Name: 用改进的袖套法小鼠颈部心脏移植模型 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: 学习改进的无缝合袖套法小鼠颈部心脏移植技术，用于研究移植免疫学和缺血再灌注损伤。该方法已成功完成超过1000例移植，为发育生物学和免疫学研究提供了可靠的动物模型。

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作者声明不存在利益冲突的财务关系。

动物饲养在无特定病原体的屏障设施中。所有动物的护理均符合国家医学研究协会制定的《实验室动物护理原则》以及国家科学院编写的、美国国立卫生研究院出版的《实验室动物护理与使用指南》（NIH出版物编号86-23，1985年修订版）。所有实验均获得奥地利教育、科学和文化部的批准。
1. 受体准备
<ol>
	<li>通过肌肉注射给予受体动物赛拉嗪（5 mg/kg 体重）和氯胺酮（100 mg/kg 体重）进行麻醉。</li>
	<li>去除动物颈部外侧的所有毛发，并使用氯己定对术区进行三次擦拭消毒。</li>
	<li>将小鼠仰卧位放置于手术区域。</li>
	<li>接着，从颈静脉切口至右侧下颌角做一皮肤切口。</li>
	<li>随后，钝性分离右侧颈外静脉（EJV），并在结扎线之间切断其分支。</li>
	<li>然后在结扎线之间切断颈外静脉，注意保留足够长度，以便将近端残端外翻套入套管主体上。</li>
	<li>接下来切除右侧下颌下腺叶。</li>
	<li>进行静脉吻合时，将颈外静脉近端穿过聚乙烯套管，用微型夹子将其固定在套管手柄上。</li>
	<li>移除血管末端的结扎线，将管腔外翻覆盖在套管上，并用8-0丝线环固定（图1a）。</li>
	<li>随后使用双极电凝切断右侧胸锁乳突肌，以暴露颈总动脉。</li>
	<li>接下来游离颈总动脉，并在两结扎线之间切断血管。</li>
	<li>接下来游离颈总动脉，并在两结扎线之间切断血管。</li>
	<li>将血管远端穿过套管，并用动脉夹固定。</li>
	<li>移除血管末端的结扎线，使用血管扩张器扩张管腔。接着，参照颈外静脉的操作，将动脉外翻覆盖在套管上，并用8-0丝线环固定。</li>
</ol>
2. 心脏获取
<ol>
	<li>通过肌肉注射赛拉嗪（5 mg/kg 体重）和氯胺酮（100 mg/kg 体重）对供体小鼠进行麻醉。随后去除动物腹部区域的所有毛发。使用氯己定对术区进行三次擦拭消毒。然后将小鼠仰卧位放置于手术区域，操作如前所述。</li>
	<li>沿腹部正中线做切口，用棉签将内脏向左牵拉，以暴露下腔静脉（IVC）。</li>
	<li>向下腔静脉（IVC）注射 400 μl 的 1:4 肝素-生理盐水溶液，以实现肝素化。</li>
	<li>行胸骨切开术，将前胸壁向上翻折，以暴露心脏。</li>
	<li>随后，移除胸腺，并在左、右上腔静脉处做排气切口。</li>
	<li>接着，通过在头臂干水平处以 27 G 针头插管主动脉弓，逆行灌注 4° Celsius HTK 溶液。</li>
	<li>使用 8-0 丝线结扎下腔静脉和上腔静脉，并在结扎线远端将其切断。</li>
	<li>随后，在先前插管水平处切断主动脉弓，并游离肺动脉干，尽可能向远端切断。</li>
	<li>之后，用粗线结扎肺静脉，并在结扎线远端将其切断。</li>
	<li>最后，将心脏从供体部位取出，并保存于 4° Celsius HTK 溶液中（图 1b）。</li>
</ol>
3. 植入
<ol>
	<li>将心脏移植物以倒置位置置于受体颈部区域（图1c）。</li>
	<li>接着将心脏的肺动脉干拉过受体的静脉套管结构，并用丝线环固定（图1d）。</li>
	<li>以相同方式完成移植物主动脉与受体动物外翻动脉之间的吻合（图1e）。</li>
	<li>随后先移除静脉夹，再移除动脉夹。心脏在1–2分钟内恢复灌注并开始搏动。再灌注期间，用温热（35°C）的生理盐水湿润心脏。</li>
	<li>最后用6-0连续缝线关闭手术切口（图1e）。</li>
</ol>
4. 术后护理、终点
<ol>
	<li>术后可给予最多 0.3 ml 生理盐水腹腔注射，以补充液体。</li>
	<li>将动物置于加热灯下，直至从麻醉中苏醒。</li>
	<li>苏醒后，将动物送回饲养设施，并可自由摄取食物和水。</li>
	<li>为减轻术后前 7 天内的疼痛，给予卡洛芬（4 mg/kg，每 12 小时一次，皮下注射）。此外，术后立即给予布托啡诺（0.1 mg/kg），每 12 小时一次，持续 5 天。</li>
	<li>每周测量每只受体动物的体重（g），以评估营养摄入是否充足。若发现体重较手术当日下降超过 10–15%，或出现精神萎靡、行动障碍或严重弓背等表现，应在达到临床终点前采用终末剂量异氟烷吸入法处死动物。心脏发生排斥后也应立即处死动物。</li>
</ol>

