Name: 大鼠原位小肠移植 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 16 s
Description: 学习大鼠原位小肠移植技术，掌握供体肠道获取、血管吻合及肠道连续性重建等关键显微外科步骤。该方法为研究肠道移植免疫反应与排斥机制提供可靠的动物实验模型。

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5 minutes

1. 供体手术
<ol>
	<li>供体大鼠应禁食 24 小时（可自由饮用清水或葡萄糖溶液）。</li>
	<li>使用标准雾化器以 2% 异氟烷开始吸入麻醉，开腹后将浓度降至 1%。通过夹捏足趾检查镇静程度。</li>
	<li>剃除腹部毛发，并用皮肤消毒剂清洁三次（Kodan）。皮下注射镇痛药后，行正中切口。</li>
	<li>将移植物包裹于生理盐水浸湿的纱布中，随后在手术显微镜下（6 倍放大）用棉签轻轻分离胰腺与升结肠之间的生理性粘连。</li>
	<li>使用 7-0 蚕丝线结扎并切断回结肠动脉、右结肠动脉及中结肠动脉。将升结肠向肠系膜上静脉（SMV）右侧牵开后，可辨认出回结肠、右结肠及中结肠血管，并用 7-0 线进行结扎和切断。</li>
	<li>将胃向上牵拉，使整个肠系膜上静脉（SMV）拉直并充分暴露。使用蚊式钳进行牵拉，钳子可用按需塑形的橡皮泥固定。</li>
	<li>结扎并切断来自肠系膜上静脉（SMV）的胰十二指肠静脉。所有起源于 SMV 的细小胰十二指肠静脉必须仔细辨认，用 7-0 蚕丝线结扎后切断，方可将胰腺组织从移植物上分离。</li>
	<li>结扎并切断肠系膜上静脉（SMV）与腹主动脉之间疏松的结缔组织，包括所有淋巴管。移植物仍位于腹部右侧时，该区域的结缔组织易于操作。必须使用 7-0 蚕丝线结扎并切断这些组织，以防止移植肠段术后发生淋巴漏。</li>
	<li>结扎并切断右肾动脉。在结缔组织被切断后，右肾动脉即可显露，使用 7-0 蚕丝线进行结扎和切断。</li>
	<li>通过阴茎静脉静脉注射 200 单位肝素，对大鼠进行全身肝素化处理。</li>
	<li>结扎边缘动脉，并在十二指肠-空肠交界处及回肠末端切断小肠。</li>
	<li>在肠系膜上动脉（SMA）起始处近端结扎主动脉，于脾静脉汇合处横断门静脉。随后连同血管蒂（包括 SMA 及一段主动脉）完整获取移植物。</li>
</ol>
2. 背桌操作步骤
<ol>
	<li>通过主动脉导管使用 3 ml 的威斯康星大学溶液（UW）在 4 °C 下灌注移植物，并从空肠端用 30 ml 的Uro-Nebacetin N溶液在 4 °C 下冲洗肠腔（必须进行腔内冲洗）。</li>
</ol>
取出移植物后，立即使用3 ml冷的UW溶液对主动脉导管进行灌注。操作时使用连接10 ml注射器的20 G静脉留置针。应观察到灌注液从离断的门静脉自由流出。对于使用奈贝辛（Nebacetin）进行的肠道灌洗，则使用50 ml注射器。
<ol start="2">
	<li>在准备受体期间，将移植物保存在4 °C的UW溶液中。</li>
</ol>
3. 受体手术
<ol>
	<li>受体大鼠应禁食 24 小时（可自由饮用葡萄糖溶液或水）。</li>
	<li>使用 2% 异氟烷通过标准雾化器诱导吸入麻醉，开腹后将浓度降至 1%。通过脚趾夹捏测试确认麻醉深度。</li>
	<li>剃除腹部毛发，并用皮肤消毒剂（Kodan）清洁三次。皮下注射卡洛芬（Carprofen）5 mg/kg 以提供术中镇痛后，行正中切口。</li>
	<li>用生理盐水浸湿的纱布包裹受体肠管，并将其置于受体胸部。</li>
	<li>使用棉签钝性分离后腹膜，暴露肾血管下方至髂血管水平的腹主动脉和下腔静脉；必要时可辅以显微剪刀。使用 7-0 丝线结扎主动脉和下腔静脉的小腰支和脊支，以防止出血。（操作时，将手术显微镜放大倍数调整至 16 倍。）</li>
	<li>使用微血管夹在左侧肾血管远端下方和髂分叉近端上方同时夹闭腹主动脉和下腔静脉（IVC）。近端和远端各使用一个夹子同时夹闭两根血管。用显微刀片在两根血管前壁做切口，并冲洗残留血液。</li>
	<li>使用连续缝合的 10-0 Prolene 缝线将移植物主动脉段与受体肾下腹主动脉行端-侧吻合。初始时将移植物置于腹部右侧（大鼠头部位于 12 点方向），以完成动脉吻合的后壁缝合及下固定缝线的打结。随后将移植物翻转至腹部左侧（大鼠头部位于 9 点方向），暴露并缝合吻合口前壁。</li>
	<li>同样使用 10-0 Prolene 缝线连续缝合，将移植物门静脉与受体下腔静脉行端-侧吻合。大鼠仍保持侧卧位（头部位于 9 点方向），将移植物置于腹部左侧并放置下固定缝线。从血管内部开始缝合吻合口后壁。下固定缝线打结后，从前壁外部完成前壁缝合。</li>
	<li>先移除远端血管夹，再移除近端血管夹。如有吻合口出血，可用棉签直接压迫止血。应检查移植物是否实现均匀且快速的再灌注。</li>
	<li>结扎肠系膜血管后，切除受体全部小肠。受体接受次全肠切除术，保留 2–3 cm 近端空肠和 1 cm 远端回肠。</li>
	<li>使用 6-0 Monocryl 缝线间断单层缝合，分别在近端（空肠-空肠吻合术）和远端（回肠-回肠吻合术）重建肠道连续性。完成吻合约需 16 针缝合。</li>
	<li>用生理盐水冲洗腹腔至清洁。腹腔内注射 2 ml 生理盐水以补充液体。随后使用 3-0 Vicryl 缝线连续缝合肌肉层，并行连续皮肤缝合关闭腹腔。</li>
	<li>术后大鼠应继续禁食 24 小时（可自由饮用葡萄糖溶液或水），之后恢复自由摄取标准大鼠饲料和饮水。术后应连续 3 天给予卡洛芬镇痛（剂量见下文）。</li>
</ol>

