Name: 评估精子竞争能力的差异果蝇 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: 了解黑腹果蝇精子竞争能力差异的实验方法，通过双重交配实验追踪可见遗传标记推断后代父权。该方法利用眼色表型分析评估实验雄性与参照雄性的相对精子表现，为遗传学和进化生物学研究提供重要框架。

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作者感谢美国国家科学基金会（NSF，项目编号：MCB-1157876）提供的经费支持。我们还要感谢 Alberto Civetta、John Roote 以及两位匿名审稿人所提出的宝贵意见。

应先进行小规模实验，以熟悉整个实验流程。
1. 收集处女雌蝇和未经交配的雄蝇
所述实验的最简版本包括四种初始杂交类型，涉及以下成虫组合：a) w1118 个体，用于收集处女雌蝇；b) Oregon-R 个体，用于收集未经交配的参照雄蝇；c) P{sw} 纯合雄蝇与携带 Sdic 基因野生型结构的对照品系处女雌蝇杂交，以获得未经交配的实验组雄蝇（I型）；以及 d) P{sw} 纯合雄蝇与携带 Sdic-sw 缺失突变的处女雌蝇杂交，以获得携带 Sdic-sw 缺陷的未经交配实验组雄蝇（II型）。
<ol>
	<li>设置多个小瓶，每瓶放入8-10只雌蝇和5只雄蝇。让雌蝇产卵，并每隔3-5天将成虫转移至新的小瓶中。必要时可使用培养瓶代替小瓶，且始终使用新鲜培养基。所需小瓶的数量取决于实验中所涉及的雄蝇类型数量以及为检测差异而预估所需的个体数量。表1每瓶超过10只雌蝇可能导致幼虫生长期间过于拥挤，进而引起子代繁殖力的变异。将培养瓶置于温度控制的培养箱中，25 °C保存。</li>
	<li>从第11天开始收集处女雌蝇和未经交配的雄蝇th 和 12th 在完成初始杂交后，需要一定的等待时间。该等待时间因温度而异；较低的温度会导致发育时间延长，从而推迟个体的羽化收集。影响羽化时间的另一个因素是培养基的类型。营养丰富的食物，例如玉米粉-酵母培养基 29，确保成体生殖系统的正常发育，从而促进交配。每4-6小时收集一次未交配的果蝇。收集时，通过引入CO₂麻醉果蝇2 将果蝇轻轻敲入小瓶中，在体视显微镜下进行性别鉴定（图2将所需果蝇按性别和表型分别放入不同的培养瓶中，并正确标记培养瓶。</li>
</ol>
注意1. 收集流程于早晨开始，首先弃除前一晚已羽化的成虫。在白天期间收集一次或两次处女雌蝇和未经交配的雄蝇。通常情况下，D. melanogaster 雄蝇在25 °C条件下羽化后8小时达到性成熟30。若果蝇维持在12小时光照/12小时黑暗的循环条件下，预期会出现两个羽化高峰：分别在光照开启后的最初1-2小时内，以及光照关闭前的2小时内。羽化发生在蛹体变暗后的24小时内。
注意2：每个小瓶中放入的雌性果蝇不应超过10只，以避免过于拥挤。此外，若其中至少有一只雌蝇不是处女蝇而需丢弃时，此数量限制也可减少雌蝇的损失。
注3. 为了在短时间内收集到足够数量的处女雌蝇和未经交配的雄蝇，可采取以下措施：设置15-20个试管 w1118 涉及两种实验雄性个体的实验表1）。轻轻撒布培养基表面，并加入几粒干燥的活性酵母颗粒以促进产卵。连续数日至少转移亲本4次。为增加每支试管内可供化蛹的表面积，可在第4天插入一张多折的滤纸（7 × 5 cm）。th 或 5th 亲本转移至另一小瓶后的第一天（图3）。如果初始杂交获得的成虫数量不足，可再等待数天，收集不同日期设置的试管中羽化的个体。建议将实验安排在数个连续的日期内进行，以均衡工作量。
2. 双重交配实验
图4展示了在14中进行的双重交配实验所涉及的主要步骤。
<ol>
	<li>在第1天早晨，设置第一次交配。在进攻性实验中，Oregon-R雄蝇为首次交配的雄性。
	<ol>
		<li>使用吸虫器，为每个小瓶配置10只4-5日龄的白眼w1118处女雌蝇和10只红眼Oregon-R naïve雄蝇。连续5天，每天设置2至3个小瓶。所需小瓶数量可根据可用个体数进行调整。让果蝇交配2小时。</li>
		<li>丢弃Oregon-R雄蝇，使用吸虫器将每只雌蝇转移至新的小瓶中（图5）。可通过观察若干形态学差异进行性别鉴定（图2）。为每个小瓶正确贴上标签，并让雌蝇在瓶中停留2天（此后称为“v1”）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在第3天，设置第二次交配。雄蝇的选择及杂交组合的建立应随机进行，以尽量减少对任一实验型雄蝇的潜在偏倚。