<ol><li>Brandacher, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetrahydrobiopterin+compounds+prolong+allograft+survival+independently+of+their+effect+on+nitric+oxide+synthase+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Tetrahydrobiopterin compounds prolong allograft survival independently of their effect on nitric oxide synthase activity.</a> Transplantation. 81, 583-589 (2006).</li>
<li>Schneeberger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+secretory+leukocyte+protease+inhibitor+%28SLPI%29+on+ischemia%2Freperfusion+injury+in+cardiac+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Transplant%22%5BJournal%5D)">The effect of secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) on ischemia/reperfusion injury in cardiac transplantation.</a> Am J Transplant. 8, 773-782 (2008).</li>
<li>Sucher, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IDO+and+regulatory+T+cell+support+are+critical+for+cytotoxic+T+lymphocyte-associated+Ag-4+Ig-mediated+long-term+solid+organ+allograft+survival%5BTitle%5D)+AND+%22JImmunol%22%5BJournal%5D)">IDO and regulatory T cell support are critical for cytotoxic T lymphocyte-associated Ag-4 Ig-mediated long-term solid organ allograft survival.</a> JImmunol. 188, 37-46 (2012).</li>
<li>Yamashita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heme+oxygenase-1+is+essential+for+and+promotes+tolerance+to+transplanted+organs%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Heme oxygenase-1 is essential for and promotes tolerance to transplanted organs.</a> FASEB J. 20, 776-778 (2006).</li>
<li>Kienzl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomic+profiling+of+acute+cardiac+allograft+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Proteomic profiling of acute cardiac allograft rejection.</a> Transplantation. 88, 553-560 (2009).</li>
<li>Aurora, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+tenth+official+pediatric+lung+and+heart%2Flung+transplantation+report--2007%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: tenth official pediatric lung and heart/lung transplantation report--2007.</a> J Heart Lung Transplant. 26, 1223-1228 (2007).</li>
<li>Häyry, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+allograft+vasculopathy+new+strategies+for+drug+development%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Chronic allograft vasculopathy new strategies for drug development.</a> Transplant Proc. 30, 3989-3990 (1998).</li>
<li>Hosenpud, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+mechanisms+of+cardiac+allograft+vasculopathy+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immune mechanisms of cardiac allograft vasculopathy an update.</a> Transpl Immunol. 1, 237-249 (1993).</li>
<li>Libby, P., Pober, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Chronic rejection.</a> Immunity. 14, 387-397 (2001).</li>
<li>Kouwenhoven, E. A., de Bruin, R. W., Heemann, U. W., Marquet, R. L., Ijzermans, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Late+graft+dysfunction+after+prolonged+cold+ischemia+of+the+donor+kidney+inhibition+by+cyclosporine%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Late graft dysfunction after prolonged cold ischemia of the donor kidney inhibition by cyclosporine.</a> Transplantation. 68, 1004-1010 (1999).</li>
<li>Kouwenhoven, E. A., Ijzermans, J. N., de Bruin, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Etiology+and+pathophysiology+of+chronic+transplant+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl+Int%22%5BJournal%5D)">Etiology and pathophysiology of chronic transplant dysfunction.</a> Transpl Int. 13, 385-401 (2000).</li>
<li>Chen, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+of+cervical+heterotopic+heart+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A technique of cervical heterotopic heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 52, 1099-1101 (1991).</li>
<li>Huang, X., Chen, D., Chen, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%5BA+modified+model+of+cervical+heterotopic+cardiac+transplantation+for+chronic+rejection+research%5D%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Xiu+Fu+Chong+Jian+Wai+Ke+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">[A modified model of cervical heterotopic cardiac transplantation for chronic rejection research].</a> Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 22, 1508-1510 (2008).</li>
<li>Hasegawa, T., Visovatti, S. H., Hyman, M. C., Hayasaki, T., Pinsky, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterotopic+vascularized+murine+cardiac+transplantation+to+study+graft+arteriopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Heterotopic vascularized murine cardiac transplantation to study graft arteriopathy.</a> Nat Protoc. 2, 471-480 (2007).</li>
<li>Wang, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+murine+cardiac+allograft+arteriopathy+by+long-term+blockade+of+CD40-CD154+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Suppression of murine cardiac allograft arteriopathy by long-term blockade of CD40-CD154 interactions.</a> Circulation. 105, 1609-1614 (2002).</li>
<li>Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+mouse+cervical+heart+transplantation+using+a+cuff+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique.</a> Transplantation. 51, 896-898 (1991).</li>
<li>Tomita, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+technique+of+heterotopic+cervical+heart+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Improved technique of heterotopic cervical heart transplantation in mice.</a> Transplantation. 64, 1598-1601 (1997).</li>
<li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant%22%5BJournal%5D)">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8, 245-249 (2010).</li>
<li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primarily+vascularized+allografts+of+hearts+in+mice.+The+role+of+H-2D%2C+H-2K%2C+and+non-H-2+antigens+in+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Primarily vascularized allografts of hearts in mice. The role of H-2D, H-2K, and non-H-2 antigens in rejection.</a> Transplantation. 16, 343-350 (1973).</li>
<li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li>
<li>Zimmermann, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat+and+some+studies+of+the+immunologic+responses+to+fully+allogeneic+liver+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Techniques for orthotopic liver transplantation in the rat and some studies of the immunologic responses to fully allogeneic liver grafts.</a> Transplant Proc. 11, 571-577 (1979).</li>
<li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+pretreatment+with+tetrahydrobiopterin+saves+pancreatic+isografts+from+ischemia+reperfusion+injury+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Transplant%22%5BJournal%5D)">Donor pretreatment with tetrahydrobiopterin saves pancreatic isografts from ischemia reperfusion injury in a mouse model.</a> Am J Transplant. 10, 2231-2240 (2010).</li>
<li>Heron, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+accessory+cervical+heart+transplantation+in+rabbits+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Actapathologica+et+microbiologica+Scandinavica+Section+A%2C+Pathology%22%5BJournal%5D)">A technique for accessory cervical heart transplantation in rabbits and rats.</a> Actapathologica et microbiologica Scandinavica Section A, Pathology. 79, 366-372 (1971).</li>
</ol>

