Name: LeafJ:ImageJ的插件半自动叶形状测量 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 14 s
Description: 学习使用LeafJ插件进行高通量叶片表型分析，通过平板扫描仪成像和ImageJ图像处理实现自动化测量。该方法可快速获取叶片形状、细胞大小和数量等定量数据，显著提升植物突变体研究的效率与准确性。

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LeafJ 由 JNM 在 Gladstone 研究所 Katherine Pollard 博士实验室访学期间编写。
本工作获得了美国国家科学基金会的资助（资助号 IOS-0923752）。

1. 植物材料
请注意，本植物生长方案旨在检测避荫反应。您可以在您偏好的条件下培养植物。
<ol>
	<li>将拟南芥（Arabidopsis thaliana）种子撒在已吸水的滤纸上，放入9 cm培养皿中，于4 °C黑暗条件下放置（春化处理）四天。</li>
	<li>将这些培养皿转移至模拟阳光条件下培养：光合有效辐射（PAR）为80–100 μE，并补充远红光，使红光/远红光（R:FR）比值达到1.86。采用长日照条件（16小时光照/8小时黑暗）和恒定22 °C温度，培养三天以促进种子萌发。</li>
	<li>将已萌发的幼苗移栽至土壤中，并继续在阳光条件下培养植株。对于大规模实验，建议使用 Microsoft Word 2004（或更高版本）中的“数据合并管理器”制作标签，为每株植物准备小型标签以便标识。</li>
	<li>移栽至土壤后第11天，将一半植株转移至遮荫条件：除补充远红光使R:FR比值降至0.52外，其余条件与阳光条件相同。</li>
	<li>再经过12天培养后，植株即可进行叶片成像。此时较老的叶片已完全成熟，而较年轻的叶片仍处于扩展阶段，从而可捕捉到叶片发育过程的一个快照。您可根据实验需求选择不同的发育时期。</li>
</ol>
2. 拍摄分离的叶片图像
<ol>
	<li>准备标有植物基因型和生长条件的透明片，每张透明片上包含五个矩形区域，每个区域对应一株植物的叶片。可使用 Microsoft Excel 打印带有标签的统一网格。</li>
	<li>分离 26 天龄植物的叶片。</li>
	<li>使用平板扫描仪以 600 dpi 的分辨率扫描叶片。注意：一株植物的叶片应垂直放置在透明片夹层中的黑色窗口区域内。避免叶片接触黑色窗框或相互重叠，否则会在后续步骤中产生误差。</li>
</ol>
3. 使用 LeafJ 进行叶片图像分析
<ol>
	<li>从 <a href="http://malooflab.openwetware.org/Resources.html#Software_Tools" target="_blank">http://malooflab.openwetware.org/Resources.html#Software_Tools</a> 或 <a href="http://bitbucket.org/jnmaloof/leafj" target="_blank">http://bitbucket.org/jnmaloof/leafj</a> 下载 ImageJ。将 LeafJ.jar 文件拖入 ImageJ 的插件文件夹中。</li>
	<li>在 ImageJ 1.45s 或更高版本中打开图像文件14。</li>
	<li>通过“图像 &gt; 颜色 &gt; 拆分通道”将图像拆分为三个颜色通道（红、绿、蓝），并对蓝色通道中的图像应用阈值。</li>
	<li>使用矩形工具选择来自同一植株的所有叶片（图 1A）。</li>
	<li>从插件菜单中选择“LeafJ”。</li>
	<li>在弹出的对话框中选择该植株的注释信息。可通过点击“编辑这些选项”来修改此处显示的默认值。</li>
	<li>运行 LeafJ 插件后，在点击“确定”按钮之前，可在感兴趣区域（ROI）管理器窗口中编辑已追踪的线条（如需要；图 1B）。此步骤使用触摸屏平板设备（例如 iPad）较为方便。可通过 Air Display 软件将 iPad 连接至计算机作为外接显示器使用。</li>
	<li>将测量结果及相关信息（文件名、开花时间、解剖者、测量者等）导出至 Microsoft Excel 或类似软件。</li>
</ol>
4. 在 ImageJ 中进行叶细胞图像分析
<ol>
	<li>扫描后（步骤2），按照参考文献15所述方法固定已解剖的叶片。FAA固定的叶片可在4 °C下保存至少6个月。</li>
	<li>将FAA固定液更换为水合氯醛溶液以透明叶片，并在显微观察前孵育1~2小时15。</li>
	<li>将叶片置于显微镜载玻片上，使表皮毛朝上。使用复式显微镜的40倍物镜，对每片叶片主脉两侧中央区域的叶肉层进行成像，避免拍摄靠近表皮毛或叶脉的细胞。</li>
	<li>借助触摸屏平板和手写笔（如步骤3所述），使用ImageJ的ROI管理器工具勾勒叶细胞轮廓。细胞图像分析采用ImageJ内置功能，无需使用LeafJ插件。</li>
</ol>

