Name: 可视化和肝脏微循环血流量和耗氧量分析:急性肝炎模型中的应用 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-04T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 40 s
Description: 学习使用荧光标记红细胞和激光辅助磷光法可视化肝脏微循环并测量微血管氧分压的方法。该技术可分析微血管结构、血流速度和氧张力，揭示急性肝炎等肝脏疾病的生理与病理机制。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

作者感谢大塚理沙女士在技术协助和实验方面的帮助。本研究部分得到了文部科学省、体育及文化部对青年科学家（B）项目的资助（2010年，编号22700476）以及铃木纪念基金会对K.T.的资助。此外，本研究还得到了日本文部科学省下一代超级计算机项目中“生命物质下一代综合模拟的开发与应用”研究与开发项目的支持，以及部分得到JST ERATO Suematsu气体生物学项目的资助。

1. 使用异硫氰酸荧光素异构体 I（FITC）标记红细胞
我们使用的所有实验方案均经庆应义塾大学医学院动物护理委员会批准。
<ol>
 <li> 麻醉供体小鼠，做腹部切口后，用含有少量肝素的1 ml注射器从下腔静脉采集全血。随后通过腹腔注射戊巴比妥钠（100 mg/kg）立即处死小鼠。</li>
 <li> 将全血用PBS（pH 7.4）洗涤两次，每次在摆动桶转子中以400 g 离心5分钟。</li>
 <li> 将10 mg FITC溶解于5 ml 100 mM Na2HPO4溶液中，并使用孔径为0.22 μm的滤膜过滤。</li>
 <li> 在试管中混合1 ml FITC溶液、0.15 ml 3 mM葡萄糖、0.25 ml 180 mM NaH2PO4和1.5 ml 100 mM Na2HPO4。加入0.2 ml红细胞沉淀，轻敲试管混匀。</li>
 <li> 将试管置于4 °C孵育2小时，然后用PBS洗涤标记的红细胞两次。</li>
 <li> 取少量红细胞悬液滴于载玻片上，观察红细胞是否形态正常、大小均匀，且荧光强度是否足够。</li>
 <li> 将0.1 ml红细胞重悬于0.9 ml pH 7.4的PBS中，4 °C保存直至注射使用。</li>
</ol>
2. 氧敏感染料的制备
<ol>
 <li> 将500 mg BSA溶解于10 ml pH 7.4的PBS中。</li>
 <li> 向BSA溶液中加入30 mg Pd(II)-meso-tetra(4-carboxyphenyl)porphine (Pd-TCPP)，搅拌过夜。</li>
 <li> （可选）使用重力流层析或离心柱分离与BSA结合的Pd-TCPP，以去除游离的Pd-TCPP。</li>
 <li> 离心溶液以去除未溶解的Pd-TCPP，并用孔径为0.22-μm的膜滤器过滤上清液。</li>
 <li> 将1 ml分装样品储存于-20 °C的离心管中。避免反复冻融。</li>
</ol>
3. 动物准备
<ol>
 <li> 为进行微循环的显微观察，准备一个带有直径为 20 mm 圆孔的塑料板，并用胶带将一块 30 mm 见方的盖玻片固定在圆孔上。 </li>
 <li> 麻醉小鼠，去除毛发并消毒皮肤。使用连接有 10 cm 聚乙烯管（PE 10，内含肝素化 PBS）的 30 G 针头插入尾静脉，留置导管以用于药物注射。 </li>
 <li> 行正中切口后，将肝脏的一个主要叶展平置于塑料板上，并将小鼠保持于仰卧位。 </li>
 <li> 用厨房用纸制成小条（3 mm × 8 mm），沿肝叶边缘呈斜向放置，以限制肝脏随呼吸移动并防止其干燥。 </li>
 <li> 在显微镜下（使用透射光）观察肝微循环，并确认在至少 15 分钟内视野中血流无淤滞现象。 </li>
 <li> 缓慢注入 0.2 ml 荧光标记的红细胞用于血流观察，或注入 0.2 ml Pd-TCPP 溶液用于 pO2 测定。此剂量的 FITC 标记红细胞约占观察区域内循环红细胞总量的 1/50。 </li>
</ol>
4. 血流可视化
<ol>
 <li> 使用通过带通滤光片（450–490 nm）的汞灯照射激发 FITC1。 </li>
 <li> 用 CCD 相机记录荧光图像。 </li>
</ol>
5. 氧分压（pO2）测量
Pd-TCPP 的磷光相对较弱，应使用高灵敏度检测器进行检测。所有实验均需在暗室中进行。
<ol>
 <li> Pd-TCPP 的吸收峰位于 410 nm 和 532 nm，因此推荐使用倍频波长 532 nm 进行激发。该波长可通过 Nd:YAG 脉冲激光器2产生。 </li>
