Name: 在的鼠标Aortocaval瘘的技术方面 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 12 s
Description: 学习使用小鼠建立无缝合主动脉腔静脉瘘的技术方法。该方法通过25号针头穿刺实现，无需缝合或胶水，利用多普勒超声验证血流增加，操作简便且可重复，适用于心血管生理学研究。

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本工作部分得到了美国国立卫生研究院资助项目 R01-HL095498 以及康涅狄格州西黑文退伍军人事务医疗系统的资源和设施使用支持。

1. 麻醉与术前操作
<ol>
 <li>诱导全身麻醉 
 获得相应的机构动物护理和使用委员会批准。取10周龄雄性C57/black小鼠，进行麻醉。通过异氟烷挥发罐向亚克力玻璃箱中输送4%异氟烷和0.8 L/min氧气，并将小鼠放入箱内。或者，若手术操作者更倾向，也可采用腹腔注射麻醉。</li>
 <li>维持麻醉 
 确认小鼠对足趾夹捏无反应后，将其仰卧位固定于手术台上，并佩戴硅胶面罩。将异氟烷浓度下调至2%，以维持适当的麻醉深度。</li>
 <li>脱毛处理 
 使用脱毛剂去除颈部至下腹部的腹侧毛发。推荐使用脱毛剂，因为剃刀脱毛后残留的毛发可能干扰多普勒超声成像。</li>
</ol>
2. 术前超声检查
<ol>
 <li>超声检查的目的 
 在动静脉瘘（AVF）手术前进行多普勒超声检查，旨在记录术前基线数据，以便与术后结果进行比较，从而观察解剖结构和生理学上的变化。</li>
 <li>观察部位 
 使用脉冲多普勒和B型超声对颈静脉、肾上及肾下段下腔静脉（IVC）以及腹主动脉进行检查。</li>
 <li>测量指标 
 采用B型超声测量各血管的直径。此外，记录上述各测量部位的最大流速（动脉中的峰值收缩期流速）及血流波形。</li>
</ol>
3. 手术操作步骤
<ol>
 <li>小鼠准备 
使用局部消毒剂处理切口部位，并在手术过程中保持无菌操作技术，包括使用手术巾、无菌手套和无菌器械等。</li>
 <li>剖腹术 
从肝脏下缘至耻骨上方做腹正中切口。</li>
 <li>暴露腹主动脉和下腔静脉（IVC） 
插入牵开器，将所有肠管从腹腔中移出并置于右侧，用生理盐水浸湿的纱布包裹保存。解剖连接后腹膜与降结肠的膜性结构，以充分暴露腹主动脉和下腔静脉。若膀胱扩张并妨碍操作，可适当加压。</li>
 <li>暴露穿刺部位 
穿刺部位位于左肾静脉至腹主动脉分叉处距离的1/2至3/4之间。（图1）解剖腹主动脉左侧边缘，以便进行穿刺。需注意腹主动脉位于下腔静脉后方约45度位置，因此除向左解剖外，还需向后方进行解剖。（图2）本手术最关键的一点是切勿在腹主动脉与下腔静脉之间进行解剖，应远离两者。</li>
 <li>暴露主动脉夹闭部位 
将肾下腹主动脉从周围组织中游离出来。注意避免损伤左侧的下腔静脉以及右侧带有属支的左肾静脉。</li>
 <li>夹闭腹主动脉 
使用显微外科夹夹闭近端腹主动脉。</li>
 <li>旋转腹主动脉 
抓住腹主动脉周围的结缔组织，旋转腹主动脉，使穿刺可从腹主动脉略偏背侧的位置进行（图2）。</li>
 <li>经腹主动脉穿刺至下腔静脉 
保持腹主动脉处于旋转状态，使用25 G针头从腹主动脉穿刺至下腔静脉（图2）。若穿刺成功，可通过薄的下腔静脉壁观察到针头。</li>
 <li>止血 
通过牵拉包括肌肉在内的后腹膜组织，包裹腹主动脉穿刺部位。切勿将腹主动脉压向静脉，以免导致动静脉瘘（AVF）血栓形成（图3）。</li>
 <li>解除腹主动脉夹闭 
确认初步止血完成后，松开腹主动脉夹。可能再次出现少量出血，但可通过上述进一步压迫控制。解除夹闭后，可见动脉血流入下腔静脉，而非暗色的静脉血流动。</li>
 <li>关闭腹腔 
将肠管复位至正常解剖位置，并逐层关闭腹腔。</li>
</ol>
4. 术后操作步骤
<ol>
 <li>术后护理 
 腹部关闭后，停止使用异氟烷。根据机构动物护理和使用委员会推荐的指导原则，实施包括镇痛和伤口护理在内的术后护理。对于镇痛，我们在手术后24小时内每12小时按0.1 mg/kg剂量肌内注射布托啡诺。</li>
 <li>术后超声检查 
 手术后第一天进行多普勒超声检查，以确认动静脉瘘（AVF）的建立情况。此外，还测量其他变量，以评估其相对于术前数值的变化。</li>
</ol>