<ol><li>Furbank, R. T., Tester, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenomics--technologies+to+relieve+the+phenotyping+bottleneck%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Phenomics--technologies to relieve the phenotyping bottleneck.</a> Trends Plant Sci. 16, 635-644 (2011).</li>
<li>Berger, B., Parent, B., Tester, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+shoot+imaging+to+study+drought+responses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">High-throughput shoot imaging to study drought responses.</a> J. Exp. Bot. 61, 3519-3528 (2010).</li>
<li>Borevitz, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+genetic+variation+for+growth+and+development+revealed+by+high-throughput+phenotyping+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22G3+%28Bethesda%29%22%5BJournal%5D)">Natural genetic variation for growth and development revealed by high-throughput phenotyping in Arabidopsis thaliana.</a> G3 (Bethesda). 2, 29-34 (2012).</li>
<li>Albrecht, D. R., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-content+behavioral+analysis+of+Caenorhabditis+elegans+in+precise+spatiotemporal+chemical+environments%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">High-content behavioral analysis of Caenorhabditis elegans in precise spatiotemporal chemical environments.</a> Nat. Methods. 8, 599-605 (2011).</li>
<li>Chitwood, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Native+environment+modulates+leaf+size+and+response+to+simulated+foliar+shade+across+wild+tomato+species%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Native environment modulates leaf size and response to simulated foliar shade across wild tomato species.</a> PLoS ONE. 7, e29570(2012).</li>
<li>Chitwood, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+developmental+trajectory+of+leaflet+morphology+in+wild+tomato+species%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The developmental trajectory of leaflet morphology in wild tomato species.</a> Plant Physiol. 158, 1230-1240 (2012).</li>
<li>Casal, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shade+Avoidance%5BTitle%5D)+AND+%22The+Arabidopsis+Book%22%5BJournal%5D)">Shade Avoidance.</a> The Arabidopsis Book. , e0157(2012).</li>
<li>Smith, H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSmith%2C+H+%22Photomorphogenesis+in+Plants%22">Photomorphogenesis in Plants</a>. Kendrick, R. E., Kronenberg, G. H. M. , Kluwer Academic Publishers. 377-416 (1994).</li>
<li>Iwata, H., Ukai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SHAPE%3A+a+computer+program+package+for+quantitative+evaluation+of+biological+shapes+based+on+elliptic+Fourier+descriptors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hered%22%5BJournal%5D)">SHAPE: a computer program package for quantitative evaluation of biological shapes based on elliptic Fourier descriptors.</a> J. Hered. 93, 384-385 (2002).</li>
<li>Bylesjo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LAMINA%3A+a+tool+for+rapid+quantification+of+leaf+size+and+shape+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">LAMINA: a tool for rapid quantification of leaf size and shape parameters.</a> BMC Plant Biol. 8, 82(2008).</li>
<li>Weight, C., Parnham, D., Waites, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LeafAnalyser%3A+a+computational+method+for+rapid+and+large-scale+analyses+of+leaf+shape+variation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">LeafAnalyser: a computational method for rapid and large-scale analyses of leaf shape variation.</a> Plant J. 53, 578-586 (2008).</li>
<li>Backhaus, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LEAFPROCESSOR%3A+a+new+leaf+phenotyping+tool+using+contour+bending+energy+and+shape+cluster+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytol%22%5BJournal%5D)">LEAFPROCESSOR: a new leaf phenotyping tool using contour bending energy and shape cluster analysis.</a> New Phytol. 187, 251-261 (2010).</li>
<li>Tsukaya, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+Leaf-shape+determination%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of Leaf-shape determination.</a> Annual Review of Plant Biology. 57, 477-496 (2006).</li>
<li>Abramoff, M. D., Magalhaes, P. J., Ram, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Image+Processing+with+ImageJ%5BTitle%5D)+AND+%22Biophotonics+International%22%5BJournal%5D)">Image Processing with ImageJ.</a> Biophotonics International. 11, 36-42 (2004).</li>
<li>Horiguchi, G., Fujikura, U., Ferjani, A., Ishikawa, N., Tsukaya, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+histological+analysis+of+leaf+mutants+using+two+simple+leaf+observation+methods%3A+identification+of+novel+genetic+pathways+governing+the+size+and+shape+of+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22Plant.+J%22%5BJournal%5D)">Large-scale histological analysis of leaf mutants using two simple leaf observation methods: identification of novel genetic pathways governing the size and shape of leaves.</a> Plant. J. 48, 638-644 (2006).</li>
<li>Horiguchi, G., Ferjani, A., Fujikura, U., Tsukaya, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordination+of+cell+proliferation+and+cell+expansion+in+the+control+of+leaf+size+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Plant.+Res%22%5BJournal%5D)">Coordination of cell proliferation and cell expansion in the control of leaf size in Arabidopsis thaliana.</a> J. Plant. Res. 119, 37-42 (2006).</li>
<li>Pierik, R., de Wit, M., Voesenek, L. A. C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth-mediated+stress+escape%3A+convergence+of+signal+transduction+pathways+activated+upon+exposure+to+two+different+environmental+stresses%5BTitle%5D)+AND+%22New.+Phytol%22%5BJournal%5D)">Growth-mediated stress escape: convergence of signal transduction pathways activated upon exposure to two different environmental stresses.</a> New. Phytol. 189, 122-134 (2011).</li>
</ol>