 <li> 将 Nd:YAG 激光器的光束导入倒置显微镜的相应端口，并调节光斑至焦平面中心位置。空间分辨率取决于激光光斑尺寸，可通过使光束穿过小孔来调节光斑大小。 </li>
 <li> 为检测磷光信号，将长通滤光片（>620 nm）和光电倍增管（PMT）连接至显微镜的另一端口。PMT 应对红光波长敏感，特别是在 700 nm 附近。 </li>
 <li> 采样磷光信号（以 200 kHz 采样 500 个点），并通过将指数函数拟合至衰减曲线来计算衰减的时间常数。 </li>
 <li> 为进行校准，准备两组 Pd-TCPP 溶液样品，其 pO2 分别为 150 mmHg 和 0 mmHg。向样品中加入体积比为 1% 的连二亚硫酸钠以实现无氧环境。校准期间保持样品 pH 为 7.4，温度为 37 °C。 </li>
 <li> 在公式 (1)3 中固定 Stern-Volmer 常数 kq 和无氧条件下的发光衰减时间 τ0。在本例中，Pd-TCPP 溶液在 37 °C 和 pH 7.4 条件下，kq 为 374 mmHg-1 s-1，τ0 为 0.74 ms。这些测量参数依赖于设备（如激光器、探测器、其他光学器件）及信号处理方法，因此每个测量系统均需进行校准4。 
 τ0/τ = 1 + kq • τ0 • pO2     (1) </li>
 <li> 将小鼠置于显微镜载物台的样品板上，观察肝脏微循环，并调节目标微血管的位置至激光光斑焦点处。 </li>
</ol>
6. 肝炎模型
<ol>
 <li> 实验前一晚对小鼠实施禁食，但可自由饮水。 </li>
 <li> 用DMSO配制浓度为20 mg/ml的对乙酰氨基酚（APAP）溶液。 </li>
 <li> 按1 ml/100 g体重（即200 mg/kg体重）剂量进行腹腔注射。注射后，小鼠可自由摄食和饮水5。 </li>
 <li> 注射后24小时，麻醉小鼠并作腹中线切口暴露肝脏。若肝炎模型成功建立，肝小叶中央区的坏死灶将肉眼可见。 </li>
</ol>
7. 代表性结果
肝微循环的示例图像如图1所示，其中（a）为透射光图像，（b）为荧光图像。在视频录像中可观察到单个FITC标记的红细胞，并通过血流方向识别门静脉小静脉、窦状隙和中央静脉。
如图2所示，通过100倍物镜照射到中央小静脉的激光光斑直径约为10 μm。在雄性C57BL/6小鼠中测量了肝脏微循环中的血管内pO2，图3(a)显示了门静脉小静脉和中央小静脉中pO2与血管直径之间的关系。从门静脉小静脉到中央小静脉的pO2梯度表明，红细胞在通过窦状隙时能有效释放氧气。如图3(b)所示，门静脉血管中的平均pO2为59.8 mmHg，窦状隙中为48.2 mmHg，中央小静脉中为38.9 mmHg。
通过腹腔注射APAP诱导急性肝炎时，肝微循环各部位的血管内pO2均显著升高：门静脉中p&lt;0.05，窦状隙和中央静脉中p&lt;0.01（图3(c)）。
<img src="/files/ftp_upload/3996/3996fig1.jpg" alt="血管网络形成，显微镜图像；红色和绿色荧光，组织分析。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1"> 
图1. 低倍显微图像，显示肝脏微循环：(a) 透射光，(b) 荧光。
<img src="/files/ftp_upload/3996/3996fig2.jpg" alt="用于细胞结构分析的植物组织显微镜图像，显示绿色荧光。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 2"> 
图 2. 激光光斑照射目标中央微静脉以进行 pO2 测量的图像。
<img src="/files/ftp_upload/3996/3996fig3.jpg" alt="氧分压（pO2）分析图：CV 与 PV 直径、pO2 分布、对照组与 APAP 作用效果对比。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 3"> 
 图 3. 健康对照小鼠及对乙酰氨基酚（APAP）诱导肝损伤小鼠肝微循环中的 pO2 梯度。（a）显示门静脉小静脉（PV）和中央静脉小静脉（CV）的 pO2 与血管直径的关系，（b）显示通过窦状隙（S）从 PV 到 CV 的氧梯度。PV 与 CV 之间的 pO2 差值反映了肝细胞或其他实质细胞的耗氧量。（c）显示在 APAP 给药诱导的肝炎条件下，PV、S 和 CV 中的 pO2 显著升高，且 pO2 梯度降低，表明肝脏耗氧功能受损。

