Name: 两种方法从子宫切除标本小学建立人子宫内膜基质细胞 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 15 s
Description: 了解从子宫切除标本中建立人子宫内膜基质细胞原代培养的两种方法。本视频详细演示机械刮取法和胰酶消化法的操作步骤，并通过qPCR和免疫荧光技术验证细胞身份，为生殖生物学和妇科疾病研究提供可靠的体外模型。

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感谢 Thao Dang 博士及其实验室成员提供成像和显微镜设备的使用支持。同时感谢弗吉尼亚大学生物样本库与组织研究设施（BTRF）核心、Jeff Harper 以及该校住院医师为我们提供子宫组织样本。感谢 Karol Szlachta 在示意图概览方面的协助。

本手稿所使用的子宫切除标本均根据大学机构审查委员会批准的伦理协议（编号：IRB-HSR #14424）收集。
1. 来自临床来源的样本采集
<ol>
	<li>在开始之前，获取政府和机构的伦理指南及批准文件。</li>
	<li>所有步骤均需在无菌条件下进行。</li>
	<li>若样本无法立即进行培养，应将患者来源的组织保存在培养基（RPMI 或 DMEM/High Glucose）中，置于 50 ml 离心管内，4 °C 保存。样本在此状态下最长可保存 24 小时。</li>
	<li>用 1X 无菌磷酸盐缓冲液（PBS）清洗组织样本三次，每次清洗后弃去上清液。</li>
</ol>
2. 使用刮取法制备原代细胞系
<ol>
	<li>向组织中加入 4-10 ml 生长培养基（RPMI 或 DMEM/高葡萄糖，添加 10% 胎牛血清和 1% 青霉素-链霉素），并加入 Fungizone（终浓度为 0.25 µg/ml），作用 30 分钟。</li>
	<li>弃去生长培养基。</li>
	<li>用 1X PBS 洗涤组织两次。</li>
	<li>将组织置于 6 cm 细胞培养皿中，以区分肌层与内膜层 （参见图 2A-2C 以获取进一步说明）。分离出内膜组织。</li>
	<li>使用手术刀或剃须刀片在 6 cm 细胞培养皿表面刮擦的同时将组织切成小块。这些刮痕有助于原代子宫内膜细胞的贴壁。与胰酶消化法相比，此方法需要更多的组织 （参见图 2D 以了解大致用量）。</li>
	<li>轻柔地向已刮擦的培养皿中加入 2 ml 生长培养基（组织碎片应可见，并因刮擦动作而理想地固定）。</li>
	<li>将培养皿转移至指定的细胞培养孵育箱中（37 °C，5% CO2）。为原代细胞系指定专用区域，远离其他细胞培养皿。原代培养物对感染和污染更为敏感。</li>
	<li>每天在光学显微镜下观察细胞。通常在第 2 至第 3 天，可见少量细胞从切开的组织周围开始出现 （参见图 3B）。</li>
	<li>为维持培养，每三天用 1X PBS 轻柔洗涤一次，并更换新鲜生长培养基（2 ml）。当细胞增殖速度加快时，可向 6 cm 培养皿中添加更多生长培养基（3-4 ml）。 
	注意：在洗涤和换液过程中，组织碎片可能被吸走。这不会影响贴壁细胞的生长。在后续步骤（2.10）中应将组织碎片吸除，因为一周后几乎不会再有新的细胞克隆出现。</li>
	<li>当 6 cm 培养皿中的细胞融合度达到约 75–80% 时 （参见图 3B），使用 0.05% 胰酶进行传代。原代细胞无法无限传代——一旦维持了两到三个培养皿的细胞，应立即冻存一个培养皿的细胞。如需更多传代次数，请遵循永生化实验方案（见参考文献3综述）。</li>
</ol>
3. 使用胰蛋白酶法准备原代细胞系
<ol>
	<li>取一小块子宫内膜组织 （见图2D作为参考），放入含有0.25%胰蛋白酶和卡那霉素（终浓度0.03 mg/ml）的2 ml溶液中。</li>
