2007年10月31日
我们描述的T细胞生长因子在体外扩增抗原特异性大鼠T淋巴细胞线的准备。
大家好,我是 Christine Beaton。我是加州大学尔湾分校生理学和生物物理学系 George Chen 实验室的助理研究员。在接下来的两天里,我将向您展示如何制备 TCGF,它代表 T 细胞生长因子。
因此,对于我们的日常细胞培养,当我们不需要精确了解培养基中细胞因子的组成时,我们使用的是 T 细胞生长因子,它是来自 spl CY 培养物的 S 上清液,含有帮助 T 细胞扩增所需的细胞因子。因此,我们准备 TCGF 的方法是,当我们杀死健康的路易斯大鼠时,我们取出它们的脾脏,准备单细胞悬液,通过它们去除红细胞,然后我们将用 con carnaval 刺激单核细胞,这将诱导 T 细胞产生生长所需的所有细胞因子。为了生成 TCGF,我们需要激活细胞。
因此,我们的做法是将缩集素 conval 缩写为 corona A 添加到我们的细胞培养物中。因此,当我们将 conc 添加到 a 细胞培养物中时,它将与糖基化 T 细胞受体复合物结合,并同时与多个复合物结合,它将执行我们所说的加帽作。所以它会聚集,在细胞表面形成一个集群,这将在 T 淋巴细胞中诱导激活信号。
所以在细胞被激活后,它们会爆炸。所以它们会增大,然后开始分泌细胞因子。所以最初我们认为 TCGF 主要是白细胞介素 2,但现在我们知道事实并非如此。
它还含有非常少量的干扰素 γ TNF α 以及可能还含有非常少量的细胞因子,这些细胞因子对于在 48 小时后保持细胞存活是必需的。在培养中,细胞已经产生了我们需要的所有细胞因子。所以我们要去除细胞,当我们去除细胞,只剩下上清液时,我们在 snat 中仍然有一些游离的圆锥细胞。这将是一个问题,因为我们真的想使用我们的 T 细胞生长因子来保持 T 细胞系的生长。
如果我们把 conval 放在那里,它会在我们不希望它们被激活时激活细胞。因此,为了解决这个问题,我们将添加过量的糖,该糖将与 ate 中的所有游离浓度结合。因此,当我们将 TCGF 添加到培养物中时,它会完全失活,并且不会与细胞上的其他糖基化受体结合。
那么让我们开始吧。本实验的第一步是在安乐死后立即取出大鼠的脾脏。这就是我要立即使用无菌器械执行的作。
一旦我把脾脏取出来,我就把它们放在补充有抗生素的 PBS 中,作为抗生素,我使用青霉素和链霉素。那么让我们开始吧。因此,我用 70% 乙醇喷洒大鼠,以确保我的培养物不会受到任何严重污染。
然后用我的仪器,我要在这里的皮肤上做一个小切口。然后我去除肌肉层,脾脏就在这里出现。所以我拿其他镊子,轻轻地把脾脏拉出来,不要损坏它。
我像这样去除连接的结缔组织。所以现在我有了一个脾脏。当然,我非常小心,不要损坏腹腔内的任何其他东西,因为对肠道的任何损害都会立即导致我的脾脏受到污染。
然后我将我的脾脏转移到含有 PBS 和抗生素的试管中。而这根管子我一直放在冰上。所以现在我已经从三只老鼠身上收获了脾脏。
因此,我们已准备好从这些脾脏中制备单细胞悬液。所以现在我有了脾脏,我把它们带到组织培养室,用 70 微米的细胞训练器从它们中制备单细胞悬液。所以我需要几样东西来从脾脏制作单细胞悬液。
我需要无菌器械、一把镊子和一把剪刀。然后,我在培养皿中放置一个无菌 1 mil 注射器的柱塞。我要把我的脾脏放在 PBS 加抗生素中。
在另一个培养皿中,我将 70 微米细胞过滤器放入 10 毫升 PBS 加抗生素中。所以第一步是确保脾脏干净,因为正如你在这里看到的,还有小块的结膜组织,我要把它们去除,因为它们会很快堵塞细胞过滤器。因此,我只需切下我不想要的东西并将其丢弃到培养皿的盖子中。
所以现在我的脾脏大部分是干净的,所以我要一个一个地取脾脏,把它们放在细胞训练器里,把它们切成小块,然后我把这三个脾脏混合在一起。下一步是制备单细胞悬液。所以当然,既然我想要所有东西都准备好了,我就完全不碰细胞训练器,我用无菌的一密耳注射器的柱塞把我的脾脏压过细胞训练器。
正如您在细胞训练器外部看到的那样,我正在制备一种单细胞悬液。所以第一次我仍然有一些小块的脾脏,但我已经要取出单细胞悬液了。我已经将其转移到一个 50 mil 的管子中,我把它储存在冰上。
我将用 10 密耳的 PBS 和抗生素重新填充我的细胞过滤器。所以我用抗生素再服用 10 密耳的 PBS,不必非常精确地 10 分钟,我们只是在清洗。我把它放在细胞过滤器中,然后我使用相同的程序。
我回到我的注射器柱塞上,我再按压一下 ocid。所以,当然,你永远不可能把所有东西都通过,因为有我无法去除的结膜组织和小块脂肪会留在细胞过滤器中。但是你应该把大部分脾脏用于细胞过滤器。
然后我重复我之前所做的。我将收获我的单细胞悬液并将其添加到同一颗牙齿中。到现在为止,细胞筛选仪中几乎没有留下任何筛网,流出的 PBS 要清晰得多,我将简单地再次洗涤一次,我们现在应该已经将大部分细胞取出。
所以现在我有了 PLE 细胞的单细胞悬液,我打算将它们旋转下来,以便对它们进行调色板。所以旋转 8 到 10 分钟就足够了。所以现在我们已经旋转了我们的 PLE 细胞,我们有一个很好的调色板。
所以我要做的是去除上清液,然后去掉红细胞。所以我要悬浮肌细胞,我要加入氯化铵。所以这是一个 SU,一个 oh 点 15 摩尔氯化铵的溶液,我每个脾脏将使用 5 毫升。
所以,由于我有三个脾脏,我将使用 15 毫升氯化铵,我将在冰上进行。所以,对于红细胞,我将轻轻地上下输送它三分钟。好的,我们将在这里使用这个曝光率更高的镜头。
所以现在我已经分析了三分钟的电细胞。我要用 PBS 装满我的试管,或者您也可以使用培养基。这是为了使溶液的渗透压恢复到细胞的正常范围。
