Name: Optogenetic刺激的逃避行为果蝇 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: 学习利用光遗传学刺激技术操控果蝇特定神经元以研究其逃避行为。该方法通过Channelrhodopsin2激活视叶中loom敏感神经元，实现非侵入性行为分析，为神经环路研究提供有效工具。

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本工作由斯坦福大学院长奖学金（SEJdV）、美国国立卫生研究院院长先锋奖（TRC DP0035350）、麦克奈特基金会学者奖（TRC）和 R01 EY022638（TRC）资助。

1. 生成通道视紫红质果蝇
<ol>
 <li>将 UAS-ChR2 果蝇与选定的 Gal4 驱动系杂交，我们使用 G105-Gal4，其在视叶的 Foma-1 神经元中表达。</li>
 <li>为了排除对蓝光刺激产生视觉反应的可能性，两个果蝇品系均处于 w+norpA 背景中。</li>
 <li>最终结果：w+norpA;G105-Gal4/UAS-ChR2 +</li>
 <li>成虫羽化后，将选中的雌蝇置于添加了 10 μM 全反式视黄醛（ChR2 所需的辅因子）的新鲜培养基中，并避光饲养 3 天，然后进行行为学检测。</li>
</ol>
2. 制备10 μM 全反式视黄醛增强食物
<ol>
 <li>将 100 mg 全反式视黄醛溶于 17.6 ml 95% 乙醇中，配制成 20 mM 视黄醛溶液。全反式视黄醛需始终避光保存。</li>
 <li>将标准玉米粉果蝇培养基在微波炉中融化，冷却至触摸温热。</li>
 <li>取 50 μl 20 mM 全反式视黄醛加入含 10 ml 果蝇培养基的试剂瓶中，充分混匀。</li>
 <li>让试剂瓶冷却，并避光保存。</li>
</ol>
3. 仪器设备
<ol>
 <li>移液器吸头：将标准的1,000 μl移液器吸头在尖端附近剪断，形成直径约为2.25 mm的孔径。</li>
 <li>平台（见图1）。
 <ol>
 <li>采用Delrin材料制作一个17 cm × 25 cm的底座，底座每个角落设有螺纹孔，用于安装¼" NPT冷却管接头。</li>
 <li>一个由Delrin材料制成的垂直支架固定在底座中央，整体尺寸为25 mm × 40 mm × 65 mm（宽×深×高）。支架沿长度方向设有一条宽10 mm的凹槽，底部配有拇指螺丝。支架顶部连接一个平台，尺寸为25 mm × 40 mm × 10 mm，其上有一个直径为3.5 mm的孔，与支架上的凹槽对齐。</li>
 </ol>
 </li>
 <li>LED阵列（见图1）。
 <ol>
 <li>使用冷却管接头将四段长约18 cm的冷却管固定在平台底座上。冷却管仅作为结构支撑，不用于冷却目的。</li>
 <li>在每个支臂末端的冷却管部分切割出适当间距的凹槽，用于将散热片固定在各支臂末端。</li>
 <li>使用预切好的导热胶带将蓝色LED Rebel Tri-Stars安装在每个散热片上。每个Tri-Star上安装一个Carclo 18°三透镜。</li>
 <li>LED Tri-Stars按要求连接至BuckPuck直流驱动器和电源。我们的装置中，每个BuckPuck以串联方式驱动两个Tri-Stars。</li>
 <li>四个LED Tri-Stars在700 mA电流下同时照明时，平台上的辐照度达到713 W/m2。</li>
 </ol>
 </li>
 <li>相机：将相机安装在一个小型三脚架上，并对准平台顶部进行聚焦。</li>
</ol>
4. 行为学实验
<ol>
 <li>将果蝇短暂置于冰上进行麻醉。</li>
 <li>将单只果蝇放入移液器吸头中，并用胶带封闭吸头两端。</li>
 <li>待果蝇苏醒并开始在吸头内活跃探索后，移除胶带，将吸头放入垂直支架的凹槽中。使用拇指螺丝固定吸头，并封闭吸头底部。</li>
 <li>当果蝇在吸头内探索时（通常为 30 - 60 秒），在果蝇即将从吸头爬出至平台前，启动摄像机开始记录。</li>
 <li>果蝇爬上平台后，等待 1-2 秒，打开蓝色 LED 灯。使用计时器手动记录从开灯至果蝇启动飞行之间的时间。</li>
</ol>

