Name: 从环境中自然产生的趋磁细菌的采集，分离和富集 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-15T11:55:00.000+00:00
Duration: 5 min 57 s
Description: 学习从淡水环境中采集、分离和富集趋磁细菌的方法。利用磁铁的磁性吸引和毛细管赛道技术，结合光学显微镜和透射电子显微镜进行形态学表征。该方法为研究趋磁细菌的生态学特征和生物技术应用提供了简便有效的实验手段。

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本工作获得了美国国家科学基金会（EAR-0920299 和 EAR-0745808）的资助；美国国家科学基金会东亚及太平洋暑期研究所项目；美国地质学会研究资助计划；以及俄亥俄州立大学校友研究生研究与奖学金项目的支持。我们感谢编辑和两位匿名审稿人提出的富有见地的评论。

1. 结核分枝杆菌收集
<ol>
	<li>在选择淡水环境以采集趋磁细菌（MTB）时，通常最好从具有松软泥质沉积层的池塘或缓流溪流开始。在本演示中，我们在俄亥俄州立大学（OSU）校园内的奥伦坦吉河（Olentangy River）边缘采集了样本（美国俄亥俄州哥伦布市）。尽管该地点便于我们的演示，但此处描述的实验方案适用于任何水生环境。本方案中使用的材料见表1。选择水深在10至100 cm之间的地点，使用透明带螺口盖的容器采集最表层的沉积物。将沉积物和水一同舀入容器中，使容器内沉积物占总体积的三分之一至二分之一，其余空间充满水。在容器完全浸没于水中时将其注满，然后立即用螺口盖紧密封。无需搅拌沉积物。用毛巾擦干容器外壁，随后将样本带回实验室。无需急于将样本送回实验室。我们曾将MTB样本置于塑料容器中，在野外存放数天后再带回实验室。只要将样本储存在野外阴凉避光处，MTB可保持活性数周至数月。</li>
	<li>样本送回实验室后，松开瓶盖但仍保留其覆盖在容器上，以减少蒸发。将容器置于室温下的暗室、抽屉中，或用铝箔完全包裹容器以避光。让沉积物和细小颗粒在静置数小时至数天的过程中完全沉降至容器底部。无需搅拌沉积物，因为MTB更倾向于不受干扰的环境。塑料容器的透明壁面可便于观察颗粒是否已完全沉降。根据样本情况，MTB可在样本中存活数月之久。</li>
</ol>
2. 结核分枝杆菌分离
<ol>
	<li>当准备分离磁小体细菌（MTB）时，将磁铁放置在塑料容器的两侧，位置大约在沉积物-水界面以上1 cm处（图1A）。注意不要扰动容器底部的沉积物。将一根条形磁铁的南极置于容器的一侧，另一根条形磁铁的北极置于对侧（图1A）。几乎任何类型的磁铁均可使用，例如磁力搅拌子或大型冰箱磁铁。可使用任意物体将磁铁固定在沉积物-水界面上方的合适高度。我们发现将磁铁放置在纸板或塑料盒顶部效果最佳，但也可将磁铁用胶带固定在塑料容器外壁。静置30分钟至数小时，使细菌游向磁铁。</li>
	<li>使用无菌移液管小心地从容器内靠近南极条形磁铁位置处（适用于在北半球采集的样品）吸取水样（图1A）。该水样应含有被南极磁铁吸引的MTB。接下来应使用毛细管富集装置进一步富集MTB。</li>
</ol>
3. 结核分枝杆菌跑道实验
<ol>
	<li>为了富集样本中的趋磁细菌，需要使用毛细管赛道（图1B和1C）。这些赛道需在从透明塑料容器中分离细胞之前制备。</li>
	<li>使用一支5.75英寸（146 mm）的玻璃巴斯德移液管制作赛道。用金刚石笔或锉刀切去移液管顶部，移液管的长度并非关键，但应能容纳约1–2 mL水。接着，使用本生灯将管尖熔化，使其密封（图1C）。最终的移液管应一端开放，另一端密封。</li>
