2012年5月16日
本文介绍了一种使用全唾液进行快速且准确CD4计数的CD4计数方法——α-test。该α-test成本低廉,无需专业技术培训,也无需单克隆抗体等昂贵试剂、仪器设备、冷藏条件、样本运输,以及血液的采集和处理。
在资源有限的地区,迫切需要一种经济实惠的CD4细胞计数方法来监测HIV疾病进展。本视频展示了一种低成本的即时检测筛查方法,该方法通过检测唾液中蛋白酶抑制剂Alpha one PI的存在来确定CD4细胞计数。为此,首先让受试者或患者含服一颗柠檬糖,以刺激血清样液体渗入唾液中。
将唾液收集到样本杯中,并转移至96孔检测板。然后向唾液中加入足量的蛋白酶——猪胰弹性蛋白酶,使其结合并抑制α1-抗胰蛋白酶。接着加入比色法弹性蛋白酶底物。
任何残留的未结合弹性蛋白酶会切割底物,导致颜色由无色变为黄色。向孔中加入库马西蓝以染色总蛋白,并使用微孔板读数仪进行比色测定。最终,通过计算α1抗胰蛋白酶与总蛋白的比值,并结合指数值,准确评估CD4计数。
与现有的流式细胞术方法相比,该技术具有多项优势。该检测可在现场进行,无需采血——采血不仅具有创伤性且成本较高;同时无需使用价格昂贵的单克隆抗体,也无需专业技术培训,且不需要冷藏或样本运输。该方法克服了艾滋病干预中的一项关键障碍,将显著影响患者的治疗成本和健康结局,以及 HIV 传播的频率,而这些因素均对全球经济产生重大影响。
该方法可揭示Alpha和PI如何通过黏附与迁移作用调控CD4+ T细胞数量,也可应用于其他系统,例如其他蛋白抑制剂如何调控不同类型细胞的黏附与细胞迁移。我们最初提出该方法,是在发现HIV感染患者体内Alpha-1-PI水平极低,以至于显著限制了进入血液的CD4+ T细胞数量。开始本实验方案前,需为每个将使用的微孔板制备所需的现用工作溶液。
配制 60 毫升 0.05 摩尔的三(羟甲基)氨基甲烷缓冲盐水(TBS),pH 值为 7.8。同时,为每块微孔板配制 6 毫升猪胰弹性蛋白酶 I 型(PPE)。充分振荡混匀 PPE 悬液,然后用 TBS 稀释至浓度约为 0.01 单位/毫升。
接下来,用DMSO配制0.1摩尔的比色底物SA 3-NA储备液。该储备液应立即使用,若需立即使用,可保存于-20摄氏度。通过在TBS中按1:100稀释,为每块微孔板配制6毫升工作液。最后,配制10%考马斯亮蓝R-250的TBS储备液,并立即使用,或若需立即使用,则保存于-20摄氏度。
通过将原液在 TBS 中稀释 1000 倍,为每块微孔板准备 6 毫升溶液。处理唾液时,必须采取适当的预防措施,例如佩戴手套,并让受试者或患者处于直立位时穿着实验服。将 SGO 置于口腔内以刺激血清渗出。
本演示中,由一名研究助理扮演艾滋病患者的角色。对于经常无牙且无法咀嚼口香糖的艾滋病患者而言,无糖柠檬糖更为方便。患者需在前3分钟内根据需要含服柠檬糖,并在接下来的3分钟内将全口唾液收集到样本杯中。此方法可获得约2毫升唾液。
如果唾液不会立即使用,则需在处理样本当天将其置于-80摄氏度条件下保存。将样本在37摄氏度条件下解冻。解冻后,唾液可在2至4摄氏度条件下保存最多三天。每个样本和对照需在96孔平底板中设置三个复孔,每孔加入130微升TBS,用于建立检测的样本孔和对照孔。
然后避开黏液,因为黏液黏稠且不含血清渗出物。将20 µL唾液分别转移至三个检测孔和三个阴性对照孔中。然后向阳性对照孔中加入20 µL TBS,并用移液器吹打混匀。
在此步骤中,吸取唾液时应避免产生涡流和气泡,同时避免吸取固体颗粒和黏液。接下来,轻轻振荡 PO 标志的胰腺弹性蛋白酶(PPE)工作液,充分混匀后,向样本孔、阳性对照孔以及阴性对照孔中各加入 50 µL。