<ol><li>Venken, K., Simpson, J., Bellen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+manipulations+of+genes+and+cells+in+the+nervous+system+of+the+fruit+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic manipulations of genes and cells in the nervous system of the fruit fly.</a> Neuron. 72, 202-230 (2011).</li>
<li>Gordon, M., Scott, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+control+in+a+Drosophila+taste+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Motor control in a Drosophila taste circuit.</a> Neuron. 61, 373-384 (2009).</li>
<li>Suh, G. S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+activation+of+an+innate+olfactory+avoidance+response+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Light activation of an innate olfactory avoidance response in Drosophila.</a> Current Biology. 17, 905-908 (2007).</li>
<li>Zhang, W., Ge, W., Wang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+toolbox+for+light+control+of+Drosophila+behaviors+through+Channelrhodopsin+2-mediated+photoactivation+of+targeted+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">A toolbox for light control of Drosophila behaviors through Channelrhodopsin 2-mediated photoactivation of targeted neurons.</a> European Journal of Neuroscience. 26, 2405-2416 (2007).</li>
<li>Nagel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Channelrhodopsin-2%2C+a+directly+light-gated+cation-selective+membrane+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science%22%5BJournal%5D)">Channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel.</a> Proceedings of the National Academy of Science. 100, 13940-13945 (2003).</li>
<li>de Vries, S., Clandinin, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loom-sensitive+neurons+link+computation+to+action+in+the+Drosophila+visual+system%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Loom-sensitive neurons link computation to action in the Drosophila visual system.</a> Current Biology. 22, 353-362 (2012).</li>
<li>Card, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Escape+behaviors+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Escape behaviors in insects.</a> Current Opinion in Neurobiology. 22, 1-7 (2012).</li>
<li>Card, G., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visually+mediated+motor+planning+in+the+escape+response+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Visually mediated motor planning in the escape response of Drosophila.</a> Current Biology. 18, 1300-1307 (2008).</li>
<li>Fotowat, H., Fayyazuddin, A., Bellen, H. J., Gabbiani, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+neuronal+pathway+for+visually+guided+escape+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">A novel neuronal pathway for visually guided escape in Drosophila melanogaster.</a> Journal of Neurophysiology. 102, 875-885 (2009).</li>
<li>Card, G., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+trade-offs+in+the+flight+initiation+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Performance trade-offs in the flight initiation of Drosophila melanogaster.</a> The Journal of Experimental Biology. 211, 341-353 (2008).</li>
<li>Hammond, S., O'Shea, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Escape+flight+initiation+in+the+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Phsyiology+A%22%5BJournal%5D)">Escape flight initiation in the fly.</a> Journal of Comparative Phsyiology A. 193, 471-476 (2007).</li>
<li>Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+mutants+of+Drosophila+isolated+by+countercurrent+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Behavioral mutants of Drosophila isolated by countercurrent distribution.</a> PNAS. 58, 1112-1119 (1967).</li>
<li>Bloomquist, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+putative+phospholipase+C+gene+of+Drosophila%2C+norpA%2C+and+its+role+in+phototransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Isolation of a putative phospholipase C gene of Drosophila, norpA, and its role in phototransduction.</a> Cell. 54, 723-733 (1988).</li>
<li>Gohl, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+in+vivo+system+for+directed+dissection+of+gene+expression+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">A versatile in vivo system for directed dissection of gene expression patterns.</a> Nature Methods. 8, 231-237 (2011).</li>
<li>Zhang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Red-shifted+optogenetic+excitation%3A+a+tool+for+fast+neural+control+derived+from+Volvox+cateri%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Red-shifted optogenetic excitation: a tool for fast neural control derived from Volvox cateri.</a> Nature Neuroscience. 11, 631-633 (2008).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