	<ol>
		<li>在关灯前2小时，再次使用吸虫器将雌蝇转移至一个新的小瓶中。为新小瓶正确贴上标签（此后称为“v2”）。</li>
		<li>向v2中引入三只5-6日龄、基因型相同的实验型雄蝇。</li>
		<li>对每只雌蝇重复步骤2.2.1和2.2.2。</li>
		<li>在第4天，于开灯前2小时（即不超过2.2.1操作后12小时），使用吸虫器丢弃雄蝇。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在第6天，再次将每只雌蝇转移至另一个新小瓶中。为新小瓶正确贴上标签（此后称为“v3”）。</li>
	<li>在第10天，丢弃w1118雌蝇。</li>
	<li>检查v2和v3中的子代。首次检查在雌蝇被引入v2（或v3）后13-15天进行，例如，在雌蝇首次开始于v2产卵后的第17天进行。第二次检查在首次检查后第17天准确进行。该时间范围设定了一个安全的时间上限，以确保同一小瓶中不会出现第二代果蝇。两次检查可防止过度拥挤，同时便于子代计数。
	<ol>
		<li>在第17天，检查v1，确认是否存在红眼子代；若无，则相应标记小瓶。若出现白眼子代，表明该雌蝇在初次交配时并非处女；若无子代，则表明其与参照雄蝇或实验雄蝇均未发生交配。</li>
		<li>在第17天，对v2进行首次检查。使用CO2麻醉v2中已羽化的子代，按眼色和性别进行分类。记录由第一只和第二只雄蝇所繁殖的子代数量。图6展示了每种交配方案子代中预期的表型。在本实验14中，仅雌性子代可明确归因于参照雄蝇或实验雄蝇的父系，因此仅能利用雌性子代的数据计算P2。若使用其他遗传标记可明确判定雄性子代的父系，则可将两性子代的计数均用于后续计算。检查后丢弃子代，但保留v2小瓶以备第二次检查。</li>
		<li>在第20天，对v2中新羽化的子代按步骤2.5.2操作，随后丢弃该小瓶。</li>
		<li>在第20天，首次检查v3中羽化的子代，并遵循步骤2.5.2进行操作。</li>
		<li>在第23天，对v3中新羽化的子代按步骤2.5.3操作。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
注意 1：由于多次交配可能对 P 值产生膨胀效应（2.2.2 和 2.2.3），可将交配限制在特定时间段内。该时间段取决于所用雌性和雄性基因型相关的再次交配频率。夜间发生多次交配的概率尤其降低11。
注意2：不要添加活酵母颗粒，因为当果蝇成虫数量较少时，这可能导致酵母过度生长而引发问题。
3. 数据分析
<ol>
	<li>记录的子代数量应进行适当整理，以便于直观检查，并利于使用合适的统计软件包进行高效分析（例如 JMP（来自SAS Institute）或免费的基于网页的工具（例如 <a href="http://www.vassarstats.net/" target="_blank">http://vassarstats.net/</a>).</li>
	<li>精子竞争能力。将 v2 和 v3 的计数相加。产生后代极少或无后代的雌蝇（例如 &lt;10），在操作过程中死亡，或仅被两只雄性中的一只成功授精的个体被视为无信息量，将排除在后续所有统计分析之外（2.5.1 和 表2）。计算 P2 每位有信息量的雌性个体的评分。</li>
	<li>检验P是否存在统计学上的显著差异2 实验组雄性个体间的数值比较。可采用参数检验方法（例如 Tukey HSD 或非参数例如 Steel-Dwass 检验，具体选择取决于多种因素，包括 P 值分布的偏度2 值以及方差与均值之间的依赖关系。角度转换通常应用于比例数据，例如 P2 在使用参数检验之前 31.</li>
	<li>交配率差异（可选）。针对每种实验型雄性，分别计算与两只雄性均交配过的雌性数量，以及仅与第一只雄性交配的雌性数量（在进攻实验中为参照雄性，在防御实验中为实验雄性）。采用双尾 Fisher 精确检验（可从 <a href="http://www.langsrud.com/fisher.htm" target="_blank">http://www.langsrud.com/fisher.htm</a>），确定两种实验型雄性个体之间是否存在统计学上的显著差异。</li>
	<li>性别比例（可选）。针对每只实验雄性个体，使用卡方检验确定每只雌性后代的性别比例是否偏离预期的1:1比例。</li>
</ol>

