2013年8月2日
无论是衰老阻止或促进肿瘤的发生仍存在争议。由于化学治疗药物可以诱导癌细胞衰老,衰老研究提出的新疗法是必不可少的。然而,标准的和广泛使用的β-半乳糖苷酶测定的主要缺点。在这里我们提出一种快速,灵敏的基于流式细胞仪检测,以量化衰老。
该程序的总体目标是以快速和灵敏的方式量化细胞衰老。在这里,我们展示了这种方法在筛选潜在化疗药物中的效用。首先诱导细胞衰老。
化疗药物阿霉素被添加到癌细胞中。接下来,使用 Bain A one 来中和细胞溶酶体的酸性 pH 值。然后在细胞摄取时加入细胞渗透性 β 半乳糖底物 C 12 FDG。
C 12 FDG 被水解并发出荧光。由于 β GCSE 在衰老细胞的溶酶体中富集,因此它们比非衰老细胞更具荧光。为了量化荧光的差异,在流式细胞仪上运行细胞,对所得数据进行分析,从而可以量化不同治疗条件下衰老癌细胞的百分比。
例如,与现有方法(如 β 半乳糖)相比,该技术的主要优点是它有助于快速、灵敏地定量衰老细胞。事实上,当我们在使用常用的 β 半乳糖 asay 量化衰老细胞时遇到困难时,我们首先添加了这种方法的想法。虽然我们使用这种技术来检测癌细胞的衰老,但它也可以用于正常细胞。
这种方法可以帮助回答癌症领域的快速问题,例如化疗药物是否会诱导癌细胞 sse,这可能会促进恶性肿瘤。因此,这项技术最终可以帮助通知癌症的新治疗方法。在化学通风橱中工作,将 C 12 FDG 粉末溶解在 DMSO 中,最终浓度为 20 毫摩尔等分试样,溶于 0.5 毫升浓度的 einor 管中,并在零下 80 摄氏度下储存。
DMSO 应在适当的安全条件下使用,也应溶解。CIN A 一种粉末的 DMSO 溶液,终浓度为 0.1。毫摩尔 Eloqua 将溶液放入 0.5 毫升微量离心管中,并储存在零下 20 摄氏度。
请注意,CIN 应在采取适当的安全预防措施的情况下使用。该程序可以使用贴壁或非贴壁细胞进行。这里使用人骨髓瘤细胞系 RPMI 8 2 2 6 演示了该程序。
这些细胞在悬浮液中生长,在37摄氏度下在含有 10% FBS 和 1% 抗生素的培养基中培养 RPMI 8 2 2 6 细胞,在进行实验前 24 小时将细胞接种在六个孔板中,以便它们处于细胞增殖曲线的对数期。在实验时要确定衰老细胞的百分比,需要三个细胞样品。未处理和未 ST 染色的细胞、C 12 FDG 染色的未处理细胞以及 C 12 FTG 染色的处理细胞。
对于每种情况,流式细胞术诱导的癌细胞衰老至少需要 5 乘以 10 到第 5 个细胞。通过添加化疗药物阿霉素,药物浓度和治疗持续时间应适应细胞类型。经过 rpmi 8 2 2 6 细胞测试。
用 15 纳摩尔阿霉素处理每毫升 6 个细胞中的第 10 个细胞 48 小时,可诱导衰老。不要忘记加入未经处理的样品作为阴性对照,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育。化疗药物治疗可能导致细胞凋亡。
因此,两天后,使用血液、细胞仪和显微镜通过 trian 蓝排除检查细胞活力。如果活力百分比低于 70%,则使用合适的试剂盒(例如 Milton E 的死细胞去除试剂盒)去除死细胞,以确保死细胞不会使后续分析产生偏差。否则,将细胞在 300 GS 下旋转 5 分钟以去除培养基。
然后,在含有 100 个 anom 或 cin 的 Prewarm 新鲜培养基中取出上清液后,为了中和溶酶体的酸性 pH 值,在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育 1 小时,溶解战前新鲜培养物中的 β 半乳糖 a 底物 C 12 FDG。中等至终浓度为 2 毫摩尔。与 beil mycin 孵育后。
将 C 12 FDG 直接加入细胞和培养基中,最终浓度为 33。微摩尔在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下孵育 2 小时。孵育后,将细胞在 4 摄氏度下以 300 G 离心 5 分钟。
离心后,用 PBS 洗涤细胞两次,每次像以前一样旋转,第二次洗涤后去除上清液。Resus 将细胞沉淀悬浮在 500 μL 冷 PBS 中,然后进行免疫共标记,以进一步表征衰老细胞群。如果您没有流式细胞术的经验,该程序最困难的方面将是进行流式细胞术分析。