我们通过将自由行走的果蝇暴露于明亮的蓝光中，实现了对逃逸行为的光遗传学刺激。该方法可轻松适用于研究自由行走果蝇的其他行为，并可通过简单地将所用LED阵列在更大区域上进行拼接，从而扩展至更大的平台。用户可使用本文所述的低成本相机或其他可用的相机系统，根据目标行为的需求，灵活调整所采集图像的帧率和空间分辨率。此外，我们的成像仅限于LED点亮之后的时间段，因为蓝光LED既用于激活ChR2，同时也为相机提供照明。这对我们的行为研究已足够，但如果需要记录LED点亮前果蝇的位置或运动，则可引入提供红外光信号的额外光源，并结合相机的适当滤光装置来实现。
	光遗传学被广泛誉为一种非侵入性调控神经活动的方法。然而，由于激活ChR2所用的光也会同时激活视觉通路，该技术在视觉系统中的应用受到很大限制。此外，果蝇对强光的趋光反应也可能干扰利用光遗传学研究非视觉行为。使用视觉失明的norpA果蝇，可使我们能够在视觉系统中应用光遗传学工具，同时避免趋光行为对其他行为的干扰。
	本实验方案要求在目标神经元中表达 ChR2，果蝇需饲喂全反式视黄醛，并暴露于强...

目前已开发出一系列日益丰富的可遗传编码工具，用于操控Drosophila melanogaster1中特定细胞的神经活动。这些工具能够在完整且自由活动的动物体内，非侵入性地激活或沉默特定神经元。其中，通道视紫红质2（Channelrhodopsin2，ChR2）是一种光激活的阳离子通道，具有显著优势，因其可实现时间上的精确控制并快速诱导效应。当表达ChR2的神经元暴露于强蓝光（470 nm）时，会迅速发生去极化并表现出升高的放电频率3-5。在自由活动的动物中对特定神经元进行靶向激活，已证明某些神经元足以介导诸如CO2回避3、喙伸展2,4以及巨纤维介导的惊跳反应4等行为。然而，由于刺激ChR2所需的强光光源同时会激活感光细胞，光遗传学技术在视觉系统中的应用受到限制。通过将光遗传学方法与一种破坏光转导功能的突变相结合，我们已证明激活果蝇视叶中某一特定神经元簇可驱动用于避免碰撞的逃逸行为6。
	大多数（如果不是全部）具有视觉的动物都会表现出逃避行为，以避免与迎面而来的物体发生碰撞。当行走或静止的果蝇面临逼近的碰撞威胁时，会迅速起飞并逃离碰撞方向7-9。这类起飞行为的特征是在起飞前翅膀抬起，并伴随不稳定的飞行轨迹10,11。这种反应不同于由巨纤维介导的惊吓反应——后者表现为跳跃，起飞前无翅膀抬起动作，通常导致自由落体式的翻滚4,9。我们已鉴定出视叶中一类特异性的对逼近刺激敏感的神经元簇——Foma-1神经元，这类神经元专门编码接近中的物体。在此基础上，我们旨在探究Foma-1神经元在果蝇对逼近刺激产生逃逸行为中的作用。本文展示了如何利用光遗传学技术选择性激活这些神经元，从而诱发果蝇的逃逸行为。
	我们利用Gal4-UAS转录激活系统驱动ChR2在Foma-1神经元中的表达。ChR2需要辅因子全反式视黄醛，而该物质在黑腹果蝇（Drosophila）中枢神经系统中的含量较低，因此必须通过饮食补充3,4。由于激活ChR2需使用强光，而果蝇本身具有强烈的趋光行为12，因此我们希望排除视觉系统对刺激产生反应的可能性。为此，我们采用了norpA基因无义等位基因的纯合突变体果蝇，该基因编码光传导级联反应中的关键组分——磷脂酶C-β。这类突变体果蝇的感光细胞无法对光刺激产生响应13。为了检测逃逸反应的光遗传学刺激效果，我们需要将单只果蝇隔离并暴露于强蓝光下。为此，我们将单只果蝇放入移液器吸头中。将一个吸头置于特制的支架上，使果蝇因向地性沿吸头向上爬行并进入一个矩形平台。果蝇可在该平台顶部自由活动。平台四周设有四组蓝色LED阵列，每组包含3个LED，均聚焦于平台顶部。当果蝇进入平台后，开启LED光源，并使用高速相机记录果蝇的行为反应6。