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</ol>

未声明利益冲突。

我们已经描述了实验设计，用于在受控的双重交配实验中评估遗传上不同的黑腹果蝇（D. melanogaster）雄性对后代相对贡献的差异7,8。该设计是在一个假定影响精子竞争能力的遗传因子背景下进行的，并已在进攻性检测中进行了说明，尽管类似的程序也适用于防御性检测（图1）。该实验设计可进行修改，以检验亲权成功率的其他方面，例如雌性基因型的影响32。可纳入的一种修改示例是对雌性与第二只雄性交配过程的直接监测。此外，还需注意的是，实验雄性类型的相对表现依赖于所使用的测试雄性和雌性的基因型，因此不能将其外推至涉及不同测试雄性和雌性的其他情境10,32,33。	
	由于所需个体（处女雌性和未经交配的雄性）的收集以及子代表型的统计工作较为耗时，应根据受过良好训练的人员数量调整需评估的不同实验雄性类型的数量。此处所述的实验可由一人在六周内轻松完成。事实上，最多可同时评估五种不同的实验雄性类型。唯一需要采取的额外措施是延长初始大规模交配的设置时间，以及延长收集所需个体的时间。...

自从杰夫·帕克（Geoff Parker）指出昆虫中普遍存在精子竞争现象及其进化意义以来 2，大量研究在 果蝇 以及其他物种已在多个不同层面尝试揭示这一现象。一些研究兴趣领域包括其在自然种群中的变异调查 9,10，其遗传结构及潜在遗传因素的相关性 11-14及其在推动两性间共同进化中的作用 15,16。在 D. melanogaster 雌性, 受限于特化的精子储存器官容量，即一对受精囊和一个精囊 6,17，有助于不同雄性个体精子之间的竞争。交配过程中约有1,500个精子被转移到雌性体内，但上述器官仅能容纳约500个精子 18,19在实验室中，通过受控的双重交配实验，将参照雄性与一个或多个待测雄性进行交配，已广泛用于评估精子竞争能力。 7,8.	
	精子竞争能力通过双交配实验中实验雄性个体所生育的后代占总后代的比例来评估， 即 来自实验组雄性和参照组雄性的精子。精子竞争能力包含两个组分，每一组分通过独立的实验进行评估。在进攻性实验中，评估实验组雄性精子取代第一只雄性精子的能力， 即 参考雄性个体的受精能力进行评估。相反，在防御实验中，则评估实验雄性精子抵抗被取代的能力，或降低参考雄性精子受精成功率的能力。根据实验类型（防御或进攻），通过P值评分来估算精子竞争能力1 或 P2，分别。P1 和 P2 只能取0到1之间的值。中间值通常被解释为精子混合的间接证据，表明存在涉及直接精子竞争的生理情况。依据相同的逻辑，极端值可被解释为存在显著差异的精子竞争能力的证据。早期研究表明，P2 在 D. melanogaster 随着两次交配之间时间间隔的延长，该值超过0.8并逐渐增加 7相同的实验设计已用于其他研究 果蝇 物种，P2 是评估精子竞争能力研究中常用的统计指标 20对于大多数物种，P2 所测试菌株的值高于0.6 21然而，还有若干其他机制并不涉及不同雄性精子之间的直接竞争，却也能产生相同的结果（见讨论部分）。	
	通过使用易于识别的遗传标记，可以区分由第一只或第二只雄性果蝇所生育的后代。在早期研究中，其中一只雄性会接受亚致死剂量的辐照（例如X射线），使得几乎所有由经辐照精子受精的卵均无法孵化7。随后，影响眼色素或翅形的突变成为最常用的标记。前一类突变的实例包括bw（brown）9、cn（cinnabar）22和w（white）23，而Cy（Curly）24突变则属于后一类表型；其中一些突变已被组合在同一果蝇个体中，例如cn bw。此外，具有已知遗传模式的同工酶25和微卫星标记26,27也被较少程度地使用。	
	本文所述用于检测精子竞争能力差异的实验设计，基本遵循 Clark et al. 9 的方法。这些实验所得结果仅提供关于受检雄性类型在亲权分配上差异的信息。若结合考虑受精后适合度差异的检测方法14,28以及精子可视化技术24，则可将P1 （或 P2）得分的差异解释为精子能力的差异。	
	图1概述了进攻性实验和防御性实验的设计原理。为了说明实验流程的具体操作，以下将详细解释在D. melanogaster14中进行的一项进攻性实验。该进攻性实验用于检测多基因家族精子特异性动力蛋白中间链（Sdic）对精子竞争能力是否具有可测量的影响。该多基因家族的所有成员均串联排列在X染色体上。通过删除Sdic基因簇获得敲除雄性。由于被删除的片段还包括必需基因短翅（sw），而本研究的目的是评估Sdic的功能，因此通过位于第2号染色体上的sw转基因拷贝（记作P{sw}，其同时携带mini-white报告基因）对携带Sdic-sw缺失的雄性进行功能挽救。眼色被用作可观察的标记以进行父系鉴定。除用作参照雄性的Oregon-R品系外，所有果蝇均处于white突变背景中。