<ol><li>Allon, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+management+of+vascular+access%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Current management of vascular access.</a> Clinical Journal of the American Society of Nephrology. 2 (4), 786-800 (2007).</li>
<li>Dixon, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Why+don%27t+fistulas+mature%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Why don't fistulas mature?</a> Kidney International. 70 (8), 1413-1422 (2006).</li>
<li>Roy-Chaudhury, P., Spergel, L. M., Besarab, A., Asif, A., Ravani, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+of+arteriovenous+fistula+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Biology of arteriovenous fistula failure.</a> Journal of Nephrology. 20 (2), 150-163 (2007).</li>
<li>Kudo, F. A., Muto, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Venous+identity+is+lost+but+arterial+identity+is+not+gained+during+vein+graft+adaptation%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Venous identity is lost but arterial identity is not gained during vein graft adaptation.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 27 (7), 1562-1571 (2007).</li>
<li>Muto, A., Yi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eph-B4+prevents+venous+adaptive+remodeling+in+the+adult+arterial+environment%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Eph-B4 prevents venous adaptive remodeling in the adult arterial environment.</a> The Journal of Experimental Medicine. 208 (3), 561-575 (2011).</li>
<li>Croatt, A. J., Grande, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+model+of+an+arteriovenous+fistula+in+the+rat%3A+the+effect+of+L-NAME%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Characterization of a model of an arteriovenous fistula in the rat: the effect of L-NAME.</a> The American Journal of Pathology. 176 (5), 2530-2541 (2010).</li>
<li>Misra, S., Fu, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+femoral+arteriovenous+fistula+model%3A+increased+expression+of+matrix+metalloproteinase-2+and+-9+at+the+venous+stenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+and+Interventional+Radiology%22%5BJournal%5D)">The rat femoral arteriovenous fistula model: increased expression of matrix metalloproteinase-2 and -9 at the venous stenosis.</a> Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (4), 587-594 (2008).</li>
<li>Kojima, T., Miyachi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationship+between+venous+hypertension+and+expression+of+vascular+endothelial+growth+factor%3A+hemodynamic+and+immunohistochemical+examinations+in+a+rat+venous+hypertension+model%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+Neurology%22%5BJournal%5D)">The relationship between venous hypertension and expression of vascular endothelial growth factor: hemodynamic and immunohistochemical examinations in a rat venous hypertension model.</a> Surgical Neurology. 68 (3), 277-284 (2007).</li>
<li>Caplice, N. M., Wang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neoangiogenesis+and+the+presence+of+progenitor+cells+in+the+venous+limb+of+an+arteriovenous+fistula+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology+Renal+Physiology%22%5BJournal%5D)">Neoangiogenesis and the presence of progenitor cells in the venous limb of an arteriovenous fistula in the rat.</a> American Journal of Physiology Renal Physiology. 293 (2), F470-F475 (2007).</li>
<li>Nath, K. A., Kanakiriya, S. K., Grande, J. P., Croatt, A. J., Katusic, Z. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+venous+proinflammatory+gene+expression+and+intimal+hyperplasia+in+an+aorto-caval+fistula+model+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Increased venous proinflammatory gene expression and intimal hyperplasia in an aorto-caval fistula model in the rat.</a> The American Journal of Pathology. 162 (6), 2079-2090 (2003).</li>
<li>Karram, T., Hoffman, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+cardiac+hypertrophy+by+a+controlled+reproducible+sutureless+aortocaval+shunt+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Surgery%22%5BJournal%5D)">Induction of cardiac hypertrophy by a controlled reproducible sutureless aortocaval shunt in the mouse.</a> Journal of Investigative Surgery. 18 (6), 325-334 (2005).</li>
<li>Perry, G. J., Mori, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+variation+in+angiotensin-converting+enzyme+does+not+prevent+development+of+cardiac+hypertrophy+or+upregulation+of+angiotensin+II+in+response+to+aortocaval+fistula%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Genetic variation in angiotensin-converting enzyme does not prevent development of cardiac hypertrophy or upregulation of angiotensin II in response to aortocaval fistula.</a> Circulation. 103 (7), 1012-1016 (2001).</li>
<li>Guzman, R. J., Krystkowiak, A., Zarins, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+and+sustained+medial+cell+activation+after+aortocaval+fistula+creation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Early and sustained medial cell activation after aortocaval fistula creation in mice.</a> The Journal of Surgical Research. 108 (1), 112-121 (2002).</li>
<li>Castier, Y., Lehoux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+neointima+lesions+associated+with+arteriovenous+fistulas+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Characterization of neointima lesions associated with arteriovenous fistulas in a mouse model.</a> Kidney International. 70 (2), 315-320 (2006).</li>
</ol>