	<li>将组织置于37 °C、旋转平台上孵育30分钟。</li>
	<li>短暂涡旋振荡组织。</li>
	<li>以200–400 ×g离心2分钟&#160;，弃去上清液。</li>
	<li>加入新鲜的胰蛋白酶和卡那霉素。</li>
	<li>将组织在37 °C下旋转孵育1小时。</li>
	<li>涡旋振荡组织5–10秒。</li>
	<li>加入2 ml生长培养基（添加10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素），以灭活胰蛋白酶。</li>
	<li>以200–400 ×g离心细胞2–3分钟。</li>
	<li>弃去上清液，并向细胞沉淀中加入2 ml生长培养基。</li>
	<li>接种至6 cm细胞培养皿中。无需执行使用刮取法制备原代细胞系中第2.5步的刮皿操作，但该操作可增强原代细胞的贴壁和生长。</li>
	<li>每日在光学显微镜下观察细胞。通常在24–48小时后可在光学显微镜下观察到细胞&#160;（见图3C）。</li>
	<li>为维持培养，应定期观察细胞，并参照第2.9步，每2–3天更换一次培养基。</li>
	<li>传代细胞时，当细胞融合度达到75–80%时，使用0.05%或0.25%胰蛋白酶进行消化 （见图3C）。</li>
</ol>
4. 为分析保存额外组织（速冻与福尔马林固定）
<ol>
	<li>用 1× PBS 清洗样本两次。</li>
	<li>尽可能吸尽液体。</li>
	<li>进行速冻时，将子宫内膜组织样本放入 1.7 mL 离心管中 （见图 2F 和 2G）。将装有样本的 1.7 mL 离心管置于液氮中 10 秒&#160;，或直至观察到组织完全冻结。 
	注意：制备样本时切勿直接接触液氮。样本可在 -80 °C 下保存，直至后续处理或分析。</li>
	<li>进行福尔马林固定时，切取一小块子宫内膜组织 （见图 2H），浸入 10% 缓冲锌福尔马林溶液中。24 小时后，弃去福尔马林溶液，向组织样本中加入 70% 乙醇，保存至后续处理。</li>
</ol>
5. 免疫荧光（IF）
<ol>
	<li>细胞固定
	<ol>
		<li>在培养皿或培养板上接种细胞。</li>
		<li>用 1× PBS 轻柔洗涤细胞。</li>
		<li>加入预冷的（4 °C）甲醇和丙酮（按1:1比例混合），孵育5分钟。</li>
		<li>将玻片风干后再进行后续操作。如需存放，可将玻片置于4 °C保存1-2周。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>处理 IF
	<ol>
		<li>用 1×PBS 重悬细胞，孵育 10 分钟。以下步骤 1–6 中的所有洗涤和孵育步骤均在旋转平台上进行。</li>
		<li>使用含1%牛血清白蛋白（BSA）和1%物种特异性血清（来源为2）的1×PBS进行封闭nd 抗体）孵育 30 分钟&#160;室温（RT）下</li>
		<li>在一抗中孵育（请参阅抗体稀释比例的生产商建议）。参考 材料 针对特异性抗体。将一抗用新鲜的封闭缓冲液稀释，步骤同5.2.2。该孵育可进行至少2小时。&#160;在室温下或4 °C过夜。</li>
		<li>用1×PBS洗涤3次，每次5分钟&#160;每个。</li>
		<li>在二抗中孵育（参见制造商推荐的抗体稀释比例）。将二抗按步骤5.2.2的方法用新鲜封闭缓冲液稀释。为防止光漂白，此步骤及后续操作需避光进行。</li>
		<li>用1×PBS洗涤3次，每次5分钟&#160;每个。</li>
		<li>彻底干燥载玻片。</li>
		<li>加入封片剂和DAPI复染溶液。</li>
		<li>加盖盖玻片，并使用封片剂密封边缘。载玻片可在避光条件下于4 °C保存，最长可达2周。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