<table><tbody><tr><td>琥珀色乳胶管</td><td>VWR</td><td>62996-473</td><td>内径 1/4 英寸，壁厚 1/6 英寸</td></tr><tr><td>1 ml 带刻度 XL 滤芯吸头</td><td>USA Scientific</td><td>1126-7810</td><td>可使用任意 1 ml 移液器吸头，但半透明且较长的吸头更适合作为果蝇接收器。若使用带滤芯吸头，需在剪除吸头末端后，用针头戳出并丢弃滤芯</td></tr><tr><td>封口膜</td><td>Sigma</td><td>P-7793</td><td></td></tr><tr><td>网状织物</td><td></td><td></td><td>薄而光滑</td></tr><tr><td>体视显微镜</td><td>Leica</td><td>S6D</td><td></td></tr><tr><td>CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; 储气罐</td><td>Airgas</td><td>CD-50</td><td>若无 CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;，可使用 FlyNap（Carolina Biological Supply Company）作为替代</td></tr><tr><td>FlyStuff 脚踏阀完整系统</td><td>Genesee Scientific</td><td>59-121C</td><td>若使用 FlyNap 则无需此设备</td></tr><tr><td>塑料培养瓶</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-109</td><td>配有可重复使用的纸板托盘，用于盛放培养瓶</td></tr><tr><td>棉球</td><td>Fisher Scientific</td><td>AS-212</td><td></td></tr><tr><td>活性干酵母</td><td>Red Star</td><td></td><td>普通杂货店有售</td></tr><tr><td>Sharpie 记号笔</td><td></td><td></td><td>可用不同颜色标记不同基因型</td></tr></tbody></table>