<ol><li>Abu-Elmagd, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Five+Hundred+Intestinal+and+Multivisceral+Transplantations+at+a+Single+Center%3A+Major+Advances+With+New+Challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Five Hundred Intestinal and Multivisceral Transplantations at a Single Center: Major Advances With New Challenges.</a> Ann. Surg. 250 (4), 567-56 (2009).</li>
<li>Berney, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portal+versus+systemic+drainage+of+small+bowel+allografts%3A+comparative+assessment+of+survival%2C+function%2C+rejection%2C+and+bacterial+translocation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Surg%22%5BJournal%5D)">Portal versus systemic drainage of small bowel allografts: comparative assessment of survival, function, rejection, and bacterial translocation.</a> J. Am. Coll. Surg. 195 (6), 804(2002).</li>
<li>Fishbein, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Intestinal transplantation.</a> N. Engl. J. Med. 361 (10), 998(2009).</li>
<li>Hernandez, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+portal+venous+outflow+better+than+systemic+venous+outflow+in+small+bowel+transplantation%3F+Experimental+study+in+syngeneic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pediatr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Is portal venous outflow better than systemic venous outflow in small bowel transplantation? Experimental study in syngeneic rats.</a> J. Pediatr. Surg. 40 (2), 336(2005).</li>
<li>Monchik, G. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+small+bowel+in+the+rat%3A+technical+and+immunological+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Transplantation of small bowel in the rat: technical and immunological considerations.</a> Surgery. 70 (5), 693(1971).</li>
<li>Murase, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graft-versus-host+disease+after+brown+Norway-to-Lewis+and+Lewis-to-Brown+Norway+rat+intestinal+transplantation+under+FK506%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Graft-versus-host disease after brown Norway-to-Lewis and Lewis-to-Brown Norway rat intestinal transplantation under FK506.</a> Transplantation. 55 (1), 1(1993).</li>
<li>Murase, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunomodulation+of+intestinal+transplant+with+allograft+irradiation+and+simultaneous+donor+bone+marrow+infusion%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Immunomodulation of intestinal transplant with allograft irradiation and simultaneous donor bone marrow infusion.</a> Transplant Proc. 31 (1-2), 565(1999).</li>
<li>Pech, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perioperative+infliximab+application+ameliorates+acute+rejection+associated+inflammation+after+intestinal+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Transplant%22%5BJournal%5D)">Perioperative infliximab application ameliorates acute rejection associated inflammation after intestinal transplantation.</a> Am. J. Transplant. 10 (11), 2431(2010).</li>
<li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resident+macrophages+are+involved+in+intestinal+transplantation-associated+inflammation+and+motoric+dysfunction+of+the+graft+muscularis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Transplant%22%5BJournal%5D)">Resident macrophages are involved in intestinal transplantation-associated inflammation and motoric dysfunction of the graft muscularis.</a> Am J Transplant. 7 (5), 1062(2007).</li>
<li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+and+impact+of+organ+harvesting+and+ischemia-reperfusion+injury+within+the+graft+muscularis+in+rat+small+bowel+transplantation.+Transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Proc%22%5BJournal%5D)">Mechanism and impact of organ harvesting and ischemia-reperfusion injury within the graft muscularis in rat small bowel transplantation. Transplant.</a> Proc. 38 (6), 1821(2006).</li>
<li>Schaefer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+rejection+and+the+muscularis+propria+after+intestinal+transplantation%3A+the+alloresponse%2C+inflammation%2C+and+smooth+muscle+function%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Acute rejection and the muscularis propria after intestinal transplantation: the alloresponse, inflammation, and smooth muscle function.</a> Transplantation. 85 (10), 1465(2008).</li>
<li>Xue, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+experience+of+refined+3-cuff+technique+for+orthotopic+small-bowel+transplantation+in+rat%3A+a+report+of+270+cases%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Surgical experience of refined 3-cuff technique for orthotopic small-bowel transplantation in rat: a report of 270 cases.</a> Am. J. Surg. 198 (1), 110(2009).</li>
<li>Zhang, X. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+techniques+in+rat+heterotopic+small+bowel+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant.+Proc%22%5BJournal%5D)">Simplified techniques in rat heterotopic small bowel transplantation.</a> Transplant. Proc. 38 (6), 1840(2006).</li>
<li>Zhao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+establishment+of+a+new+en+bloc+combined+liver-small+bowel+transplantation+model+in+rats.+Transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Proc%22%5BJournal%5D)">The establishment of a new en bloc combined liver-small bowel transplantation model in rats. Transplant.</a> Proc. 39 (1), 278(2007).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