6. RNA 提取
<ol>
	<li>通过离心沉淀 1 × 107 个细胞。本方案中所有材料和试剂均应为无 RNA 酶的。</li>
	<li>用 1 ml TRIZOL 试剂裂解细胞，将匀浆样品在室温下孵育 10 分钟&#160;，以彻底解离核蛋白复合物。</li>
	<li>每 1 ml TRIZOL 加入 200 µl 氯仿，手动剧烈振荡 15 秒&#160;，然后在室温下孵育 2–3 分钟&#160;。</li>
	<li>在 4 °C 下以最大转速（15,000 × g）离心 15 分钟&#160;。离心后将形成三层。</li>
	<li>将上层水相转移至新的微量离心管中。加入 1 µl 甘油原以提高 RNA 产量；但此步骤仅在预期 RNA 产量较低时才必要。</li>
	<li>向水相中加入 0.5 ml 异丙醇，倒置混匀 3–5 次。在室温下孵育 10 分钟。为提高产量，可将样品置于 -20 °C 或 -80 °C 中 30 分钟。</li>
	<li>在 4 °C 下以最大转速离心 10 分钟&#160;。</li>
	<li>此时应可见少量 RNA 沉淀。弃去上清液。</li>
	<li>用 1 ml 75% 乙醇洗涤 RNA。</li>
	<li>在 4 °C 下以最大转速离心 5 分钟&#160;，弃去上清液。可再洗涤一次以去除无机污染物，但此步骤非必需。</li>
	<li>短暂干燥 RNA 沉淀，直至沉淀完全干燥（通常需 7–10 分钟）。 
	注意：可采用一个额外步骤以减少无机物残留并缩短干燥时间。乙醇洗涤后弃去上清液，再以最大转速离心 1 分钟，并吸除残留液体。注意勿吸走沉淀。</li>
	<li>根据 RNA 沉淀的大小，用无 RNA 酶的水溶解 RNA。体积通常为 10–50 µl。</li>
	<li>在 55 °C 下孵育 10 分钟，然后测定 RNA 浓度。</li>
	<li>将样品储存于 -20 °C，待后续处理。</li>
</ol>
7. 逆转录
<ol>
	<li>用 H2O 将样品 RNA（1-3 µg）补至 9 µl。</li>
	<li>将 RNA 在 70 °C 加热 10 分钟。</li>
	<li>为制备 AMV 预混液，混合以下试剂：5 µl dNTP（工作浓度为 50 µM）、5 µl N6 DNA 寡核苷酸（工作浓度为 80 µM）、5 µl 5X AMV 缓冲液和 1 µl AMV。该预混液按每份样品配制。</li>
	<li>向加热后的 RNA 中加入 16 µl 预混液。最终反应体积为 25 µl。</li>
	<li>使用以下 PCR 条件进行逆转录：（第一阶段）42 °C 反应 90 分钟，（第二阶段）95 °C 反应 5 分钟，（第三阶段）4 °C 保存至后续处理。</li>
</ol>
8. 实时 PCR
<ol>
	<li>使用 表1 中列出的引物、退火温度、循环次数和试剂进行PCR反应。 
	注意：使用PCR试剂时，建议遵循生产商的说明（参见 材料 部分中的公司名称和目录编号）。</li>
</ol>
9. 体外 蜕膜化方案（源自参考文献） 4 和 5)
<ol>
	<li>接种子宫内膜细胞。</li>
	<li>培养至细胞融合度达到75-85%。</li>
	<li>细胞融合后，用1×PBS洗涤一次。</li>
	<li>迅速加入无激素培养基（含5%活性炭处理胎牛血清和1%青霉素-链霉素的酚红-free RPMI培养基）。</li>
	<li>24小时后，加入含有醋酸甲羟孕酮（MPA）（终浓度1 µM）和8-溴腺苷酸环磷酸（cAMP）（终浓度0.5 mM）的无激素培养基。</li>
	<li>至少48小时后，终止反应，并保留培养板用于后续处理。</li>
</ol>