已有若干研究报告描述了大鼠中的动静脉瘘（AVF）模型，包括股动静脉瘘6, 7、颈动脉-颈外静脉瘘8以及主动脉-下腔静脉瘘9, 10。大鼠体型数倍于小鼠，因此相比小鼠更易于进行手术操作。然而，为了充分利用小鼠的遗传品系和基因变异模型，该手术技术必须扩展至小鼠模型。此前已有数篇文献报道建立了小鼠AVF模型，但这些研究通常旨在构建右心衰竭模型，并使用了较大尺寸的穿刺针11-13。Guzman报道了一种与我们类似的技术，但在该研究中作者使用缝线关闭动脉切口13。我们不采用缝线，以避免对后续蛋白质和RNA提取造成潜在干扰，从而影响分子分析。此外，使用缝线关闭动脉切口可能在瘘管上施加过度张力，导致急性或迟发性出血。在其他研究中，AVF通过套管法在颈动脉与颈外静脉之间建立14。本研究中，我们描述了一种简单且可重复的方法，可用于AVF本身的研究，且无需依赖吻合口周围套管结构。
我们通过使用25 G针头穿刺小鼠肾下主动脉，并将穿刺孔延伸至主动脉侧壁以贯通肾下腔静脉，从...

终末期肾病患者进行肾脏替代治疗时最常选择的方式是血液透析。血液透析通路可通过动静脉瘘（AVF）、动静脉移植物或临时导管置入来建立。尽管动静脉瘘（AVF）是首选的通路方式，但其仍远非理想。AVF的一年原发性通畅率仅为60-65%，许多失败病例是由于新生内膜增生所致。目前对正常AVF形成与病理性重塑的分子生物学和生理学机制仍缺乏充分认识。因此，深入理解瘘管形成的调控机制，将有助于显著改善AVF的临床结局。1-3
静脉暴露于动脉血流的情况通常在静脉移植物的背景下进行研究，静脉移植物是外科旁路手术的直接模型4, 5。尽管动静脉瘘（AVF）与静脉移植物均使静脉暴露于动脉环境中，但两者之间存在若干关键差异。首先，AVF远端流出道床的阻力显著低于静脉移植物，因为AVF直接引流至右心房，而静脉移植物则引流至常已发生病变的远端小动脉，导致AVF中的血流量和剪切应力更高。其次，AVF静脉段内的血液可能是静脉血与动脉血的混合，因此其氧合程度低于静脉移植物中完全来自动脉的血液。第三，AVF中的静脉未从其原有解剖位置剥离，因此其营养血管（vaso venorum）和神经支配得以保留；而静脉移植物则被完全移植至动脉床中，失去原有支持结构。最后，静脉移植物通常具有两个吻合口，而AVF通常仅有一个。在本研究中，我们介绍了一种可用于研究AVF的鼠源性主动脉-下腔静脉瘘（aortocaval fistula）模型。

<table><tbody><tr><td>Vevo 770 超声成像系统</td><td>Visualsonics</td><td>20-60 MHz 扫描探头；RMV-704</td><td></td></tr><tr><td>血管夹</td><td>Roboz Surgical Instrument Co.</td><td>RS-5424</td><td></td></tr><tr><td>持夹钳</td><td>Roboz Surgical Instrument Co.</td><td>RS-5410</td><td></td></tr><tr><td>25 号针头</td><td>Becton Dickinson</td><td>BD PrecisionGlide 针头 25G x 7/8 #305124</td><td></td></tr></tbody></table>

小鼠主动脉下腔静脉瘘的技术要点

Technical Aspects of the Mouse Aortocaval Fistula

本文讨论了在小鼠体内建立动静脉瘘的技术细节。在全身麻醉下，进行腹部切口，暴露主动脉和下腔静脉（IVC）。分别游离近端肾下主动脉和远端主动脉，用于血管夹放置和针刺穿刺。需特别注意避免在主动脉与下腔静脉之间进行过度解剖。在夹闭主动脉后，使用25 G针头穿刺主动脉的前后壁，使其进入下腔静脉。利用周围结缔组织进行止血压迫。成功的动静脉瘘建立后，可在下腔静脉中观察到搏动性动脉血流。术后可通过多普勒超声进一步确认动静脉瘘是否成功建立。