	<li>制备多个此类赛道，并进行高压灭菌。此外，还需对棉花和数根长金属针进行高压灭菌。</li>
	<li>使用连接无菌滤器注射器的长金属针，将从图1A所示沉积物-水界面附近采集的过滤水样加入已灭菌的赛道中。滤膜孔径应为0.22 mm，以去除水中的碎屑和污染物。必须确保玻璃毛细管内无任何气泡。</li>
	<li>用无菌棉花堵住赛道底部（图1B）。使用金属针将棉花推至赛道的密封端，使其距离密封端0.5–1 cm（图1C）。</li>
	<li>使用无菌移液管，将含趋磁细菌的水样（来自第2.2节）加入已准备好的趋磁细菌赛道的样品储液端（开放端）（图1B）。</li>
</ol>
4. 结核分枝杆菌富集
<ol>
	<li>当样品液充满泳道后，将其侧放在水平表面（例如，实验台）上，并将条形磁铁的南极（在北半球）置于泳道封闭端附近（例如，靠近泳道尖端）（图1B和1C）。</li>
	<li>等待5至30分钟，使趋磁细菌（MTB）穿过棉塞。随后应收集泳道尖端附近的液体。等待时间过长可能会引入污染物，例如其他可运动的细菌，进入毛细管尖端。可选地，可使用光学显微镜观察泳道尖端，查看趋磁细菌在泳道尖端的聚集情况。这有助于确定趋磁细菌穿过棉塞所需的时间。</li>
	<li>轻轻使用金刚石刀在棉塞附近划出小刻痕，然后折断泳道的末端。</li>
	<li>使用带有细针头（25或27号）的1 ml注射器从泳道尖端吸取液体。此液体样品中应已富集了趋磁细菌（MTB）。</li>
</ol>
5. 通过光学显微镜观察结核分枝杆菌
<ol>
	<li>将富集后的 MTB 样本一滴（10–20 μl）置于盖玻片上。</li>
	<li>迅速将盖玻片翻转，使液滴朝下并悬挂在盖玻片下方。</li>
	<li>将盖玻片放置在位于载玻片上的 O 形圈上。O 形圈的直径应略小于盖玻片（约 1 cm；图 2）。</li>
	<li>将此悬滴置于光学显微镜载物台上，聚焦于液滴的一侧边缘。使用 60 倍干镜效果很好，因为大多数此类物镜具有较高的数值孔径（NA；例如，0.93），且无需使用油镜，而油镜在悬滴法中难以操作（图 2）。</li>
	<li>将条形磁铁的南极靠近悬滴，MTB 将开始向靠近磁铁一侧的液滴边缘迁移（图 3）。数分钟内，大量 MTB 应已聚集在液滴边缘（图 3）。通过反转磁铁的磁极并观察细菌向相反方向游动，可验证这些细菌具有磁性。</li>
</ol>
6. 透射电子显微镜（TEM）观察结核分枝杆菌
<ol>
	<li>将一滴富集后的磁小体细菌（约 20 μl）置于铜网上，静置 10 分钟，使细菌沉降。</li>
	<li>用干净的滤纸吸去多余的液体。</li>
	<li>可选步骤：铜网可用 2% 醋酸铀、2% 磷钨酸（pH 7.2）或 2.5% 钼酸钠进行负染色7, 8, 9。具体操作是在铜网与富集的磁小体细菌孵育后，立即将其置于染色液液滴上。染色时间根据所用染色剂的不同而有所变化，随后用干净的滤纸吸去多余液体。</li>
	<li>使用透射电子显微镜（TEM，图 4）观察磁小体细菌。本研究所用样品中，磁小体细菌吸附于 Formvar 稳定并碳镀膜的 200 目铜网（Ted Pella #01800）。将铜网碳面朝下置于细胞悬液液滴上，孵育时间最长为 10 分钟，随后将铜网在水滴上放置 30 秒进行一次清洗。染色时，将铜网置于 2% 醋酸铀液滴（Ted Pella #19481）中 30 秒至 5 分钟，然后用滤纸彻底干燥。使用 FEI Tecnai Spirit（80 kV）或 FEI Tecnai F20（采用 200 kV 高角环形暗场扫描透射电子显微镜模式）进行 TEM 分析。</li>
</ol>