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</ol>

作者无任何披露事项。

其他研究团队已描述并改进了子宫内膜基质细胞培养的制备方法，其中大多数方法采用胶原酶&#160;4,12,13,15-18。在本文中，我们提供了两种简化的原代子宫内膜基质细胞培养方法及其相关证据，本实验室出于经济性以及胰蛋白酶和/或剃刀片易于获取的考虑，正在使用这两种方法。
在比较我们的两种方法时，两种方法均能成功建立可存活的原代培养细胞。我们更倾向于使用胰蛋白酶法，因为该方法通常产量更高，且所需样本量较小。然而，如果准备时间有限，刮取法仅需30分钟，而使用胰蛋白酶法接种细胞则需要一个半小时以上。
值得注意的是，本研究采用子宫切除术样本而非子宫内膜活检样本进行方法学展示。子宫内膜活检侵入性较小，通常获得的标本量较少。然而，本文所述方法（尤其是胰蛋白酶法）应同样适用于子宫内膜活检样本并获得培养物。
原代子宫内膜基质细胞具有多种应用价值。比较人类与其他哺乳动物的子宫内膜基质细胞培养，可能为长期存在争议的问题提供线索：为何人类会发生月经。此外，尚有其他尚未深...

人类子宫体由三层组成，即外膜（或浆膜）、肌层和内膜。区分这三层是建立内膜细胞系的重要步骤。外膜是子宫的最外层，由一层薄的浆液性细胞构成。肌层是子宫较厚的中层，由平滑肌细胞组成。内膜为子宫的内层，包含上皮细胞和间质细胞群体。
子宫内膜进一步分为基底层，其干细胞群体被认为大约每28天重新填充功能层&#160;1人类子宫内膜的功能层会因循环激素的作用而发生显著的生化和形态学变化。这些激素来源于垂体和卵巢。
激素的协调产生与释放导致生殖周期的发生。生殖周期旨在使子宫内膜为潜在的胚胎着床做好准备。在人类中，生殖周期被称为“月经周期”，并分为三个阶段——增殖期、分泌期和月经期。增殖期涉及子宫内膜功能层的增殖，而分泌期则以功能层的成熟为特征。具体而言，细胞外结构的改变、分泌物的产生以及细胞分化提示可能发生着床。如果在分泌期末期之前未发生着床，子宫内膜功能层将在月经期脱落。关于月经的重要性及其触发功能层脱落的具体事件，目前仍在讨论之中。在人类中，有观点认为月经是分泌期中期一种特定分化事件的结果，该事件被称为“自发性蜕膜化”。 2在本论文中，我们提供了两种子宫内膜基质细胞分离方法的详细操作流程，并结合免疫荧光与数字图像技术，展示这些方法的有效性。此外，我们应用了一种常用 体外 自发性蜕膜化模型以验证子宫内膜基质细胞的分离。