尽管大鼠肠道移植模型早在20世纪70年代就已有报道5，但近年来广泛使用的模型大多采用不同技术的异位肠道移植13。异位移植手术通常具有显微外科操作更简便、移植物评估更易接近的优势，但其主要缺点在于未能考虑移植小肠与宿主之间多种相互作用及其功能性特征，例如收缩活动和黏膜屏障功能，而这些正是在大量共生微生物和病原体背景下原位移植物所具有的特征。本研究团队在本文所述的原位模型方面积累了丰富经验，研究结果表明，由炎症和适应性免疫反应引起的许多特异性改变，必须结合移植小肠的功能特性（如收缩性和黏膜完整性）进行综合评估。值得注意的是，本研究所采用的吻合技术不包括动脉或静脉套管的使用，尽管已有研究表明，套管技术可简化操作流程并缩短关键的热缺血时间，尤其是在多脏器移植模型中12,14。尽管在啮齿类动物多脏器移植模型中可能有必要采用套管技术，但由于其潜在的并发症风险，我们在单个小肠移植模型中选择避免使用类似技术。本模型未尝试采用门静脉引流技术。除了技术上具有挑战性（门静脉直径较小可能导致静脉流出道问题），从而增加模型建立难度之外，临床上大多数肠道移植病例实际上采用的是体循环引流。因此，本研究...