本研究得到了“蒂罗尔医学研究基金”（Medizinischer Forschungsfond Tirol）资助项目 #207 以及因斯布鲁克医科大学“MUI-START 资助计划”（MUI-START Förderungsprogramm）资助项目 #2010022010 的支持。

血管化异体移植物的排斥反应涉及多种不同步骤，仅通过以下方法评估时存在明显不足 体外 模型。受体致敏、次级淋巴器官中的抗原加工，以及免疫活性细胞的分化与增殖等现象得到了更深入的表征 体内因此，动物模型是转化研究的理想工具16小鼠模型在基础移植和免疫学研究中仍被视为金标准，因为目前已有大量转基因和基因敲除小鼠品系可供使用，且大量免疫学和诊断工具是专门为小鼠开发的。18小鼠颈部心脏移植模型为研究缺血再灌注损伤、免疫抑制、急性和慢性排斥反应以及耐受诱导等相关问题和开展机制研究提供了独特的工具1-3, 17, 22.
1973年，Corry 等首次描述了采用缝合技术的小鼠腹部心脏移植模型19。然而，由于小血管缝合吻合的技术难度较高，限制了该模型的广泛应用。
1991年，Matsuura et al. 在小鼠中引入了使用无缝合套管技术的颈部心脏移植模型16。自...