<table><tbody><tr><td>0.25 胰蛋白酶或 0.05% 胰蛋白酶&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>SH3023602 或 SH30004202</td><td></td></tr><tr><td>1.7 微型离心管&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Genesee Scientific</td><td>22-272A</td><td></td></tr><tr><td>1 &amp;micro;l、20 &amp;micro;l、200 ml 和 1,000 &amp;micro;l 移液器&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Genesee Scientific</td><td>24-401、24-402、24-412、24-430</td><td></td></tr><tr><td>15 ml 锥形管&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>339650</td><td></td></tr><tr><td>50 ml 锥形管&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>339652</td><td></td></tr><tr><td>6 cm 细胞培养皿&amp;nbsp;</td><td>Thermo scientific</td><td>12-556-002</td><td></td></tr><tr><td>8 孔板室&amp;nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>AB-4162</td><td></td></tr><tr><td>乙酸盐&amp;nbsp;</td><td>Fisher scientific</td><td>C4-100</td><td></td></tr><tr><td>AMV 逆转录酶/缓冲液&amp;nbsp;</td><td>Bio Labs</td><td>M077L</td><td></td></tr><tr><td>牛血清白蛋白 (BSA)&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP-1605-100</td><td></td></tr><tr><td>缓冲锌福尔马林&amp;nbsp;</td><td>Thermo</td><td>59201ZF</td><td></td></tr><tr><td>活性炭处理胎牛血清 (FBS)&amp;nbsp;</td><td>Fisher</td><td>NC9019735</td><td></td></tr><tr><td>氯仿&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1145-1</td><td></td></tr><tr><td>盖玻片&amp;nbsp;</td><td>Fisher Brand</td><td>12-544D</td><td></td></tr><tr><td>环磷酸腺苷 (cAMP)&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>B7880</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/高葡萄糖&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>SH30243FS</td><td></td></tr><tr><td>dNTP&amp;nbsp;</td><td>Bioline</td><td>BIO-39025</td><td></td></tr><tr><td>驴抗山羊-TRITC&amp;nbsp;</td><td>Santa Cruz</td><td>SC-3855</td><td></td></tr><tr><td>驴血清&amp;nbsp;</td><td>Jackson&amp;rsquo;s lab</td><td>017-000-002</td><td></td></tr><tr><td>E-钙黏蛋白抗体&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Epitomics</td><td>1702-1</td><td></td></tr><tr><td>乙醇&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2818-1</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清 (FBS)&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-600-511</td><td></td></tr><tr><td>两性霉素B（Fungizone）&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15290-018</td><td></td></tr><tr><td>GAPDH 探针&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>HS99999905</td><td></td></tr><tr><td>糖原&amp;nbsp;</td><td>5Prime</td><td>2301440</td><td></td></tr><tr><td>山羊抗小鼠-FITC&amp;nbsp;</td><td>Jackson&amp;rsquo;s Lab</td><td>115-096-003</td><td></td></tr><tr><td>异丙醇&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2618-1</td><td></td></tr><tr><td>卡那霉素&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP906-5</td><td></td></tr><tr><td>醋酸甲羟孕酮 (MPA)&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>M1629</td><td></td></tr><tr><td>甲醇 (MeOH)&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>A4-08-1</td><td></td></tr><tr><td>封片剂（含DAPI）&amp;nbsp;</td><td>Vector Labratories</td><td>H-1500</td><td></td></tr><tr><td>N6 DNA 寡核苷酸&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>15 号刮铲&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>BD</td><td>371615</td><td></td></tr><tr><td>广谱细胞角蛋白&amp;nbsp; 小鼠单克隆抗体&amp;nbsp;</td><td>Cell Signaling</td><td>4545</td><td></td></tr><tr><td>PBS（磷酸盐缓冲液）&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP-399-4</td><td></td></tr><tr><td>青霉素-链霉素-谷氨酰胺溶液 100X&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>SV30082.01</td><td></td></tr><tr><td>PML 山羊多克隆抗体&amp;nbsp;</td><td>Santa Cruz</td><td>SC-9862</td><td></td></tr><tr><td>引物(s)&amp;nbsp;</td><td>Eurofins</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RPMI&amp;nbsp;</td><td>Hyclone</td><td>SH30027FS</td><td></td></tr><tr><td>RPMI（无酚）&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>11835</td><td></td></tr><tr><td>Sybr Green&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>AB-4162</td><td></td></tr><tr><td>Taqman&amp;nbsp;</td><td>Thermo</td><td>AB-4138</td><td></td></tr><tr><td>Trizol&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>波形蛋白抗体&amp;nbsp;</td><td>Epitomics</td><td>4211-1</td><td></td></tr></tbody></table>

从子宫切除标本中建立原代人子宫内膜基质细胞的两种方法

Two Methods for Establishing Primary Human Endometrial Stromal Cells from Hysterectomy Specimens

人们已投入大量努力来建立体外（in vitro）细胞培养系统，这些系统旨在模拟多种体内（in vivo）过程。来源于人子宫内膜样本的细胞培养系统也不例外，其应用范围涵盖正常的周期性生理过程，到诸如妇科癌症、感染性疾病和生殖功能障碍等子宫内膜病理状态。本文提供了两种从手术切除的子宫内膜子宫切除标本中建立原代子宫内膜基质细胞的方法。第一种方法称为“刮取法”，通过手术刀或剃刀进行机械刮取；第二种方法称为“胰蛋白酶法”，利用胰蛋白酶的酶活性促进细胞分离和原代细胞的生长。我们通过数字图像和显微镜图像展示了每一步操作的详细方法，并提供了通过定量实时聚合酶链式反应（qPCR）和免疫荧光（IF）对子宫内膜基质细胞系进行鉴定的示例。