<table><tbody><tr><td>威斯康星大学（UW）溶液（ViaSpan）</td><td>Bristol-Myers Squibb</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Uro-Nebacetin N 溶液</td><td>Nycomed</td><td>6967855</td><td></td></tr><tr><td>氨苄西林</td><td>Ratiopharm</td><td></td><td></td></tr><tr><td>卡洛芬（Rimadyl）</td><td>Pfizer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>不可吸收缝线 Prolene 10-0</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>可吸收缝线 Monocryl 6-0</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>可吸收缝线 Vicryl 3-0</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>静脉导管 G 20 1.1×33 mm</td><td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>静脉导管 G 22 0.9×25 mm</td><td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kodan 皮肤消毒剂</td><td>Sch&amp;#252;lke</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.9% 氯化钠注射液</td><td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>小型弯头止血钳</td><td>FineScienceTools</td><td>11009-13</td><td></td></tr><tr><td>弯头显微止血钳</td><td>AESCULAP</td><td>BD 333</td><td></td></tr><tr><td>弯头显微止血钳</td><td>AESCULAP</td><td>FD281R</td><td></td></tr><tr><td>直头显微止血钳 1</td><td>WPI</td><td>5</td><td></td></tr><tr><td>直头显微止血钳 2</td><td>WPI</td><td>2</td><td></td></tr><tr><td>显微持针器</td><td>WPI</td><td>14081</td><td></td></tr><tr><td>显微剪刀</td><td>FineScienceTools</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>显微手术刀</td><td>MANI</td><td>眼科手术刀</td><td></td></tr><tr><td>显微夹钳</td><td>AESCULAP</td><td>FB329R</td><td></td></tr></tbody></table>

大鼠原位小肠移植

Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats

小肠移植已成为短肠综合征和肠外营养失败（不可逆性肠功能衰竭）患者公认的临床治疗选择。在一些专业中心，由于手术技术和管理策略的改进，患者和移植物的短期及中期存活率显著提高，同时生活质量也得到良好保障1,3。与更为常见的其他实体器官移植（如心脏、肝脏）不同，目前对肠道移植所引发的移植物功能变化及免疫学改变的许多潜在机制尚未完全阐明6,7。急性排斥反应、脓毒症以及慢性移植物功能衰竭仍是影响长期预后的主要障碍，限制了该技术的更广泛应用，尽管需要家庭肠外营养的患者数量持续增加，其中许多人可能从移植中获益。小肠含有大量所谓的“过客”白细胞，通常被认为是肠相关淋巴组织（GALT）的一部分，这也是肠道移植物具有高度免疫原性的原因之一。肠道内大量共生微生物和病原体的存在及其与组织的密切接触，解释了当移植物黏膜完整性受损（例如因排斥反应）后，为何容易发生严重脓毒症。为了推动肠道及多器官移植领域的发展，亟需更多来自可靠且可行动物模型的研究数据。本文提供的模型在标准化建立后兼具可靠性与可行性，可为肠道移植所触发的复杂分子、细胞及功能机制提供有价值的见解。我们在实验室中已成功应用并优化该操作流程超过5年8-11。JoVE的视频形式特别有助于展示这一复杂操作过程，帮助计划建立原位啮齿类动物模型以研究肠道移植的科研团队避免初期常见错误。