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;试剂&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>全反式视黄醛</td><td>Advance Scientific Chemical Inc</td><td>R3041</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;设备&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>9.2 C/W 散热片</td><td>Luxeonstar</td><td>LPD30-30B</td><td>30 mm 方形 × 30 mm 高</td></tr><tr><td>Carclo 18 &amp;deg; 三透镜</td><td>Luxeonstar</td><td>10507</td><td></td></tr><tr><td>Tri-Star 基座上的 Blue Rebel LED</td><td>Luxeonstar</td><td>MR-B0030-20T</td><td>470 nm，700 mA 时为 174 lm</td></tr><tr><td>700 mA 降压恒流驱动器（BuckPuck DC Driver）</td><td>Luxeonstar</td><td>3021-D-E-700</td><td></td></tr><tr><td>BuckPuck 驱动器线束</td><td>Luxeonstar</td><td>3021-HE</td><td></td></tr><tr><td>预裁切导热胶带</td><td>Luxeonstar</td><td>LXT-S-12</td><td>20 mm 六角基座</td></tr><tr><td>Snap-Loc 冷却液软管，&amp;#188;&quot; 内径</td><td>McMaster-Carr</td><td>5307K49</td><td></td></tr><tr><td>Snap-Loc 冷却液软管接头</td><td>McMaster-Carr</td><td>5307K39</td><td>&amp;#188;&quot; NPT 外螺纹</td></tr><tr><td>实验室级开关模式可编程直流电源</td><td>BK Precision</td><td>1698</td><td></td></tr><tr><td>Exilim 相机</td><td>Casio</td><td>EX-FH20</td><td></td></tr></tbody></table>

光遗传学刺激黑腹果蝇（drosophila melanogaster）的逃避行为

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

越来越多的基因编码工具正在被开发出来，可用于非侵入性地操控Drosophila melanogaster1中特定神经元的神经活动。其中最重要的是光遗传学工具，这类工具能够利用强光激活或抑制完整且自由活动动物体内特定神经元的活动。通道视紫红质（Channelrhodopsin, ChR2）是一种光激活的阳离子通道，当被蓝光激活时，会引起表达该通道的神经元发生去极化。ChR2已被成功用于鉴定在特定行为中起关键作用的神经元，例如对CO2的回避反应、喙伸展行为以及由巨大纤维介导的惊吓反应2-4。然而，由于刺激ChR2所用的高强度光源同时也会激活感光细胞，因此这些光遗传学技术此前并未应用于视觉系统。本文中，我们将光遗传学方法与一种破坏光转导功能的突变相结合，证明了激活果蝇视叶中一群对逼近刺激敏感的神经元（即Foma-1神经元），足以引发用于躲避碰撞的逃逸行为。我们使用了norpA基因所编码的光转导级联关键组分——磷脂酶C-β（phospholipase C-β）的一个无效等位基因，使果蝇丧失视觉功能；同时利用Gal4-UAS转录激活系统驱动ChR2在Foma-1神经元中的特异性表达。将单只果蝇置于被蓝色LED环绕的小平台之上。当LED点亮时，果蝇会迅速起飞进入飞行状态，其行为模式类似于由视觉触发的逼近逃逸反应。我们认为，该技术可轻松拓展应用于研究自由活动果蝇的其他行为。