未声明任何利益冲突。

我们的“LeafJ”插件能够半自动地测量叶柄长度，使测量通量比手动测量提高近6倍。叶柄长度是避荫反应（SAS）的一个重要指标，也是其他多种现象的标志性参数，例如耐淹性和负向性生长17。因此，该插件可能对广泛的植物研究领域科研人员具有实用价值。
我们的插件基于一个成熟的 Java 开源软件 ImageJ 实现，因此可轻松进行跨平台安装。由于 ImageJ 已拥有大量使用 Java 和 ImageJ 宏语言编写的插件库，LeafJ 插件也具备易于修改的优势（<a href="http://imagejdocu.tudor.lu/doku.php?id=tutorial:start" target="_blank">http://imagejdocu.tudor.lu/doku.php?id=tutorial:start</a>）。目前我们仅测试了拟南芥（Arabidopsis）的叶片，但经过适当修改后，本插件中用于叶柄与叶片边界检测的算法也可适用于其他双子叶植物的叶片。
在测试 Leaf...

<table><tbody><tr><td>远红光LED灯 </td><td>Orbitec</td><td>定制</td><td></td></tr><tr><td>透明度测量仪</td><td>IKON</td><td>HSCA/5</td><td></td></tr><tr><td>扫描仪 </td><td>Epson</td><td>Epson Perfection V700 PHOTO</td><td></td></tr><tr><td>Image J </td><td>NIH</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://rsbweb.nih.gov/ij/&quot; target=&quot;_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/&lt;/a&gt; </td></tr><tr><td>LeafJ </td><td>定制</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://www.openwetware.org/wiki/Maloof_Lab&quot; target=&quot;_blank">http://www.openwetware.org/wiki/Maloof_Lab&lt;/a&gt; </td></tr><tr><td>Air Display</td><td>Avatron Software Inc.</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://avatron.com/&quot; target=&quot;_blank">http://avatron.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>iPad2 </td><td>Apple Inc.</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://www.apple.com/&quot; target=&quot;_blank">http://www.apple.com/&lt;/a&gt;</td></tr></tbody></table>

leafj：一款用于半自动叶形测量的 imagej 插件

LeafJ: An ImageJ Plugin for Semi-automated Leaf Shape Measurement

高通量表型分析（表型组学）是连接基因与其功能的有力工具（参见综述1及近期实例2-4）。叶片是主要的光合作用器官，其大小和形状在植物个体发育和环境变化过程中均存在差异。因此，叶片形态学研究需要对大量叶片的多个参数进行测量，而半自动化的表型组学工具5,6最适合完成此类任务。冠层遮荫是一种重要的环境信号，会影响植物构型和生活史；植物对此类信号的一系列响应统称为避荫综合征（shade avoidance syndrome, SAS）7。在SAS响应中，遮荫诱导的叶柄伸长以及叶片面积的变化尤为适合作为评估指标8。迄今为止，已有的叶片形态分析程序（例如 SHAPE9、LAMINA10、LeafAnalyzer11、LEAFPROCESSOR12）能够测量叶片轮廓并分类叶片形状，但无法输出叶柄长度。由于缺乏大规模叶柄测量系统，制约了表型组学方法在SAS研究中的应用。本文中，我们介绍一种新开发的ImageJ插件——LeafJ，可快速测量模式植物Arabidopsis thaliana的叶柄长度及叶片参数。对于少数需要手动校正叶柄与叶片边界的情况，我们使用了触摸屏平板设备。此外，叶细胞形状和叶细胞数量是决定叶片大小的重要因素13。除LeafJ外，我们还提供了一套利用触摸屏平板测量细胞形状、面积和大小的实验方案。我们的叶片性状测量系统不仅适用于避荫反应研究，还将加速多种突变体和筛选植株的叶片表型分析。