<ol><li>Blakemore, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetotactic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Magnetotactic bacteria.</a> Science. 190, 377-379 (1975).</li>
<li>Blakemore, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetotactic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Reviews+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Magnetotactic bacteria.</a> Annual Reviews in Microbiology. 36, 217-238 (1982).</li>
<li>Bazylinski, D. A., Frankel, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+Biomineralization+of+Magnetite+%28Fe3O4%29+and+Greigite+%28Fe3S4%29+in+a+Magnetotactic+Bacterium%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+and+Environmental+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Controlled Biomineralization of Magnetite (Fe3O4) and Greigite (Fe3S4) in a Magnetotactic Bacterium.</a> Applied and Environmental Microbiology. 61, 3232-3239 (1995).</li>
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<li>Simmons, S. L., Bazylinski, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((South-seeking+magnetotactic+bacteria+in+the+Northern+Hemisphere%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">South-seeking magnetotactic bacteria in the Northern Hemisphere.</a> Science. 311, 371-374 (2006).</li>
<li>Wolfe, R., Thauer, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+%27capillary+racetrack%27+method+for+isolation+of+magnetotactic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiology+Letters%22%5BJournal%5D)">A 'capillary racetrack' method for isolation of magnetotactic bacteria.</a> FEMS Microbiology Letters. 45, 31-35 (1987).</li>
<li>Rodgers, F. G., Blakemore, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intercellular+structure+in+a+many-celled+magnetotactic+prokaryote%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Intercellular structure in a many-celled magnetotactic prokaryote.</a> Archives of Microbiology. 154, 18-22 (1990).</li>
<li>Moench, T. T., Konetzka, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+the+isolation+and+study+of+a+magnetotactic+bacterium%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Microbiology%22%5BJournal%5D)">A novel method for the isolation and study of a magnetotactic bacterium.</a> Archives of Microbiology. 119, 203-212 (1978).</li>
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<li>Li, J., Pan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomineralization%2C+crystallography+and+magnetic+properties+of+bullet-shaped+magnetite+magnetosomes+in+giant+rod+magnetotactic+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Earth+and+Planetary+Science+Letters%22%5BJournal%5D)">Biomineralization, crystallography and magnetic properties of bullet-shaped magnetite magnetosomes in giant rod magnetotactic bacteria.</a> Earth and Planetary Science Letters. 293, 368-376 (2010).</li>
<li>Oestreicher, Z., Valerde-Tercedor, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetosomes+and+magnetite+crystals+produced+by+magnetotactic+bacteria+as+resolved+by+atomic+force+microscopy+and+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Micron%22%5BJournal%5D)">Magnetosomes and magnetite crystals produced by magnetotactic bacteria as resolved by atomic force microscopy and transmission electron microscopy.</a> Micron. 43, 1331-1335 (2012).</li>
</ol>

未声明任何利益冲突。

趋磁细菌并非在所有水生环境中都必然存在8，但当其存在时，其浓度通常约为每毫升100至1,000个细胞2。为了通过光学显微镜观察趋磁细菌，样品中至少需要约50个细菌/毫升8。如果样品中没有或仅有极少量的趋磁细菌，则需要选择新的环境采样点采集样品，或者尝试下一部分中讨论的一种或多种富集技术。
首先，应尝试使用一个大型塑料桶从环境中采集更多的沉积物8。如果需要大量不可培养的MTB，则此方法尤为有用。根据环境样本的不同，在采集样本后可能无法立即获得浓度为50个细菌/ml的MTB样本。因此，当将环境样本带回实验室后，建议在使用条形磁铁分离MTB之前，先让样本适应实验室条件一段时间。这一适应期有助于细菌群落成熟并重新增殖，从而提高MTB的浓度。另一种常可获得更高浓度MTB样本的简单技术是将条形磁铁放置在样本容器的侧壁图1A）更长的时间（例如，数天）。这将使分枝杆菌有更充足的时间迁移至磁铁处。另一种可能有效的最终技术是使用多个环形培养皿（图...