加入 50 µL TBS。由于加入的体积足够大,可使溶液在唾液混合物中均匀分布,因此无需混匀。将培养板在室温下孵育 10 分钟。
孵育结束后,向每个孔中加入50微升弹性蛋白酶底物SA Three NA工作液。然后在23摄氏度下继续孵育45分钟。45分钟后,向每个孔中加入50微升库马西蓝工作液。
然后使用酶标仪在405纳米波长下测定吸光度,以检测SA3NA的裂解情况,同时在595纳米波长下测定考马斯亮蓝的吸光度,以反映总蛋白含量。为计算α1-PI指数,首先使用以下公式计算每个波长下的归一化吸光度:将待测样本平均值与阴性对照平均值之差,除以阳性对照平均值与阴性对照平均值之差。随后,将405纳米处的归一化吸光度除以595纳米处的归一化吸光度,得到α1-PI指数,如图所示。该指数可用于评估α测试是否适合作为在资源有限的流行地区监测CD4计数的即时检测筛查方法。
采集了喀麦隆20名女性和11名男性HIV-1患者的刺激性唾液样本,这些患者在当地诊所接受常规护理。该结果与前期在纽约市采集唾液开发α检测时的初步观察一致。在喀麦隆采集的α1-PI指数与唾液样本和CD4计数之间的相关性,R²值为0.91,P值小于0.0001。该关系由一个三参数S型曲线定义,符合剂量-反应关系。95%的置信区间和预测区间分别用蓝色和红色线条表示。
在之前的一项研究中,我们发现 CD4+ T 细胞在 HIV-1 感染者以及遗传性 α1-PI 缺陷(PIZZ 型)受试者中呈现正弦振荡循环,周期为 23 ± 3.5 天。此处展示的是一个非 HIV 健康对照者 CD4+ T 细胞 27 天周期的计算机生成正弦曲线分析的代表性示例。对六名受试者的 CD4+ T 细胞变化进行计算机生成正弦曲线分析,得到了峰-峰振幅和振荡轴数值,结果符合预期。振荡轴与振幅呈正相关,R² 值为 0.96,p 值为 0.009。
在CD4阳性T细胞计数较低的患者中,CD4 T细胞计数的周期性变化较小;而在CD4阳性T细胞计数较高的患者中,周期性变化较大,因为此处所示的回归线估计了振荡轴,而振荡轴与振幅相关。可通过回归线计算振幅,以估计由于周期性波动叠加所导致的CD4阳性T细胞计数相对于回归线上下波动的预期范围。将计算得到的振幅与置信区间叠加后发现,绿色线所示的振幅位于蓝色线所示的95%置信区间之内。
一旦掌握该技术,从采集唾液到获得患者的CD4细胞计数结果可在90分钟内完成。该操作旨在用作监测CD4计数的筛查试验。若患者CD4计数出现显著变化,则应通过流式细胞术进行随访,以确认CD4计数测量结果的有效性,并为治疗决策提供支持。
在后续的开发阶段,微孔板检测将被转化为试纸条技术,从而实现在无仪器和无电源条件下进行检测。通过唾液传播 HIV 的可能性极低,但 HIV 患者常伴有其他传染病,如结核病和丙型肝炎,因此请务必注意,处理唾液时与处理血液一样,可能因存在未知的传染性颗粒而具有极高危险性。在进行该操作时,应始终采取预防措施,例如佩戴手套及其他个人防护装备。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本文介绍了一种利用全唾液进行快速且准确CD4计数的新型CD4计数方法——α-test。该方法成本低廉,无需采血、昂贵的试剂以及专业技术培训。
准确的CD4细胞计数在HIV监测中仍然是一个关键瓶颈,特别是在资源有限的地区,由于成本、基础设施和试剂的限制,流式细胞术难以实施。α-test通过使用全唾液实现床旁CD4定量检测,弥补了这一缺口,无需采血、冷链运输或专业培训。该方法可为HIV干预项目的治疗决策和优先事项规划提供可靠的预测依据。
α-测试适用于HIV治疗药物发现的连续过程,在先导化合物优化和临床前验证之前,可作为靶点结合和生物活性的筛选工具。