<ol><li>Ishikawa, M., Sekizuka, E., Shimizu, K., Yamaguchi, N., Kawase, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+RBC+velocities+in+the+rat+pial+arteries+with+an+image-intensified+high-speed+video+camera+system%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Measurement of RBC velocities in the rat pial arteries with an image-intensified high-speed video camera system.</a> Microvasc. Res. 56, 166-172 (1998).</li>
<li>Tsukada, K., Sekizuka, E., Oshio, C., Tsujioka, K., Minamitani, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Red+blood+cell+velocity+and+oxygen+tension+measurement+in+cerebral+microvessels+by+double-wavelength+photoexcitation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Red blood cell velocity and oxygen tension measurement in cerebral microvessels by double-wavelength photoexcitation.</a> J. Appl. Physiol. 96, 1561-1568 (2004).</li>
<li>Stern, O., Volmer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%C3%9Cber+die+Abklingzeit+der+Fluoreszenz%5BTitle%5D)+AND+%22Physik.+Zeitschr%22%5BJournal%5D)">Über die Abklingzeit der Fluoreszenz.</a> Physik. Zeitschr. 20, 183-188 (1919).</li>
<li>Rumsey, W. L., Vanderkooi, J. M., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+of+phosphorescence%3A+a+novel+method+for+measuring+oxygen+distribution+in+perfused+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging of phosphorescence: a novel method for measuring oxygen distribution in perfused tissue.</a> Science. 241, 1649-1651 (1988).</li>
<li>Soga, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+metabolomics+reveals+ophthalmic+acid+as+an+oxidative+stress+biomarker+indicating+hepatic+glutathione+consumption%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Differential metabolomics reveals ophthalmic acid as an oxidative stress biomarker indicating hepatic glutathione consumption.</a> J. Biol. Chem. 281, 16768-16776 (2006).</li>
<li>Goda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+of+heme+oxygenase+isoforms+in+rat+liver.+Topographic+basis+for+carbon+monoxide-mediated+microvascular+relaxation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Distribution of heme oxygenase isoforms in rat liver. Topographic basis for carbon monoxide-mediated microvascular relaxation.</a> J. Clin. Invest. 101, 604-612 (1998).</li>
<li>Grote, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGrote%2C+J+%22Physiologie+der+Menschen%22">Physiologie der Menschen</a>. , 20th edn, Springer-Verlag. New York. 560(1980).</li>
<li>Suganuma, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocytes+with+T-state-stabilized+hemoglobin+as+a+therapeutic+tool+for+postischemic+liver+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxid+Redox+Signal%22%5BJournal%5D)">Erythrocytes with T-state-stabilized hemoglobin as a therapeutic tool for postischemic liver dysfunction.</a> Antioxid Redox Signal. 8, 1847-1855 (2006).</li>
<li>Vanderkooi, J. M., Maniara, G., Green, T. J., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optical+method+for+measurement+of+dioxygen+concentration+based+upon+quenching+of+phosphorescence%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">An optical method for measurement of dioxygen concentration based upon quenching of phosphorescence.</a> J. Biol. Chem. 262, 5476-5482 (1987).</li>
<li>Bernal, W., Auzinger, G., Dhawan, A., Wendon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+liver+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Acute liver failure.</a> Lancet. 376, 190-201 (2010).</li>
<li>Hinson, J. A., Roberts, D. W., James, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+acetaminophen-induced+liver+necrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Handb.+Exp.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of acetaminophen-induced liver necrosis.</a> Handb. Exp. Pharmacol. 169, 369-405 (2010).</li>
<li>Hinson, J. A., Reid, A. B., McCullough, S. S., James, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acetaminophen-induced+hepatotoxicity%3A+role+of+metabolic+activation%2C+reactive+oxygen%2Fnitrogen+species%2C+and+mitochondrial+permeability+transition%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Metab.+Rev%22%5BJournal%5D)">Acetaminophen-induced hepatotoxicity: role of metabolic activation, reactive oxygen/nitrogen species, and mitochondrial permeability transition.</a> Drug Metab. Rev. 36, 805-822 (2004).</li>
<li>Lieber, C. S. Medical disorders of alcoholism. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLieber%2C+CS+%22N.+Engl.+J.+Med%22">N. Engl. J. Med</a>. 333, 1058-1065 (1995).</li>
<li>Zimmerman, H. J., Maddrey, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acetaminophen+%28paracetamol%29+hepatotoxicity+with+regular+intake+of+alcohol%3A+analysis+of+instances+of+therapeutic+misadventure%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Acetaminophen (paracetamol) hepatotoxicity with regular intake of alcohol: analysis of instances of therapeutic misadventure.</a> Hepatology. 22, 767-773 (1995).</li>
</ol>