正常的术后病程
移植手术后的动物应在保温灯下恢复约1小时，通常可迅速恢复。低体温是术后死亡的主要原因，术中和术后均应仔细避免。术中液体丢失需通过皮下注射补充，术后最初24小时内每8小时注射一次，每次给予2.5 ml生理盐水和2.5 ml 5%葡萄糖溶液。术后最初24小时内，大鼠应可自由摄取口服葡萄糖溶液（或凝胶饮食）和饮水。此后应恢复正常的进食行为，并可自由摄取标准大鼠饲料和饮水。疼痛通过术后连续三天每日一次皮下注射卡洛芬（carprofen）5 mg/kg进行控制，首次给药应在麻醉诱导时进行。围手术期抗生素预防仅在异基因移植情况下需要，可连续使用5–7天（氨苄西林15 mg/kg，皮下注射，每12小时一次）。动物的一般外观、毛发状况及黏膜表现应正常。术后第1天起，活动水平应恢复至术前状态；若出现淡漠或异常行为，提示可能存在早期手术并发症。大鼠术后体重最初可能下降最多达20%，通常在术后第6–8天左右开始恢复增重，并在术后第14天左右恢复至术前体重的约90%（在无排斥反应的同基因移植情况下）。
术后并发症
<p class="jo...

小肠移植已成为不可逆性肠功能衰竭患者的可接受治疗选择。我们在大鼠中建立的原位小肠移植实验模型，是研究肠移植过程中复杂的免疫和炎症反应的可靠工具。

小肠移植已成为短肠综合征和肠外营养失败患者的一种公认临床治疗选择。

本实验的总体目标是在大鼠体内进行原位肠道移植。首先从供体动物获取小肠，完成移植前的供体器官采集。该操作的第二步是在移植前对肠道移植物进行所谓的“背桌式”制备。该操作的第三步是通过进行动脉和静脉吻合来完成移植，随后恢复移植物的灌注。操作的最后一步是重建肠道连续性，分别以端对端吻合的方式完成空肠造口和回肠-回肠吻合。最终可获得结果表明，在同种异体组合中，由于移植物功能良好且口服营养吸收充分，同基因移植动物可实现长期存活。然而，可以研究急性和慢性肠道排斥反应的不同方面。该方法有助于回答肠道移植领域的一些关键问题，例如可能导致移植物失功并影响临床预后的急性和慢性排斥反应机制。对该方法的可视化演示至关重要。关键步骤难以掌握，主要原因是血管较细，且需要采用快速而精确的显微外科技术，以尽量缩短热缺血时间。在对供体大鼠进行手术前，应使其禁食24小时，但可自由饮用清水和葡萄糖溶液。使用2%异氟烷吸入麻醉动物后，通过脚趾刺激检查其镇静程度。捏住腹部皮肤，剃毛，并用皮肤消毒剂消毒皮肤三次。然后在皮下注射镇痛药后，使用手术刀在手术显微镜下进行正中切口。用浸有生理盐水的纱布包裹小肠，并将其置于腹腔左侧，加盖无菌敷布和棉片。必要时使用显微器械轻柔分离胰腺与升结肠之间的生理性粘连，采用7-0丝线（如8号）结扎；将升结肠向右侧牵开，暴露肠系膜上静脉（SMV），使用7-0线（如8号）结扎并切断回结肠血管及右结肠血管和中结肠血管，用蚊式钳夹闭后以塑形石膏固定。向上牵拉胃部，使整个SMV被拉直并充分暴露。接下来结扎并切断来自肠系膜上静脉（SMV）的胰十二指肠静脉。然后将移植物翻转至腹腔右侧，保持移植物位于腹腔右侧，此时包括肠系膜上静脉与腹主动脉之间所有淋巴管在内的疏松结缔组织即可暴露。使用7-0丝线结扎该组织并予以切断，以避免术后发生肠道移植物淋巴漏。分离结缔组织，结扎并切断右肾动脉。