<table><tbody><tr><td>载玻片</td><td>Fisher Scientific</td><td>S95933</td><td></td></tr><tr><td>玻璃巴斯德吸管</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-6A</td><td></td></tr><tr><td>O型圈</td><td>五金店</td><td></td><td></td></tr><tr><td>盖玻片</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-542B</td><td></td></tr><tr><td>条形磁铁</td><td>Fisher Scientific</td><td>S95957</td><td></td></tr><tr><td>容器</td><td>任意</td><td></td><td>任何可密封且容积不少于0.5 L的塑料或玻璃容器</td></tr><tr><td>棉花</td><td>任意</td><td></td><td></td></tr><tr><td>配备60倍干镜的显微镜</td><td>Zeiss</td><td></td><td>60倍干镜并非绝对必要，但可在不使用浸油的情况下获得较高的数值孔径（NA）</td></tr><tr><td>金刚石刻划笔</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-675</td><td></td></tr><tr><td>0.22 mm 滤膜</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-719C</td><td></td></tr><tr><td>1 ml 注射器</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9788564</td><td></td></tr><tr><td>微量离心管</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-681-320</td><td></td></tr><tr><td>Formvar/碳支持膜，200目铜网</td><td>Ted Pella Inc.</td><td>01800</td><td></td></tr><tr><td>醋酸铀酰</td><td>Ted Pella Inc.</td><td>19481</td><td></td></tr><tr><td>Tecnai Spirit 透射电子显微镜</td><td>FEI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tecnai F20 扫描/透射电子显微镜</td><td>FEI</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

从环境中采集、分离与富集天然存在的趋磁细菌

Collection, Isolation and Enrichment of Naturally Occurring Magnetotactic Bacteria from the Environment

趋磁细菌（MTB）是一类水生微生物，最早于1975年从美国马萨诸塞州盐沼沉积物样品中被显著描述1。此后，人们在全球各地分层的水体和沉积物剖面中均发现了MTB2。所有MTB的一个共同特征是含有磁小体，即细胞内由膜包裹的磁铁矿（Fe3O4）和/或硫铁矿（Fe3S4）或两者兼有的磁性纳米晶体3,4。在北半球，MTB通常被条形磁铁的南极吸引，而在南半球则通常被磁铁的北极吸引3,5。在尝试从环境样品中分离MTB时，可利用这一特性。
富集趋磁细菌（MTB）最常用的方法之一是使用透明塑料容器从自然水源（如淡水池塘）中采集沉积物和水样。在北半球，将条形磁铁的南极置于容器外侧，紧靠沉积物-水界面处的沉积物上方。经过一段时间后，可用移液器从容器内靠近磁铁的位置吸取细菌，再通过毛细管竞速法6结合磁铁进一步富集。富集完成后，可采用悬滴法将细菌置于显微镜载玻片上，用光学显微镜观察，或将其沉积到铜网上，利用透射电子显微镜（TEM）进行观察。
利用该方法，可通过显微镜研究分离的趋磁细菌（MTB），以确定其特征，如运动行为、鞭毛类型与数量、细胞形态、磁性晶体形状、每个细胞中磁小体的数量、磁小体链的数量、纳米矿物晶体的组成以及细胞内囊泡的存在情况。

磁铁是一种有效的工具，可用于分离环境样品中含有的趋磁细菌（MTB）（图1A）。毛细管环道（图1B）利用趋磁细菌的磁性，使其穿过棉塞被富集，从而与环境样品中其他非趋磁微生物分离开来。
<img alt="磁分离过程示意图：使用条形磁铁进行沉积物与水的分离；实验装置。" src="/files/ftp_upload/50123/50123fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 1"> 
图 1. 一个透明塑料瓶，内含从美国俄亥俄州哥伦布市奥伦坦吉河（Olentangy River）采集的沉积物和水样。瓶中约一半为沉积物，一半为水。将条形磁铁的南极置于沉积物上方约1 cm处，持续数小时（A）。从容器内靠近磁铁的一侧移除部分液体后，将其放入毛细管环道中，趋磁细菌（MTB）通过棉塞（箭头）向条形磁铁的南极游动（B）。毛细管环道的放大图，...