我们没有需要披露的内容。

向组织输送氧气是微循环的一项基本功能，大量论文描述了与微血管解剖结构和流变学相关的疾病6。肝脏的血流由动脉血和静脉血共同组成。其中约30%的肝脏血流来自富含氧气的肝动脉，其余70%则来自门静脉，后者携带来自脾脏和胃肠道的低氧静脉血7。脂肪肝、休克或肿瘤等肝脏疾病会改变肝微循环中的血流。要确定组织的氧合状态，需要同时测量微循环中的血流量和氧浓度。由于目前尚无 commercially available 仪器可用于肝微循环中的这些测量，导致该领域的生理学数据难以获取。
动物准备步骤中的一个关键点是将肝脏固定在塑料板上。固定不牢会导致肝脏随呼吸运动而移动，从而干扰显微观察并使分析变得困难。然而，过度紧的固定又会引起血流停滞。在手术过程中应通过低倍显微镜观察血流状况。高功率激光容易损伤微血管，因此应尽量减少照射频率。通常情况下，1 Hz 的频率已足以满足时间测量需求8。然而，单次 pO2 测量耗时不到 1 毫秒，这意味着在需要快速检测 pO2 变化时，重复频率可提高至 1 kHz...

<table><tbody><tr><td>四(4-羧基苯基)卟啉钯(II)</td><td>Frontier Scientific, Inc.</td><td>PdT790</td><td></td></tr><tr><td>异硫氰酸荧光素异构体 I</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>F7250</td><td></td></tr><tr><td>对乙酰氨基酚</td><td>Sigma-Aldrich Co.</td><td>A7085</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;仪器&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>光电倍增管</td><td>hamamatsu photonics k.k</td><td>H10722-20</td><td></td></tr></tbody></table>

肝微循环中血流与氧耗的可视化与分析：在急性肝炎模型中的应用

Visualization and Analysis of Blood Flow and Oxygen Consumption in Hepatic Microcirculation: Application to an Acute Hepatitis Model