心脏移植是治疗各种终末期心脏病患者的首选疗法。随着外科技术的进步、感染预防措施的更加有效以及新型免疫抑制方案的应用，器官移植的预后已显著改善6。然而，近年来移植物的长期存活率并未得到显著提高7。以移植性动脉硬化为特征的慢性排斥反应仍是影响移植物长期存活的主要障碍8-11。
小鼠异位心脏移植模型为研究急性及慢性排斥反应过程中的免疫学机制提供了重要且有效的工具12-15。
迄今为止，最常见的移植模型仍是采用缝合技术的腹部小鼠心脏移植。供体心脏的升主动脉与受体的腹主动脉吻合，肺动脉与受体的下腔静脉吻合。缝合模型的许多显微外科操作难点源于血管尺寸较小，需进行缝合16,17。
与缝合模型不同，心脏被放置在受体的颈部区域，其中外部颈静脉与肺动脉吻合，而供体的颈总动脉与主动脉吻合。
采用套管技术建立颈部心脏移植模型的原理在于构建一种动物模型，该模型仅需基本的显微外科技能即可实现较高的手术成功率，从而有利于该模型的广泛应用。与缝合模型相比，该方法的主要优势在于吻合相关并发症（如出血和血栓形成）的发生率显著降低18。

<table><tbody><tr><td>Yasargil 7毫米微型永久性动脉瘤夹</td><td>Aesculap</td><td>FE720K</td><td></td></tr><tr><td>微型血管夹</td><td>S &amp;amp; T</td><td>B1 00396 V</td><td></td></tr><tr><td>显微剪刀</td><td>FST</td><td>14075-11</td><td></td></tr><tr><td>血管扩张器</td><td>S &amp;amp; T</td><td>D-5a.2 00125</td><td></td></tr><tr><td>显微镊</td><td>FST</td><td>Dumont 11271- 30</td><td></td></tr><tr><td>动脉瘤夹夹持器</td><td>S &amp;amp; T</td><td>CAF-4 00072</td><td></td></tr><tr><td>微型血管夹</td><td>S &amp;amp; T</td><td>B1 00396 V</td><td></td></tr></tbody></table>

采用改良套管技术的小鼠颈部心脏移植模型

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

小鼠模型在研究中具有特殊意义，因为可获得大量单克隆抗体以及商业化的近交系和基因敲除品系，可用于开展机制性的体内研究。尽管采用缝合技术的心脏移植模型最早在大鼠中成功建立，但由于显微外科手术的技术复杂性，该方法始终未能成功转化为在小鼠中广泛应用的等效模型。相比之下，最初也在大鼠中开发的无缝合套管技术，已成功被改进并应用于小鼠1-3。该再血管化技术主要包括两个关键步骤：I）将受体血管外翻套入聚乙烯套管上；II）将供体血管套入已外翻的受体血管，并用环形结扎固定。该方法可确保血管内皮层的连续性，手术时间短，并具有极高的通畅率4。
采用这种血管吻合技术，我们完成了超过1,000例颈部心脏移植，总体成功率达到95%。动脉供血通过吻合颈总动脉与近端主动脉弓实现，使移植心脏获得逆行灌注。静脉引流则通过将移植物的肺动脉与受体的颈外静脉进行吻合完成5。
本文提供了该技术的更多细节，以补充视频内容。

图2显示了BALB/c供体心脏移植物在完全MHC不匹配的C57BL/6受体中移植后的代表性存活数据。移植物在移植后第7±1天被排斥。对移植的同种移植物进行指腹触诊是一种检测同种移植物排斥时间进程的敏感方法。本系列实验中所有同系型心脏移植均长期存活（>150天）。
<img alt="血管吻合手术；手术过程与示意图；显微血管缝合步骤。" src="/files/ftp_upload/50753/50753fig1highres.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1"> 
图1：术中图片。(a) 受体准备期间的手术区域。(b) 获取后的心脏移植物。(c) 将心脏移植物倒置于受体颈部区域。(d+e) 植入前的供体部位。(f)<...