评估精子竞争能力差异的方法 果蝇

Assessing Differences in Sperm Competitive Ability in Drosophila

同种雄性个体之间为获得卵子受精权而进行的竞争是性选择的机制之一， 即 作用于最大化成功交配事件数量而非最大化生存率和存活力的自然选择 1精子竞争是指雄性个体与同一雌性交配后，其精子之间为实现受精而产生的竞争 2，即它们的精子在时间和空间上恰好相遇。这一现象已在多种动植物中被报道 3例如，野外捕获的 D. melanogaster 雌性通常含有来自2-3只雄性的精子 4精子被储存在储存能力有限的特化器官中，这可能导致来自不同雄性的精子之间发生直接竞争。 2,5.
通过实验室中受控的双重交配实验，已对不同目标雄性（实验雄性类型）的精子竞争能力进行了比较6,7。简而言之，同一只雌性依次与两种不同的雄性交配，其中一只是实验雄性，另一只是用于交叉交配的参照雄性。随后，对其他实验雄性类型也采用相同的交配方案，从而通过一个共同的参照实现对其精子竞争能力的间接比较。利用遗传标记可确定由实验雄性和参照雄性各自父系的子代所占比例，进而通过简单的数学表达式估算精子竞争能力7,8。此外，可根据实验雄性是先交配还是后交配，分别在两种不同情境下评估其精子竞争能力（分别为防御试验和进攻试验）9，这两种情形被认为反映了不同的竞争能力特征。
本文描述了一种用于探究果蝇（D. melanogaster）精子竞争能力现象背后不同遗传因素作用的方法。

表2总结了两项进攻性实验（实验1和实验2）中的部分显著特征，其中比较了具有和不具有功能性Sdic基因簇的D. melanogaster实验雄蝇（分别为I型和II型）14。在考虑了部分重复实验中遇到的不同发生率后，发现58–83%的雌蝇具有信息价值，因此可利用其后代的父系计数来计算P2。非参数检验的结果一致表明，与具有完整Sdic基因簇的雄蝇（I型）相比，缺乏该基因簇的雄蝇（II型）精子竞争能力较低14。该模式在多次重复的进攻性实验中均可重现。在平行进行的防御性实验中也观察到类似趋势，但差异无统计学意义（未显示）。重要的是，交配率无差异（步骤3.4）排除了雄性基因型影响雌性再次交配行为的可能性14。
<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td> </td>
			<td colspan="3">进攻行为检测</...

通过双交配实验可以确定具有不同基因型的黑腹果蝇（Drosophila）雄性之间精子竞争能力的差异。每项实验均涉及一个待测雄性和一个参照雄性。后代中易于识别的标记可用来推断每个雄性所繁殖后代的比例。

