试者休息92秒。重复该锻炼和休息周期三次，共完成四组，每组25次重复动作。运动后30分钟采集外周血样本，采血操作同前。运动后48小时，分别于24小时和48小时采集血液样本。对运动后的肌肉和对照肌肉进行红外成像，并在相同时间点实施视觉模拟评分（VAS）。使用 Thermo Vision Examiner 软件处理所获取的红外图像。选择需要分析的图像后，在软件界面中使用统计框在手臂的采集图像上确定四个感兴趣区域。当在手臂上定位到所需的各个区域后，软件将显示每个选定区域温度的平均值和标准差。此时，可对各个区域进行相互比较，或获取整个手臂的平均温度。本研究中获取的红外热成像结果在此清晰呈现。对41名受试者运动手臂在三个时间点采集的图像显示，运动后24小时的平均皮肤温度相较于运动前及运动后48小时的温度均有统计学意义上的显著升高。然而，在非运动手臂中，这三个时间点之间的温度变化并不明显。连续三天的平均皮肤温度差异无统计学意义。以下是视觉模拟评分（VAS）中疼痛读数的结果。运动后肌肉的疼痛感在第二天和第三天显著增加。肌红蛋白浓度水平的检测结果表明，在第一天运动前和运动后30分钟采集的两个肌红蛋白浓度值之间变化很小。但在第三天，与第一天前两个浓度值相比，肌红蛋白浓度显著升高，达到每毫升血液147纳克。在进行该实验操作时，其中最关键的步骤之一是在整个数据采集期间保持室温恒定，并持续使用LED照明。这样做的目的是尽量减少相机可能捕捉到的任何偏差，尤其是与温度相关的偏差。

the-use-thermal-infra-red-imaging-to-detect-delayed-onset-muscle

Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

热红外成像来检测迟发性肌肉酸痛

我们证明，具有增强代谢活性的恶性色素性病变会产生可量化的热量，通过测量皮肤在冷却刺激下的瞬态热响应，可在疾病早期阶段对黑色素瘤及其他皮肤癌（相对于非增殖性痣）进行定量鉴别。...

利用动态热成像进行皮肤癌的定量可视化与检测

我们介绍一种基于超声的矢量组织多普勒成像新技术，可在动态活动中以亚毫秒级的时间分辨率测量肌肉收缩速度、应变及应变率。该方法可提供动态肌肉功能的互补性测量，有助于更好地理解肌肉骨骼系统疾病潜在的发病机制。...

一种肌肉骨骼超声成像的新应用

本文介绍了一种在人体受试者中安全、可靠地诱导并量化运动性骨骼肌损伤的方法。...

人体运动性骨骼肌损伤的诱导与评估

本文介绍了一种简单、无创的方法，通过近红外光谱技术，在一次临床或实验室就诊过程中评估反应性充血、神经血管耦合以及骨骼肌氧化能力。...

骨骼肌神经血管耦合、氧化能力及微血管功能的“一站式”近红外光谱检测

小鼠和大鼠通过手术植入远程温度传感器，随后适应测试环境和测试程序。在饲养笼内或规定体力活动（例如，以恒定速度在跑步机上行走）期间，测量其肌肉温度对药理学或环境刺激的响应变化。...

测量小鼠和大鼠骨骼肌产热

本文介绍了一种用于测量人类和实验动物餐后棕色脂肪组织活性的实验方案。...

红外热成像技术用于检测棕色脂肪组织活性变化

本文介绍一种利用近红外光谱技术无创评估下肢反应性充血的方法。该方案可对血管及微血管反应性进行标准化评估，可用于判断是否存在血管功能障碍，以及评估治疗干预措施的有效性。...

通过反应性充血期间的近红外光谱法评估下肢血管功能

自行车运动生物力学依赖于高效的肌肉激活和核心稳定性。红外热成像（IRT）可实现对肌肉疲劳的无创监测。本方案建立了将红外热成像技术整合到生物力学分析中的标准化方法，旨在通过精确的生理监测，优化业余自行车运动员的运动表现并预防运动损伤。...

使用红外热成像技术监测业余自行车运动员肌肉疲劳与生物力学的标准化方案

本方案通过结合吲哚菁绿（ICG）近红外成像与超声技术，定量评估小鼠骨折后足底ICG清除情况及腘窝淋巴结肿大，以评价淋巴回流功能。...

利用ICG近红外成像和超声评估骨折后淋巴引流

本文介绍了一种肿瘤热消融术。详细描述了整个操作过程，包括治疗前规划和影像学检查、麻醉、辅助技术以促进经皮入路、消融设备在影像引导下定位至肿瘤、热治疗、治疗后护理及随访。...

腹部肿瘤的热消融治疗

了解如何使用热红外成像技术检测迟发性肌肉酸痛（DOMS）。本研究通过对比运动前后24小时和48小时的皮肤温度变化，提供客观量化的肌肉疼痛评估方法，帮助运动生理学研究获得更精确的数据。

利用红外热成像技术检测延迟性肌肉酸痛

探索更多视频