我们展示了一种可用于天然水体的趋磁细菌（MTB）收集方法。利用细菌自身的天然磁性，可通过相对简单的装置从沉积物样品中分离并富集趋磁细菌。分离得到的趋磁细菌可进一步通过光学显微镜和电子显微镜进行详细观察。

趋磁细菌（MTB）是一类水生微生物，最早于1975年从盐沼沉积物样品中被显著描述1……

本实验的总体目标是从淡水环境中分离出趋磁细菌。首先从河流或湖泊边缘采集水体沉积物样品，以完成样品收集。第二步是利用条形磁铁从环境样品中分离出所含的趋磁细菌。接下来，使用玻璃毛细管环道和磁铁对趋磁细菌进行富集。最后，利用光学显微镜对趋磁细菌进行表征。最终，通过透射电子显微镜观察细菌的大小和形态，以及其含磁铁矿的磁小体区域。该方法有助于我们理解环境微生物学中的关键问题，例如磁小体在地球上的演化过程，以及趋磁细菌如何合成纳米级磁性颗粒。今天演示该实验步骤的是Zachary a Stryker。Zachary是我实验室的博士研究生。他与我的兄弟和我在俄亥俄州立大学一起工作。在选择淡水环境以采集趋磁细菌（MTB）时，通常最好从具有松软泥质沉积层的池塘或流速缓慢的溪流开始。在本演示中，我们于俄亥俄州哥伦布市俄亥俄州立大学校园内的奥兰德唐吉河（Oland Tangy River）边缘采集了一份样本。选择一处水深在10至100厘米之间的地点，使用一个透明带螺旋盖的容器，取最上层的沉积物并装入容器中，剩余空间用上覆水填充。将容器带回实验室后，在水中盖上盖子，随后稍微松开盖子但仍使其覆盖容器，以减少蒸发，并将容器置于黑暗环境中静置数小时至数天，使沉积物和细小颗粒充分沉降。为富集趋磁细菌（MTB）制备泳道时，首先使用金刚石笔或锉刀切除一支5.75英寸长的玻璃巴斯德移液管的顶部，保留足够空间以容纳一到两毫升的水。接下来，使用酒精灯和燃烧器密封尖端灭菌器。准备若干根带有棉花塞的长金属针。在准备分离MTB时，将磁铁放置于塑料容器的两侧，位置大约在沉积物-水界面以上1厘米处，容器两侧的磁铁分别为南极和北极。注意不要扰动沉淀物。等待30分钟至数小时，使细菌游向磁铁。随后，使用注射器从样品容器中靠近沉淀物与水界面处吸取液体。将滤器连接至注射器，并将金属针头连接至滤器，确保毛细管中无气泡。用针头将过滤后的样品水加入含有无菌棉花和金属针头的高压灭菌毛细管装置中。通过推动棉花进入毛细管，使其距离密封端0.5至1厘米，从而封闭毛细管装置。使用无菌移液管将趋磁细菌从容器中靠近磁铁南极聚集的位置取出，并将含有趋磁细菌的水样加入跑道式装置的开口端。待跑道式装置充满样品液后，将其侧向平放在水平表面上，并将条形磁铁的南极置于跑道式装置密封端附近。静置5至30分钟，使趋磁细菌穿过棉塞迁移。使用钻石刀在棉塞附近轻轻划出一道小划痕，然后折断跑道路末端。用带细针的1毫升注射器从跑道路末端吸取富含MTB的液体。为通过光学显微镜观察MTB，将一滴富集后的样品置于盖玻片上。将盖玻片放置在位于载玻片上的O形环上，此装置称为悬滴。O形环的直径应略小于盖玻片。接下来，将载玻片置于光学显微镜载物台上，聚焦于液滴的一侧边缘。然后，为将趋磁细菌（MTB）吸引至液滴的一侧，将条形磁铁的南极在数分钟内靠近该侧，此时大量MTB应聚集于液滴边缘。若需通过透射电子显微镜（TEM）观察MTB，可将一块经Formvar稳定处理并碳镀覆的200目铜网放置于富集后的菌液液滴上，静置10分钟使样品沉降。将样品在水滴中清洗30秒后，将其置于一滴2%醋酸铀酰溶液中染色30秒至5分钟，然后用滤纸彻底干燥，并在200千伏条件下使用透射电子显微镜分析样品。图中所示为从环境沉积物样品中富集得到的一株趋磁细菌的透射电子显微镜图像。细胞的螺旋形态和磁小体链结构清晰可见，同时还可见一条鞭毛。一旦从环境中收集到趋磁细菌，若操作得当，磁分离技术大约需要三小时。在此步骤之后，可进行其他方法，如16S核糖体RNA分析，从而回答更多问题，例如新发现的趋磁细菌与其他微生物之间的系统发育关系是什么。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