仅表达ChR2或仅表达G105驱动子的盲果蝇在受到强蓝光照射后起飞率较低。无论是否接受光照，盲果蝇的起飞率均无差异（图2），表明这些起飞行为是自发产生的，而非由蓝光照射引起。然而，当ChR2在Foma1神经元中表达时，蓝光照射会引发逃避反应。超过50%的测试果蝇在光照后1秒内起飞，75%在5秒内起飞（图2）。相比之下，对照组果蝇中仅有10%在1秒内起飞，20%在5秒内起飞。由于G105驱动子不仅在Foma-1神经元中表达，也在蘑菇体的γ叶中表达，因此我们使用了一个特异性在蘑菇体该区域表达的驱动子（201Y-Gal4）作为额外对照。这些果蝇的起飞率与其他对照组相似（图2），表明逃避反应特异性地由Foma-1神经元的光遗传学激活所引发。
以每秒200帧的速度进行高速成像，记录光遗传学诱导的反应，结果显示这些反应与由逼近刺激引发的逃逸行为相似（图3）。具体而言，在被拍摄的果蝇中，有90%在起飞前抬起了翅膀（n = 30）6。此外，随...

可遗传编码的光遗传学工具能够非侵入性地操控特定神经元 果蝇 大脑。此类工具能够识别出其激活足以引发或抑制特定行为的神经元。本文介绍了一种方法，用于激活在自由行走的果蝇中特定神经元表达的通道视紫红质2（Channelrhodopsin2）。

光遗传学刺激黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）的逃避行为

越来越多的基因编码工具正在出现，这些工具能够对特定神经元的神经活动进行非侵入性操控……

本实验的总体目标是利用光遗传学刺激在自由行走的果蝇中激活特定神经元，以检测这些神经元是否参与果蝇的逃逸反应。该目标的实现首先需要使用基因型合适的果蝇，这些果蝇在添加了全反式视黄醛的食物中培养。第二步是将单只果蝇放入移液器吸头中。接下来，将移液器吸头放入一个由LED灯环绕的自制支架内。最后，当果蝇移动到平台上时，点亮蓝色LED灯进行最终记录。起飞时间表明，果蝇视叶中对逼近敏感的神经元足以引发果蝇的逃逸行为。与现有的光遗传学方法相比，该技术的主要优势在于能够消除果蝇视觉系统对蓝光的视觉反应，从而实现光遗传学在果蝇视觉系统中的应用。尽管该方法可用于研究逃避行为和飞行启动，也可应用于自由行走果蝇的其他行为研究。首先将标准的玉米粉果蝇食物放入微波炉中融化，冷却至手感温热。将先前配制的20毫摩尔全反式物质各50微升加入每个小瓶中。然后让小瓶冷却，并在避光条件下保存直至使用。首先将UAS通道滴加到含有适当GAL4的果蝇中。使用 Driver G 1 0 5. GAL 四在视叶的 fomo 一个神经元中进行表达。为了消除对蓝光刺激产生视觉反应的可能性，两个品系均应具有 white plus nor pay 背景。杂交后12至13天获得白色+ nor-pG105、GAL4-UAS、CR2阳性果蝇。在进行行为检测前，将成年雌性果蝇转移至添加了10 µM全反式视黄醛的新鲜培养基中，饲养三天。该装置的底部由一块17厘米×25厘米的聚氧乙烯材料构成，四个角上设有螺纹孔，用于安装1/4英寸NPT冷却液软管接头。底部连接一段竖直的聚氧乙烯材料。支架上沿长度方向设有一条宽10毫米的凹槽，底部配有拇指螺丝。平台固定在支架顶部，通过一个直径为3.5毫米的孔与支架内的凹槽对齐连接。使用冷却液软管连接件作为LED的结构支撑，将长约18厘米的冷却液软管前臂固定在平台底座上。在每个臂的最后一段冷却液软管上切割出间距适当的凹槽，以便将散热片固定在每个臂的末端。使用预先切割的导热胶带将蓝色Rebel Tristar LED安装到每个散热片上。此图像显示了安装在散热片上的 Tristar LED。特写显示，每个 Tristar 上均安装有一个 Carlow 18 度三透镜。此图像展示了 Tristar 上透镜的特写。根据制造商的说明，LED 已连接至降压模块直流驱动器和电源。该装置的配置为每个降压模块以串联方式驱动两个 Tristar。降压模块与 LED 电路的电路图如下所示。将所有四个 Tristar LED 在 700 毫安电流下点亮时，平台上的辐射照度达到 713 瓦特每平方米。最后，将相机安装在小型三脚架上，并对准平台顶部进行聚焦。首先，将果蝇在冰上短暂麻醉。然后将单只果蝇放入已剪去尖端、形成直径约2.25毫米的P1000移液器吸头中，并用胶带密封两端。待果蝇苏醒并开始在吸头内活动后，移除胶带，迅速