小鼠颈部心脏移植模型非常适合用于免疫学以及缺血再灌注损伤的研究。我们采用了一种无缝线套管技术对该手术方法进行了改良，并利用该技术成功完成了1000多例移植手术。
本文提供了该技术的更多细节，以补充视频内容。

小鼠模型在研究中具有特殊意义，因为存在大量可获得的单克隆抗体以及商业化的近交系和基因敲除小鼠品系……

我是恩斯贝格医科大学内脏移植与胸外科 Daniel KY 研究实验室的 UBA。今天我们将向您展示一种小鼠异位心脏移植模型。采用改良套管技术，对受体动物通过肌肉注射 INE 和氯胺酮进行麻醉。接下来，去除颈部侧区的所有毛发，并用氯己定擦拭手术区域三次。然后进行手术区域准备，将动物仰卧位放置于手术区域。供体小鼠通过肌肉注射氧哌啶和氯胺酮进行麻醉。接着，去除受体小鼠腹部区域的所有毛发，并用氯己定擦拭手术区域三次。接下来，准备手术区域，并将动物以仰卧位放置于手术区域。如本序列所示，来自活检供体的心脏Carlo移植物在移植到完全MHC不匹配的C57BL/6受体后七天内被排斥。而在本系列实验中进行的同系心脏移植则长期存活。尽管小鼠异位心脏移植在技术上具有挑战性，它仍然是移植免疫学相关体内机制研究的金标准。我们改进的方法仅需基本的显微外科技能即可实现较高的成功率，从而有助于该模型的广泛应用。本视频旨在帮助并指导其他研究人员在各自实验室中建立这一模型。

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用改进的袖套法小鼠颈部心脏移植模型

套管技术通过避免对小血管进行技术难度较高的缝合吻合，从而缩短并简化了小鼠异位颈部心脏移植模型的建立过程。本视频论文中展示的技术细节应有助于研究人员在其实验室中成功建立该模型。...

小鼠异位颈部心脏移植

本文介绍了一种在小鼠颈部分异位主动脉移植模型中应用无缝合套管技术的小鼠异位主动脉移植方案。该模型可用于研究慢性移植物血管病变（CAV）的潜在病理机制，并有助于评估新的治疗药物以预防其发生。...

采用改良无缝合套管技术的小鼠颈动脉主动脉移植模型

我们介绍一种内管辅助的套管技术，用于小鼠颈部异位心脏移植，以帮助将血管外翻覆盖在套管上。我们发现，两名经验丰富的外科医生相互配合可显著缩短手术时间。...

小鼠心脏移植袖套法的技术优化

在本实验方案中，采用小鼠心脏移植模型来研究心脏同种异体移植物排斥反应的机制。在此异位心脏移植模型中，通过改良的套管技术进行颈部端对端吻合式心脏移植，可提高手术效率，并确保心脏移植物的存活。...

一种改良的套管法小鼠颈部异位心脏移植模型

小鼠心脏移植模型是研究移植免疫学的重要研究工具。本方案详细介绍了小鼠异位颈部心脏移植技术，该技术涉及在受体的颈总动脉和供体的肺动脉干上放置套管，以实现层流血流。...

利用血管套环的小鼠异位颈部心脏移植

本方案介绍了一种无需使用套管、基于缝合的鼠类颈部异位心脏移植技术，旨在通过生理条件下最小化异物材料干扰，可靠地植入第二个异位心脏移植物，以评估供体特异性免疫耐受。...

用于评估小鼠供体特异性免疫耐受的免套管缝合式颈部异位心脏移植模型

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采用端侧吻合技术进行颈部异位小鼠心脏移植以研究移植免疫学

一种可用于在生理和病理生理条件下评估治疗化合物的皮肤伤口愈合小鼠模型。...

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该论文描述了在小鼠中进行异位心脏移植所需的步骤。...

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为了理解组织工程心脏瓣膜中新生组织形成和狭窄发展的细胞与分子机制，研究人员建立了一种小鼠异位心脏瓣膜移植模型。采用异位心脏移植技术，将肺动脉瓣移植至受体动物体内。...

异位心脏移植小鼠模型中肺动脉瓣移植

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