经过练习后，术后第一天的存活率通常超过95%；术后第7天的存活率为91.3%。图1和图2展示了冠状面和横截面上理想的穿刺部位；穿刺部位的准确定位对于在无明显出血的情况下获得良好存活率至关重要。术中死亡和术后早期死亡通常由出血引起，这往往发生在主动脉与下腔静脉（IVC）之间过度解剖，或止血压力不足的情况下。图3示意图说明了在施加压力止血前，用结缔组织包裹穿刺部位的重要性，这样可在不压迫动静脉瘘（AVF）的情况下实现有效止血。根据我们的经验，所有技术上成功的动静脉瘘（AVF）均可在术后第3天通过超声检查确认；一旦通过双功能超声确认AVF已形成，AVF通常至少可稳定维持至第28天。图4展示了成功形成AVF时典型的多普勒超声检查结果。在AVF部位的下腔静脉（IVC）以及向心脏方向的血流波形中均观察到波形变化。术后第3天AVF的总体确认率为71.4%。
<img alt="主动脉夹闭与穿刺示意图；心血管手术图示；外科...

目标是建立一种简单且可重复的动静脉瘘。该方法不使用缝线或胶粘剂，因此可用于分析的样本所含外来材料最少。

讨论了在小鼠中创建动静脉瘘的技术细节。在全身麻醉下，进行腹部切口，暴露腹主动脉……

本操作的总体目标是成功建立主动脉-下腔静脉瘘，首先需在穿刺部位附近仔细分离主动脉。接着，在预期建立主动脉-下腔静脉瘘位置的近端夹闭主动脉。然后使用25号针头从左侧主动脉穿刺至下腔静脉。最后，在不阻塞主动脉下腔静脉瘘的情况下实现止血。最终通过多普勒超声显示下腔静脉血流量增加。该技术相较于现有的主动脉-下腔静脉吻合、渗透等方法的主要优势在于，操作简便，可在较短时间内完成，且无需使用缝合线，从而节省了术前所需的时间和培训。使用脉冲多普勒结合B型超声，对肾上段和肾下段下腔静脉（IVC）以及腹主动脉进行基线记录，测量每段血管的直径、最大流速及各测量点的血流波形。首先对所有手术器械和血管夹进行高压灭菌处理。然后，使用浓度为4%、流速为0.8升/分钟的异氟烷对一只10周龄雄性C57BL/6小鼠进行麻醉。氧气，使用脚趾夹捏法评估镇静程度。将小鼠置于仰卧位。连接硅胶面罩，给予2%异氟烷。使用化学脱毛剂去除从颈部至下腹部的毛发。首先，用70%乙醇对术区进行消毒。在手术显微镜下，从肝脏下缘至耻骨上方做一正中切口。插入拉钩，将整个肠道从腹腔中移出，用生理盐水浸湿的纱布包裹后置于右侧。解剖连接后腹膜与降结肠的膜状组织，以充分暴露腹主动脉和下腔静脉。如果膀胱扩张并妨碍操作，需对其施加压力。接下来，在左侧肾静脉至腹主动脉分叉距离的一半至四分之三处添加穿刺位点。解剖腹主动脉的左侧边缘，以便进行穿刺。主动脉位于下腔静脉（IVC）后方约45度位置，因此必须向后并向左侧进行分离。注意避免在主动脉与下腔静脉之间进行解剖，然后仔细将肾下主动脉从周围组织中游离出来，以避免损伤左侧的下腔静脉以及右侧的左肾静脉及其属支。使用显微外科夹夹闭近端主动脉，钳夹住主动脉和下腔静脉周围的结缔组织并旋转，使穿刺可从主动脉稍偏背侧的位置进行。在此旋转位置下，使用25号针头穿刺主动脉至下腔静脉（IVC）。应透过较薄的下腔静脉壁看到针头。确认止血成功后，可见动脉血从主动脉流入下腔静脉，而非暗色的静脉血。最后，将肠管复位至自然位置，并使用6-0缝线关闭腹部。停止使用异氟烷，术后24小时内每12小时按0.1毫克/千克剂量肌肉注射布托啡诺。在恢复期间将动物单独饲养于笼中，并根据本机构的动物护理与使用指南进行伤口护理。术后次日进行多普勒超声检查，以确认动静脉瘘（A-VF）并评估与术前测量值相比的变化。如这些冠状面和横截面图所示，理想的穿刺部位定位对于获得良好的术后存活率至关重要，可避免过度出血，而过度分离主动脉与下腔静脉之间组织或止血压力不足通常会导致出血。术后第一天的存活率通常超过95%，术后第七天约为91%。该示意图表明，在施加压力止血前，用结缔组织包裹穿刺部位非常重要，这样可在不压迫动静脉瘘（A VF）的情况下实现良好止血。根据我们的经验，术后第三天可通过超声检查确认动静脉瘘（A VF）是否成功建立。一旦通过双功能超声确认动