通过阴茎静脉经静脉注射200单位肝素，对大鼠进行全身肝素化。结扎边缘动脉，并切断空肠-回肠交界处及末端回肠的小肠部分。在肠系膜上动脉（SMA）起始处近端结扎主动脉，于脾静脉汇合处横断门静脉。连同其包含肠系膜上动脉及一段主动脉的血管蒂一并切取移植物。通过主动脉导管，使用连接10毫升注射器的20号静脉导管进行操作。使用3毫升冰冷的威斯康星大学溶液（University of Wisconsin solution，简称UW）灌注移植物。然后，在准备受体大鼠的过程中，用50毫升注射器从AL端向肠腔内灌洗30毫升冷的 cetin 溶液。在受体大鼠手术前，将移植物保存在冷的UW溶液中。动物用2%异氟烷麻醉后，禁食并自由饮用葡萄糖水溶液24小时。术中给予卡洛芬进行镇痛。剃除腹部毛发，并用皮肤准备液对皮肤消毒三次。然后行正中切口。用生理盐水浸湿的纱布包裹受体肠管，并将其置于受体胸部。使用无菌纱布和棉片钝性分离腹膜后间隙，暴露肾血管下方的腹主动脉和下腔静脉，向下至髂血管水平，以避免类似八的失血。来自主动脉和下腔静脉的小腰支和脊柱支，伴有微小血管。使用血管夹。在左侧肾血管远端、近端及髂总分叉上方夹闭主动脉和下腔静脉。远端切开两血管的前壁，并冲洗出任何残留的血液。将移植物转移至术野，对移植物的主动脉节段与受体的肾下腹主动脉进行端对端吻合。使用连续的10-0聚丙烯缝线。将移植物置于腹腔右侧，缝合动脉吻合口的后壁，并结扎下方的固定缝线。然后将移植物翻转至腹部左侧，暴露吻合口的前壁，同时保持移植物位于腹部左侧。通过放置一根下方固定缝线开始门腔静脉吻合。随后使用10-0普罗林线，在移植物门静脉与受体下腔静脉之间行端对端吻合。然后从外部固定前壁缝线，确保所有缝合线就位后，先移除远端血管钳，再移除上方血管钳。使用棉签直接压迫以控制任何吻合口出血。结扎肠系膜血管后，检查移植物是否出现均匀且迅速的再灌注，切除受体全部小肠，保留近端空肠2至3厘米和远端回肠1厘米，使用约16针连续6-0 Monocryl缝线完成吻合。通过近端和远端的端对端肠道吻合恢复肠道连续性。用生理盐水冲洗腹腔直至清洁。腹腔内注射2 mL生理盐水以补充液体。然后使用3-0号薇乔线缝合肌肉层，并连续缝合皮肤以关闭腹部切口。为促进快速恢复，将大鼠置于加热灯下。术后第二天，在最初24小时内每8小时皮下注射一次生理盐水和葡萄糖溶液，期间允许动物自由饮水和葡萄糖溶液，但保持禁食状态；移植手术后，恢复动物自由进食大鼠饲料和饮水。术后第一天后，动物的一般状态、毛发状况和黏膜外观应恢复正常，活动水平应恢复至术前状态。然而，无精打采或异常行为提示可能存在早期手术并发症。该图显示了原位小肠移植术后的大鼠平均体重变化。术后初期体重最多可下降20%，随后大鼠通常在术后第6至第8天开始恢复体重，到术后第14天左右通常可恢复至术前体重的90%左右。在进行该操作时，重要的是尽量减少失血并缩短热缺血时间。在技术成熟后，成功所需的时间得以缩短。该技术为肠道移植领域的研究人员利用啮齿类动物模型探索急性和慢性排斥反应奠定了基础。

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医学

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