我将像以前一样将细胞旋转 8 到 10 分钟以沉淀它们。然后我将使用相同的 PBS 和抗生素清洗它们两次。所以现在我们在电细胞化后跨越细胞,不用担心我们永远不会得到 100% 的电细胞释放。
所以托盘仍然是红色的,但上清液会更清澈。现在我要清空上清液,打破托盘,加入一些 PBS,最多 50 mil,旋转并再次重复该步骤,以便进行两次洗涤,然后我就可以自己计数了。我已经洗涤了两次肌细胞,然后将它们悬浮在培养基中,并使用您的细胞仪对它们进行了计数。
不出所料。我从三个脾脏中得到了大约 6 亿个细胞,这是意料之中的,因为一个脾通常会给我们 200 到 2.5 亿个细胞。所以我现在要做的是,我将以每磨 200 万个的密度将我的细胞接种到补充有 10% 胎钙血清的培养基中。
我将向该培养基中每磨 2 微克浓度 A 中加入 2 微克以刺激细胞。之后,我只需将细胞放入培养箱中 48 小时即可。细胞现在已经在培养箱中放置了 48 小时,正如我将向您展示的那样,它们生长得非常好。
介质已变为橙色。因此,我们现在已准备好完成 TCGF 的准备工作。您还记得,我在细胞悬液中添加了 con carnaval 以激活细胞。
所以 a 中的骗局是凝集素。它将结合 T 细胞所有受体上的糖,并将人工激活所有这些细胞。我们现在面临的问题是,我们在细胞 S 上清液中仍然有一些 con carnaval。
由于我们将在其他 T 细胞培养物中使用 snat 来扩增细胞,因此我们不希望这些细胞培养物中存在 con carnaval。所以为了摆脱它,我要做的是添加过量的糖,其中 con naval 结合,这就是这里显示的甲基 α D 细胞。我要加入过量的糖,使其完全溶解。
它将把所有剩余的 conc naval 结合在一个完成后,我将对我的细胞上清液进行无菌过滤,并将 Ali 液体冷冻以备在接下来的几周或几个月内使用。那么,让我们开始最后一步。因此,我将细胞培养上清液添加到 50 mil 试管中,以便能够旋转它们以去除细胞。
所以我只是简单地填充尽可能多的试管,我不在培养罩中这样做,我可以,但是由于我最终需要任何方法来过滤我的溶液,因为我添加了糖,这不是无菌的,所以我只是在工作台上做。这更容易。我现在已经把所有的细胞和上清液倒进了我的 50 mil falcon 管中。
所以我要把它们带到离心机中,旋转大约 10 分钟。旋转它们的唯一原因是使细胞沉淀,这样我就会得到澄清的上清液。细胞现在已经跨过,所以上清液很清楚,这就是我想要收集的。
因此,我将把所有上清液收集到一个干净的 150 平方厘米培养瓶中。我要在这个瓶子里加糖。因此,当细胞旋转时,我称量了足够的糖,每毫升上清液中加入 15 毫克。
我要完全让,让它溶解,然后我要无菌过滤我的上清液。所以现在我要在每毫升上清液中加入 15 毫克的糖。我把盖子放回去,因为我不在无菌条件下工作,所以吃的是否进入盖子并不重要,所以我混合直到所有的糖都溶解了。
那应该相当快。是的,现在所有的糖都溶解了。所以我所要做的就是将无菌过滤器变成上清液,然后我要将其分装。
所以通常我会做 10 到 15 mil 的等分试样,并在零下 20 度下储存。像这样的等分试样可以储存几个月。您也可以将 TCGF 存放在冰箱中,但我会在接下来的 10 到 15 天内使用它。
在过去的两天里,我向大家展示了如何制备 T 细胞生长因子,这种上清液制作非常简单,制备成本非常低。因此,我们在实验室中经常使用它来维持培养中的 T 细胞系,而无需购买昂贵的细胞因子鸡尾酒。祝你的实验好运。
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本文描述了用于体外扩增抗原特异性大鼠T淋巴细胞系的T细胞生长因子(TCGF)的制备方法。该过程涉及从健康大鼠收集和刺激脾脏单核细胞,以产生T细胞生长所需的细胞因子。
Preparing T cell growth factor (TCGF) from rat splenocytes provides a cost-effective, cytokine-rich alternative to recombinant interleukin-2 for sustaining antigen-specific T cell lines in vitro. This approach supports mechanistic de-risking in early discovery by enabling reliable T cell expansion without exogenous cytokine bias, thereby improving predictive confidence in immunological assays. The method’s scalability and reproducibility make it suitable for integration into discovery workflows requiring consistent T cell culture conditions.
TCGF preparation fits within the discovery continuum from early T cell target validation through assay development to preclinical validation, where sustained T cell culture is required for functional readouts.