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在的鼠标Aortocaval瘘的技术方面

我们介绍一种技术，即将小鼠腹主动脉的一段原位移植到同种异体或同系受体肾动脉下方。该技术在需要移植大小均一的大动脉的研究中具有优势。...

小鼠原位主动脉移植在血管疾病研究中的应用

本视频演示了一种建立小鼠主动脉移植模型的方法，用于研究同种免疫介导的血管排斥反应。将麻醉后的供体小鼠置于仰卧位后，仔细分离肾下腹主动脉（IAA）及其周围结构。结扎分支血管，并在切除前夹闭IAA两端以阻断血流。随后，将供体IAA植入同种异体受体小鼠体内，并通过吻合术恢复血流，以研究同种免疫介导的血管排斥反应。...

一种用于研究同种免疫诱导的血管排斥反应的小鼠主动脉移植模型

我们描述了小鼠移植性动脉硬化（GA）模型的实验方案，该模型涉及将一段小鼠血管移植到同一近交品系的受体体内。通过将额外的遗传改变回交至血管供体，该模型可评估特定基因对GA的影响。...

移植性动脉硬化的小鼠模型

我们描述了一种在成年小鼠中建立可靠的脑静脉高压模型的方法。该模型已在大鼠中得到广泛描述和验证。这一小鼠模型的建立使得能够使用基因修饰动物，从而拓展了该模型的应用范围。...

成年小鼠静脉高压模型：颈总动脉至外颈静脉吻合术

我们描述了一种小鼠主动脉移植术的实验方案。该方案的目的是提供一种可用于研究动脉中与同种免疫反应相关的病理过程及治疗策略的模型，以及由此引发的动脉改变，这些改变是导致器官移植失败的重要因素。...

异体免疫诱导的血管排斥反应与移植性动脉硬化的鼠类模型

本文介绍了一种结合临床相关吻合构型的动静脉瘘（AVF）失败的小鼠模型。该模型可用于研究其病理生理机制，并测试潜在的治疗干预措施。...

一种新型的小鼠动静脉瘘衰竭模型：手术步骤详解

通过下腔静脉（IVC）穿刺主动脉在小鼠体内构建主动脉-下腔静脉瘘后，经同一根针头将含药物的溶液注入下腔静脉，随后进行孵育。与外部给药途径相比，该方法可实现向静脉内皮更有效的药物递送。...

小鼠动静脉瘘血管内皮腔内药物递送

我们介绍了一种在小鼠中采用套管技术的原位主动脉移植模型。这是一种非常快速的吻合方法，可用于血管疾病的研究。...

使用袖套法进行小鼠主动脉移植模型的建立——教学视频

通过穿透小鼠肾下腹主动脉的双层管壁进入下腔静脉，建立主动脉-下腔静脉瘘，随后通过部分结扎下腔静脉在其流出道处形成狭窄。该可重复模型可用于研究中心静脉狭窄。...

利用动静脉瘘合并流出道狭窄建立中心静脉狭窄的小鼠模型

本方案详细描述了小鼠髂总动静脉瘘创建的手术步骤。我们建立此模型以研究与血液透析通路相关的肢体病理生理学。...

一种用于透析通路相关手功能障碍的小鼠模型

本方案描述了在载脂蛋白E（ApoE）缺陷小鼠中，通过连续植入渗透泵释放血管紧张素II诱导腹主动脉瘤，并植入带有颈静脉导管的血管通路端口以进行重复药物治疗的方法。尽管存在背部植入物，仍可有效通过三维超声监测动脉瘤的发展。...

通过中心静脉导管在血管紧张素II诱导的小鼠腹主动脉瘤模型中进行药物治疗及三维超声监测

学习使用小鼠建立无缝合主动脉腔静脉瘘的技术方法。该方法通过25号针头穿刺实现，无需缝合或胶水，利用多普勒超声验证血流增加，操作简便且可重复，适用于心血管生理学研究。

小鼠主动脉下腔静脉瘘的技术要点

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