从环境中自然产生的趋磁细菌的采集，分离和富集

微生物真核生物既是南极常年冰封湖泊中光合作用来源碳的重要生产者，也是顶级捕食性物种。本报告描述了一种富集培养方法，用于从南极博尼湖（Lake...

从化学分层的南极湖泊中建立真核微生物富集培养物并评估其碳固定潜力

来源： Le Nagard, L., et al. 培养磁螺菌属（Magnetospirillum）磁性趋磁细菌：菌株MSR-1、AMB-1和MS-1。J. Vis. Exp.

培养Magnetospirillum细菌及其趋磁行为的评估

来源：Watson, D. C., et.al. 大肠杆菌及其他细菌来源细胞外囊泡的可扩展分离与纯化. J. Vis. Exp.

细菌外膜来源的胞外囊泡的分离与富集

从含有细菌群落的湿地土壤来源富集培养物开始。该培养物表现出铁氨氧化（Feammox）活性，即铵的氧化与三价铁还原相耦合，表明已富集到能够进行此种代谢过程的细菌。使用培养基对菌液进行连续稀释。将稀释后的样品划线接种于添加了三价铁和铵盐的测试琼脂平板上。使用缺乏铁离子或铵根离子的对照平板，或含有铁离子和有机碳但不含铵根离子的对照平板，以排除通过非Feammox途径发生的铁还原反应。将所有培养皿置于含有氮气-二氧化碳混合气体的厌氧手套袋中孵育。在测试平板上，仅那些在将铵氧化的同时将三价铁还原为二价铁的细菌才会形成灰色菌落。这证实了富集培养物中存在Feammox细菌。在测试平板上利用Feammox副产物或在对照平板上利用有机碳的其他细菌不会形成灰色菌落。分离灰色菌落并进行转接培养，以供进一步分析。...

从湿地土壤富集培养物中分离氧化铵型铁还原菌

来源：Villela, H. D. M., 等. 用于共生体研究与保护的生物修复及益生菌开发微生物菌株筛选。JoVE 实验视频杂志...

筛选海洋细菌以分离降解污染物的菌株

来源：Villela, H. D. M.，等．用于共生体研究与保护的生物修复与益生菌开发中的微生物菌株筛选．J. Vis. Exp.

海水样品中石油降解海洋细菌的选择性富集与分离

自支撑电化学装置用于现场富集呼吸阳极细菌

我们介绍了一种在两种不同培养基中培养多种Magnetospirillum菌株的方法。Magnetospirillum gryphiswaldense菌株MSR-1在液体培养基和O2浓度梯度半固体培养基中均进行培养，而M. magneticum菌株AMB-1和M.

培养磁螺菌属（Magnetospirillum）的趋磁细菌：菌株 MSR-1、AMB-1 和 MS-1

从地热泉中分离耐重金属微生物是开发生物修复和环境监测生物系统领域的研究热点。本研究提供了一种从温泉中分离和鉴定耐受重金属细菌的方法学方案。...

极端微生物生物勘探应对环境污染

自然杀伤细胞是一类数量较少的淋巴细胞。本文展示了如何使用 StemCell Technologies...

利用 StemCell Technologies 公司的 RosetteSep 试剂盒从人血液中富集自然杀伤细胞

学习从淡水环境中采集、分离和富集趋磁细菌的方法。利用磁铁的磁性吸引和毛细管赛道技术，结合光学显微镜和透射电子显微镜进行形态学表征。该方法为研究趋磁细菌的生态学特征和生物技术应用提供了简便有效的实验手段。

从环境中采集、分离与富集天然存在的趋磁细菌

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