1. 显示叶柄与叶片边界估计值及其测量窗口的叶片图像
LeafJ 最有用的功能之一是能够自动检测叶片与叶柄的边界（图1）。LeafJ 的算法工作流程如下：利用 ImageJ 内置的 ParticleAnalyzer 功能，识别用户选定区域内的叶片并确定其方向。对于每片叶子，沿其整个主轴方向测定叶片的宽度。然后使用滑动窗口法计算主轴上每一位置的宽度变化（以目标位置远端七个位置的平均宽度减去近端七个位置的平均宽度）。叶柄/叶片边界被定义为从叶基起始后，宽度变化超过所有计算出的宽度差值的90%的第一个位置。LeafJ 还进行了额外的验证以提高该判断的可靠性；具体包括：1）该位置的宽度必须超过整个长度中最小5%的宽度值（以避免在叶柄基部产生异常判断）；2）目标位置近端区域的宽度无显著变化；3）目标位置远端20%处的叶片宽度至少比该位置宽150%（若目标位置确为边界，则其远端20%应已进入叶片部分，因此宽度明显更大）。
一旦 LeafJ 确定了叶柄/叶片边界，便使用 ImageJ 内置的类和方法来测定叶片面积...

展示用于高通量叶片测量的关键方法。这些方法可用于加速对大量植物突变体的研究，或基于叶片表型对植物进行筛选时的表型分析。

LeafJ：一款用于半自动叶形测量的 ImageJ 插件

高通量表型分析（表型组学）是连接基因与其功能的有力工具（参见综述1及近期实例2-4）。叶片是……

本实验的目的是实现叶片形态测量的自动化，以适用于高通量实验。首先通过解剖叶片并使用平板扫描仪对其进行成像来完成。实验的第二步是使用 Leaf J 插件来识别并测量叶片。第三步是制备叶片以进行显微观察，并使用复式显微镜对叶片进行拍照。最后一步是使用触控平板在所获得的图像上描记细胞轮廓线。最终，通过这一图像分析组合方法，结果可以展示叶片形态、细胞大小和细胞数量的差异。与现有方法相比，该技术的主要优势在于其速度，比人工测量快约六倍。人们已知该方法可能存在困难，因为叶片的正确放置对下游分析至关重要，而且将叶片固定在载玻片上在技术上具有挑战性。当我意识到我们有大约 15,000 片叶子需要分析时，我首次萌生了这种方法的想法。手动完成这项工作将耗时数月，且极其枯燥乏味，展示植物解剖技术可能会导致神经疲劳。我实验室的一名科研人员首先准备 8.5 英寸 × 11 英寸的透明胶片。每张胶片应划分为矩形框，大小需足以容纳一株植物的叶片，将第二张透明胶片贴在已打印的胶片上，作为覆盖层以防止叶片干燥。标注植物、基因型和生长条件。解剖第26天的植株叶片。将叶片按从最年轻到最老的顺序整齐排列在透明胶片上。将叶片垂直放置在框架内，避免接触边框或与其他叶片重叠。否则，在分析过程中会出现问题。重要的是将叶片垂直定向，不接触框架，不相互重叠。叶片摆放完毕后，用第二张空白透明片和支架将其夹紧，以保持叶片平整。然后使用平板扫描仪生成图像，分辨率至少为每英寸600点。首先安装插件，下载ImageJ，将leaf jja文件拖入ImageJ的plugins文件夹中。当使用ImageJ时，leaf J插件即可使用。在 ImageJ 中打开叶片图像文件。确保 ImageJ 版本为 1.45s 或更高版本。通过点击“图像”→“颜色”→“拆分通道”，将图像拆分为红、绿、蓝三个颜色通道。接着，对蓝色通道中的图像应用阈值。现在使用矩形选择工具选中一株植物的全部叶片，然后选择叶片 J 插件。该插件将弹出一个设置框，允许设置实验的各种条件，例如实验组和基因型。在继续操作前，请先编辑这些选项，然后为所选叶片所在的感兴趣区域设定相应条件，并提供一个描述性名称。按继续，J 软件将自动为每片叶子生成具有唯一性 ROI 的图像轮廓。如有需要，J 程序会将叶片拟合为椭圆，并计算该椭圆的长轴和短轴。可通过 ROI 管理器窗口编辑轮廓线。将触摸屏平板电脑连接为外部显示器可能对本操作有所帮助。在正确设定边界后，通过按下按钮执行分析。好的，现在叶片 J 会输出花瓣长度以及叶片的各种几何参数。最后，将测量结果及相关信息导出至电子表格中。扫描叶片后，用F-A-A-F-A固定液固定叶片。固定后的叶片可在4摄氏度下保存长达六个月。在成像前一到两小时，将 FAA 固定液更换为氯酸溶液，以透明化叶片。透明化完成后，将叶片置于载玻片上，使表皮毛朝上，并使用复式显微镜在 40 倍放大倍数下，对每片叶片主脉两侧中央区域的 mesil 层进行成像，注意避开靠近表皮毛或叶脉的细胞。