为确保成功,请务必包括适当的控制措施,并根据需要寻求无经验人员的帮助。在运行第一个样品之前,准备一个双参数图形,显示前向散射通道或 FSC 与侧向散射通道 SSC。然后运行包含未标记细胞的第一个样品。
设置光电倍增管或 PMT 并定义感兴趣区域,不包括样品制备门期间可能出现的死细胞和细胞碎片。单参数直方图中的这个感兴趣区域在 x 轴的对数刻度上显示为 FL 1,在 Y 轴的对数刻度上显示事件数。事件总数表示分析的单元格数。
设置 PMT,使未标记的细胞出现在 x 轴的对数刻度上的前十年。如有必要,通过在流式细胞中运行未标记的细胞来确定细胞的自发荧光。细胞仪在显示 FL 的单参数直方图上运行包含未处理细胞的第二个样品,将光标放在标记模糊的群体之后。
该阈值将允许区分非衰老细胞(标记较暗)和衰老细胞(标记较亮)。运行包含处理细胞的第三个样品。亮标记的衰老细胞出现在上一步确定的阈值以上。
如果需要,通过将明亮事件的数量除以事件总数来评估衰老细胞的百分比。也可以使用平均荧光强度来估计 β 半乳糖 tase 的活性,以评估化疗程序诱导的衰老。市售的多发性骨髓瘤细胞系 R RRP I 8 2 2 6 用阿霉素处理两天,阿霉素是一种化疗药物和衰老测定法,如本视频所述,这些直方图显示左侧未处理细胞和右侧处理细胞的荧光。
代表衰老细胞的亮标记细胞群出现在平行区域 V.In,使用 β 半乳糖 sase 测定对相同的细胞样品进行染色。在这张具有代表性的图片中,显示了完全蓝色的细胞和部分蓝色的细胞,以说明区分真正蓝色衰老细胞的困难。为了说明 C 12 FDG 在测定衰老细胞百分比中的特异性,还用不同浓度的阿霉素处理细胞。
衰老细胞的百分比是通过除以明亮事件的数量来确定的。根据事件总数,剂量为 5、25 和 50 纳摩尔多柔比星的衰老细胞百分比分别为 0.8%、15.78% 和 26.31%。这表明 C 12 FTG 标记对衰老细胞具有特异性。
观看此视频后,您应该对如何通过流式细胞术定量衰老细胞有一个很好的了解,然后执行免疫标记等方法以表征衰老细胞。不要忘记,使用 DMSO 或癌细胞可能非常危险。执行此过程时应始终采取预防措施。
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本研究提出了一种基于流式细胞术的快速、敏感的细胞衰老量化分析方法,解决了标准β-半乳糖苷酶分析方法的局限性。该方法使用化疗药物多柔比星诱导癌细胞衰老进行演示。
Quantifying senescent cancer cells is critical for evaluating chemotherapeutic efficacy and understanding treatment-induced phenotypic shifts that may influence tumor progression or therapeutic resistance. This flow cytometry-based method provides a rapid, sensitive readout to support target validation and mechanistic de-risking in oncology drug discovery. By enabling high-throughput assessment of senescence induction, it informs go/no-go decisions and portfolio prioritization in preclinical development.
The method integrates into the oncology discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical efficacy assessment, providing a quantitative senescence readout that informs mechanistic understanding and compound selection.