肝脏中氧供应与需求之间存在显著差异，因为肝脏的氧消耗量相对较高，但约70%的肝血供来自胃肠道和脾脏的低氧门静脉血。氧气通过血液从门静脉终末分支经由肝窦流向中央静脉，从而在肝小叶内形成氧梯度。该氧梯度是一个重要的物理参数，影响肝微循环中上下游酶的表达，但由于缺乏在肝微循环中测量氧消耗的技术，肝脏氧代谢相关机制的研究一直受到阻碍。因此，我们采用荧光素异硫氰酸（FITC）标记的红细胞来可视化肝微循环，并利用激光辅助磷光法测量微血管中的氧分压。这种非接触式、连续的光学测量方法可定量分析血流速度、血管直径以及与肝脏氧消耗相关的氧梯度。在通过给予小鼠对乙酰氨基酚建立的急性肝炎模型中，我们观察到门静脉和中央静脉中的氧分压均升高，但肝窦内的氧梯度降低，表明肝细胞在终末肝静脉周围区域的坏死可能使氧分压上升，并影响门静脉周围区域的酶表达。综上所述，我们用于测量肝血流动力学和氧消耗的光学方法能够揭示与肝病相关的机制。

开发了一种光学系统，用于通过FITC标记的红细胞观察肝脏微循环，并利用激光辅助磷光测定法测量微血管中的氧分压。该方法可通过分析微血管结构、管径、血流速度和氧张力，研究生理和病理机制。

肝脏中氧供应与需求之间存在显著差异，因为肝脏的耗氧量相对较高，但约70%的...

开发了一种光学系统，用于通过荧光标记的红细胞观察肝脏微循环，并利用激光辅助磷光成像技术测量微血管中的氧分压。该方法可通过分析微血管结构、管径、血流速度和氧张力，研究生理和病理机制。在肝脏微循环中，血液从门静脉小静脉流向中央静脉，从而在两者之间形成氧梯度。肝脏中的氧浓度会影响酶的表达和病理变化，因此血流分析和氧浓度测量成为重要的研究课题。我们的实验方法包括静脉注射用荧光标记的红细胞。为了利用荧光可视化微循环并测量氧分压，我们通过静脉注射原卟啉钯，该物质在激光激发下会发出磷光，其发光强度取决于周围氧气的浓度。该方法可对氧进行定量分析，通过测量肝微循环的氧分压，分别显示门静脉和中央静脉的氧分压为59.8和38.9毫米汞柱，证明了氧浓度的有效测量。接下来，我们将该方法应用于肝炎模型。我们发现门静脉区ES窦状隙和中央静脉区的氧分压升高，但门静脉区与中央静脉区之间的压力差减小。这可能是由于肝细胞坏死导致中央静脉区的氧消耗减少所致。这些结果表明，我们采用光学系统测量肝脏血流动力学和氧消耗的方法能够阐明肝微循环中多种肝病的发病机制。氧梯度是影响肝门管区和中央静脉区酶表达以及与微分布相关的各类肝病的重要参数，因此定量血流和氧消耗至关重要。为了阐明其机制，本方法的优势在于采用非接触、连续的光学测量，可定量肝微循环中的血流、微血管直径和氧梯度。全血取自供体小鼠，红细胞经PBS洗涤两次，每次以400 G离心5分钟。接下来，将2毫克FITC溶解于1毫升100毫摩尔的去离子磷酸氢二钠溶液中，然后通过0.2微米孔径的膜过滤。随后，取1毫升FITC溶液置于试管中，加入0.15毫升3毫摩尔的葡聚糖溶液、0.25毫升180毫摩尔的去离子磷酸氢二钠溶液以及1.5毫升100毫摩尔的去离子磷酸氢二钠溶液，轻轻振荡混匀。室温避光孵育2小时，然后用PBS洗涤染色后的红细胞两次。接下来，取少量红细胞悬液置于玻片上，观察红细胞形态是否正常，并确认具有足够的荧光。将0.1毫升红细胞悬液加入0.9毫升磷酸盐缓冲液（PBS）中，混匀后于4摄氏度保存备用。随后，将500毫克牛血清白蛋白（BSA）溶解于10毫升PBS中。加入30毫克钯卟啉，室温下搅拌过夜。离心溶液以去除未溶解的钯卟啉，并将上清液通过0.2微米孔径滤膜过滤。取1毫升滤液分装至试管中，于-20摄氏度保存。注意避免反复冻融。为了在显微镜下观察微循环，可在一块塑料板上切割出一个直径为20毫米的孔，并用一块边长为30毫米的方形盖玻片覆盖该孔。在尾静脉插管后，将肝脏主要叶以俯卧位平铺于塑料板上。接着，使用多个尺寸为3毫米×8毫米的塑料保鲜膜条覆盖在肝叶周围的区域，以防止呼吸运动和干燥导致的组织移动。使用透射显微镜观察肝内血液循环，并确认在至少15分钟内视野中无血流停滞现象。为观察血流情况，逐步注入0.2毫升荧光标记的红细胞。为测量氧分压，需注入0.2毫升的钯卟啉