同种雄性个体之间为获得卵子受精权而进行的竞争是性选择的机制之一，即作用于最大化……的自然选择

以下实验的总体目标是检测具有不同基因型的黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）雄性之间在精子竞争能力上的差异。该检测通过追踪可观察的遗传标记来确定与两只不同雄性交配的雌性所产子代的父系来源。在实验中，首先让雌性与一只参照雄性交配，随后再与一只实验雄性交配。通过观察子代的眼色，推断实验雄性所繁殖后代所占的比例。实验结果通过比较实验组雄性精子相对于参照组雄性精子的表现，间接评估其竞争能力。这些方法有助于回答生物学领域中遗传学与进化方面的关键问题，例如评估某一遗传因素对精子竞争能力（SPR）的影响。演示本实验流程的将是本实验室的 S 及本科生。以下方案阐述了一种名为 sic 的遗传因子的分析方法，该因子推测编码一种参与精子运动能力的蛋白质。首先准备15到20个小瓶，每瓶中加入少量培养基。在培养基表面轻轻撒上几粒干燥的活性酵母颗粒。为促进后续操作的顺利进行，请妥善放置。始终使用新鲜的营养培养基，例如玉米粉酵母培养基。然后向每个小瓶中加入8至10只雌性果蝇，不可超过此数量，并加入5只雄性果蝇。性别鉴定可通过观察若干形态学差异进行目视判断。将小瓶储存于 25 摄氏度，并至少每隔三到五天将成虫转移至新的小瓶中。为获得最佳效果，应每隔一天转移一次成虫。保留含有卵的小瓶以收集后代。所需小瓶的数量取决于研究中实验雄性类型的数量以及统计功效所需的个体估计数量。在将亲本转移出小瓶后四到五天，通过向培养基中插入一张多折纸片来增加小瓶内可供化蛹的表面积。当观察到化蛹变暗时，检查小瓶中的化蛹情况。这些果蝇将在杂交设置后的11至12天内，于24小时内羽化。开始从这些试管中收集处女雌蝇和未经交配的雄蝇。每天清晨，先清除前一晚已羽化的果蝇。然后在当天每隔四到六小时进行一至两次，从试剂瓶中收集果蝇，通过向瓶内通入二氧化碳使果蝇麻醉。接着轻敲瓶子将果蝇震落到底部，在体视显微镜下按性别区分果蝇。根据性别和表型将所需的果蝇分别放入不同的试剂瓶中，并正确标记试剂瓶。切勿将小瓶装载超过10只潜在的果蝇。为利用果蝇闭合时间的规律，需将处女雌蝇置于12小时光照与12小时黑暗的循环条件下进行培养。果蝇闭合的高峰期出现在主观黎明后1至2小时，以及关灯前2小时。该实验有两种版本，分别称为进攻实验和防御实验。本节介绍如何在第一天早晨进行进攻实验，并使用吸管器建立第一次交配。吸管由一段连接在移液器吸头上的管子组成，吸头内设有屏障，可将吸入的果蝇保留在吸头内。吸头的内径已加宽。用于果蝇实验时，准备含有十只四至五日龄未交配雌蝇的培养管。每天设置两到三个小瓶，每个小瓶中放入10只未经交配的参照雄蝇，连续进行五天。对于每个小瓶，让果蝇交配两小时后，弃去参照雄蝇，用吸管将每只雌蝇转移到新的小瓶中，并将每个小瓶标记为V1，让雌蝇在小瓶中停留两天。在第三天，将每只雌蝇与另一种基因型的未经交配雄蝇进行第二次交配。在主观黄昏前两小时，使用吸管将雌性转移到一个新的试管中，与三只、五只或六日龄的同基因型实验雄性一起。用雄性基因型标记试管，并将新试管标记为 V2。次日早晨即为第四天。在果蝇主观黎明前两小时，使用吸虫器丢弃雄蝇。第六天，将每只雌蝇转移至另一标记为V3的新试管中。第十天，在第十七天丢弃雌蝇。检查来自子代的V型一瓶中的果蝇。确定该雌蝇与对照雄蝇交配时是否为处女蝇，以及其是否与对照雄蝇成功交配。同一天，使用二氧化碳麻醉，检查V型二瓶中子代的果蝇。按眼睛颜色和性别进行分类。然后记录第一只和第二只雄性亲本所繁殖的子代数量。在本实验中，只有雌性子代能够明确地归属于参照雄性或实验雄性亲本。在其他实验中，也可使用不同的遗传标记来确定雄性子代的父本。检查后的子代可弃去，但暂时保留V二代的两个小瓶。在第20天进行检查，再次记录V二代两个小瓶中子代的父本，并首次检查V三代小瓶中羽化的子代。然后在三天后的第23天，检查V3中出现的子代。同样，应将记录的子代数量按每只雌虫分别整理，以便于直观观察，并便于使用统计软件对V2和V3的计数进行高效分析。为了计算参照雄虫和实验雄虫产生的子代总数，需计算每只雌虫的P2值，即实验雄虫产生的子代数占该雌虫与实验雄虫和参照雄虫交配后所产生的全部子代数的比例。某些雌性个体必须从分析中排除。首先，没有后代或后代极少的个体；其次，在实验过程中死亡的个体；第三，仅被两名雄性中的一名成功授精的个体。应考察 P 二值之间是否存在统计学差异。在实验雄性类型中，应根据 P 值分布的偏度以及方差与平均比例之间的依赖关系，选择使用参数检验或非参数检验。数据通常不符合正态分布。可在进行学生 t 检验或方差分析（ANOVA）之前，对原始 P 值进行反正弦转换（也称为角转换）；或者直接使用非参数检验方法，例如在黑腹果蝇（drosophila melanogaster）的 WIL Coxin 两次进攻实验中所采用的方法。实验中的雄性个体一组具有功能性的ESIC簇，另一组则不具有功能性的ESIC簇。总体而言，58%至83%的雌性个体提供了有效信息。与具有完整ESIC簇的雄性相比，缺乏功能性ESIC簇的雄性表现出显著更低的P2评分。这表明SIC簇能够增强精子的竞争能力。观看本视频后，您应充分了解如何开展双重交配实验，从而能够检测突变型雄性与对照雄性之间在精子竞争能力上的差异。

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生物学

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评估精子竞争能力差异的方法果蝇

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