optogenetic-stimulation-of-escape-behavior-in-drosophila-melanogaster

Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

Optogenetic刺激的逃避行为<em&gt;果蝇</em

光遗传学技术能够利用光来操控经过基因工程改造、表达特定视蛋白的神经元——这些视蛋白是光敏感蛋白，其光激活可引发神经元状态的改变。本文介绍了一种在果蝇（Drosophila）中应用视蛋白Channelrhodopsin2的光遗传学方法。该示例实验方案采用光遗传学检测手段，旨在研究果蝇逃避行为背后的神经环路机制。...

Drosophila 光遗传学：一种操控神经环路的方法

本视频展示了一项关于导航行为的研究 果蝇 幼虫在嗅觉感觉神经元（ORNs）光遗传学刺激下的反应。转基因 果蝇...

导航行为 果蝇 幼虫对嗅觉感觉神经元光遗传学刺激的反应

在此，我们描述了一种在半离体条件下通过光遗传学手段操控运动神经元活动，同时监测运动输出（肌肉收缩）变化的实验方案。 果蝇...

利用激光照射对半完整神经组织进行光遗传学干预以调控神经活动 果蝇 运动中的幼虫

在本视频文章中，我们描述了一种自动化检测方法，用于测量饥饿或饱腹状态对成年果蝇Drosophila...

一种用于果蝇觅食行为的单体检测方法 果蝇

本文介绍了一种用于量化受胁迫个体回避行为的实验方案。该范式具有强大功能且操作简便，可用于评估基因和环境对黑腹果蝇（Drosophila...

社会回避定量检测的简易实验方法 黑腹果蝇

自动化追踪系统Flywalk用于对黑腹果蝇（Drosophila...

使用 Flywalk 范式对黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）的嗅觉引导行为进行高分辨率定量分析

本方案分析导航行为 黑腹果蝇 幼虫在嗅觉神经元同时接受光遗传学刺激时的行为反应。使用波长为630...

追踪 果蝇 幼虫对嗅觉神经元光遗传学刺激的行为反应

本方案介绍了一种光斑检测法，用于研究黑腹果蝇（Drosophila）幼虫的趋光行为。在该检测中，通过产生一个光斑作为光刺激，利用基于红外光的成像系统记录幼虫避光过程。...

基于光斑的实验方法用于分析 Drosophila 幼虫趋光性

本研究描述了一种简单的行为范式，可用于分析成年果蝇的厌恶性关联学习。该方法基于特定环境背景与电击之间形成关联，从而抑制果蝇与生俱来的负向趋地性行为。...

Drosophila 被动回避行为作为研究关联性厌恶学习的新范式

本文介绍了利用CsChrimson和GtACR2激活和抑制特定神经元的黑腹果蝇（Drosophila...

用于光遗传学操控神经环路的行为学检测方法 黑腹果蝇

学习利用光遗传学刺激技术操控果蝇特定神经元以研究其逃避行为。该方法通过Channelrhodopsin2激活视叶中loom敏感神经元，实现非侵入性行为分析，为神经环路研究提供有效工具。

光遗传学刺激黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）的逃避行为

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