visualization-analysis-blood-flow-oxygen-consumption-hepatic

Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

可视化和肝脏微循环血流量和耗氧量分析：急性肝炎模型中的应用

本文报道了一种利用活体显微成像结合特定图像采集与分析方法，对小鼠肝脏血管系统中单个血管内血流速度进行动态测量与定量的详细实验方法。...

肝脏活体显微成像 利什曼原虫 感染：肝脏血流动力学评估

在肝脏中对免疫细胞进行稳定的活体高分辨率成像具有挑战性。本文提供了一种高灵敏度且可靠的方法，结合重症监护监测，利用活体多光子激光扫描显微镜，对小鼠肝脏中免疫细胞的迁移及细胞间相互作用进行长时间（约6小时）的观察研究。...

利用CXCR6.Gfp报告小鼠对健康与病变肝脏中免疫细胞进行长期活体多光子显微镜成像

用于观察血管再生的工具需要对血管树进行对比成像的方法。本视频展示了一种精细的注射技术，可用于实现血管树的最佳对比效果，并阐述了利用µCT及连续组织学切片对所得样本进行详细分析所带来的潜在优势。...

正常小鼠70%部分肝切除术后血管与实质再生的可视化

本文介绍了一种详细的实验方案，用于测量大鼠门静脉压力、内脏血流和全身血流动力学参数，以表征门静脉高压综合征。...

肝硬化大鼠门静脉高压综合征的侵入性血流动力学表征

本文介绍一种用于实验性评估肝组织中血浆凝固的方案...

大型动物模型中肝脏组织上血浆凝固性的评估 体内

本方案描述了一种通过门静脉灌注对完整小鼠肝脏进行切片以用于代谢研究的简便方法。...

Ex Vivo 小鼠门静脉肝脏灌注

在此，我们介绍一种可靠的实验方法 原位...

利用灌流小鼠肝脏模型定量测定肝葡萄糖生成、尿素生成及脂解作用

利用超快多普勒超声成像及定量小鼠肝脏血管系统

本方案介绍了一种用于活体小鼠体内显微成像的前沿可重复使用肝脏成像工具（RHIT），该工具可增强组织稳定性，适用于快速和急性实验。RHIT采用3D打印设计，生产成本低，具有可扩展性和多功能性，能够实现对不同体型小鼠代谢过程的长期观察。...

可重复使用的肝脏成像工具：一种用于肝脏活体显微成像的可重复使用3D打印工具

在此，我们介绍一种开源、可修改的常温灌注方案 离体...

一种面向科研人员设计的开源常温灌注系统

学习使用荧光标记红细胞和激光辅助磷光法可视化肝脏微循环并测量微血管氧分压的方法。该技术可分析微血管结构、血流速度和氧张力，揭示急性肝炎等肝脏疾病的生理与病理机制。

肝微循环中血流与氧耗的可视化与分析：在急性肝炎模型中的应用

探索更多视频