为避免图像处理困难，在制片时务必去除载玻片上的所有气泡，并在下一步中获取清晰对焦的图像。在采集到所需的图像后，使用 ImageJ 打开其中一张图像，并借助触摸屏平板和触控笔，利用 ImageJ 的 ROI 管理器工具描记叶片细胞的轮廓。此过程不使用 LEAF J 插件。在将 LEAF J 用于实验之前，已将其分析的准确性和速度与经验丰富的研究人员进行比较。总体而言。LEAF J 完成分析的速度比人工计算快 5.7 倍，且两种方法的数据对比显示，在所比较的 3,532 个测量参数中，所有参数的结果均高度相关。共有 172 个数据点为离群值。在这些离群值中，由 LEAF J 插件导致的仅有 29 个，远少于由人为误差导致的 143 个。在手动测量过程中，LEAF J 已经经过进一步更新，以减少错误数量。基于对 LEAF J 测量结果的信心，采用混合效应模型，利用该工具对避荫反应进行了分析。其中，处理方式和叶片序号作为固定效应，重复实验作为随机效应。许多参数受到遮荫处理的显著影响。此外，部分参数则未受到遮荫处理的显著影响。通过使用平板辅助的细胞参数图像分析，共检测了8,629个细胞，这些细胞来自224株植物的877片叶片，涵盖拟南芥ANA的67种基因型。随后将基因型分为六类。大多数基因型具有正常的细胞大小和细胞数量，但有几种基因型表现出细胞大小增大而细胞数量正常。在进行该实验操作时，尽管在植物培养过程中采用随机化和实验设计非常重要，但请务必注意，接触甲醛和盐酸可能具有极高危险性。因此，在操作过程中应采取佩戴手套、在通风橱内操作等防护措施。观看本视频后，您应能够充分理解如何在您自己的实验条件下，利用本实验方案对叶片和细胞形态表型进行高通量筛选。其他方法（如RNA测序）可用于回答哪些基因有效调控形态发生等问题。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

LeafJ：ImageJ的插件半自动叶形状测量

我们开发了一款用于分析神经元形态的计算机程序。结合两种现有的开源分析工具，该程序可进行Sholl分析，并确定神经突的数量、分支点数量以及神经突末端数量。这些分析能够揭示神经突形态的局部变化。...

多尺度数字化神经元形态的自动Sholl分析

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计算机辅助的大规模胰岛质量、大小分布及结构的可视化与定量分析

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使用 ImageJ 插件对细胞计数过程进行自动化定量与分析

本文介绍了两种用于“时钟扫描”图像分析的新型 ImageJ 插件。这些插件扩展了原始 Visual Basic 6 程序的功能，更重要的是，通过将其集成到免费的图像分析软件包 ImageJ...

用于图像分析的时钟扫描方案：ImageJ 插件

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小胶质细胞是大脑中的免疫细胞，可通过形态学变化来监测并响应大脑生理状态的改变，这些形态变化可进行定量评估。本方案概述了一种基于 ImageJ...

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利用开源软件流程测量琼脂固定化活性污泥颗粒的形态与大小

本文描述了从MCF7细胞融合单层的共聚焦图像中定量分析1）黏着斑的大小和数量，以及2）细胞形态指数及其分布。...

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玉米叶片原基深陷于叶鞘中且呈卷曲状，难以进行研究。本文介绍了制备玉米叶片原基横切面和展平的整体装片的方法，适用于荧光和共聚焦成像。...

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利用数字叶形态学和单位叶面积质量通过化石叶片重建陆地古气候与古生态

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