如实验方案部分所强调的，在处理和制备人体组织时，务必遵守政府、机构及伦理准则。
本论文包含建立原代子宫内膜细胞培养所用的“刮取法”（图1A）和“胰酶消化法”（图1B）的一般操作流程示意图。这两种方法在实验方案部分（见第1.-3.步）中有详细描述。两种方法均可成功培养原代子宫内膜细胞。其中，“刮取法”的优势在于制备时间较短；然而，与“胰酶消化法”相比，观察到活细胞所需的时间通常要长2至4倍。
以下是来自组织采集的初始人体组织的数字图像。可通过各层组织的粗细程度来区分子宫的各层结构，即肌层较厚且呈肌性，而子宫内膜较薄且质地较柔软。我们用白色高亮显示了厚实的平滑肌层（肌层），并用黑色轮廓标出了两个不同子宫切除样本中感兴趣的子宫内膜层（图2A和2B）。在图2C中，组织的摆放方向为肌层朝上，子宫内膜朝下。薄薄的浆膜层已...

从子宫切除标本中建立原代子宫内膜基质细胞培养体系是一种有价值的生物学技术，也是开展多种研究目标之前的关键步骤。本文中，我们描述了两种用于从人患者手术切除的子宫内膜组织中建立基质细胞培养的方法。&#160;

人们已投入大量努力来建立体外细胞培养系统。这些系统旨在模拟多种体内过程。细胞……

本实验的总体目标是从切除的子宫标本中建立原代子宫内膜基质细胞培养体系。首先通过区分并分离子宫各层组织，以获取一段子宫内膜组织；第二步是在刮取法和剪碎法之间选择一种细胞分离方法，当采用刮取法时。采用机械力和刮取法分离和解离子宫内膜基质细胞。或者，在使用胰蛋白酶法时，则利用胰蛋白酶的酶活性来分离和解离子宫内膜基质细胞。最终通过显微镜观察细胞生长状况和形态，而文中讨论的其他技术则用于验证子宫内膜基质细胞培养物。该方法有助于回答生殖领域中一些关键的生理学问题，例如生殖周期和月经现象。本论文所使用的子宫切除标本均依照大学IRB批准的伦理协议（编号I-R-B-H-S-R 1 4 4 2 4）进行收集。在处理样本前，将患者来源的组织置于含有高糖RPMI或DMEM的50毫升离心管中，并在4摄氏度条件下保存，保存时间不得超过24小时。准备开始时，用1×PBS清洗组织样本三次，每次清洗后弃去上清液。然后向组织样本中加入4到10毫升含有10%胎牛血清（FBS）和1%青霉素-链霉素的生长培养基。同时加入真菌抑制剂，使其终浓度为0.25微克/毫升，并孵育30分钟。接着弃去生长培养基，用1倍PBS缓冲液洗涤组织两次。将组织置于一个6厘米的细胞培养皿中，并参考这些图像识别子宫内膜层。随后分离子宫内膜，将其他组织层保存以备后续使用。使用手术刀或剃须刀片在细胞培养皿表面刮擦的同时，将组织横切成小块。划痕有助于新生的原代子宫内膜基质细胞的贴附。接下来，向划痕后的培养皿中轻柔加入两毫升生长培养基。在此阶段，可见组织碎片并因划痕动作而固定。将培养皿置于指定的细胞培养孵育箱中，与其他细胞系分开培养，以避免污染。每天使用光学显微镜观察细胞，观察切片组织在第2天或第3天起每三天出现的小群细胞。轻轻去除旧的培养基，用一毫升磷酸盐缓冲液（XPBS）洗涤培养物，然后加入两毫升新鲜生长培养基。开始添加四毫升生长培养基。在洗涤步骤中，当增殖速率增加时，吸除残留的组织碎片。新的克隆不太可能从组织中形成。培养一周后传代细胞，使用0.05%胰蛋白酶消化。当细胞融合度达到75%至80%时，冻存一板细胞。当维持两到三个培养皿后，原代细胞无法无限传代。开始胰蛋白酶介导的分离时，将一小块子宫内膜组织放入锥形管中，加入2毫升含0.03毫克/毫升链霉素的0.25%胰蛋白酶，然后将组织在37摄氏度的旋转平台上孵育30分钟。接下来，短暂涡旋组织，然后在200至400 ×g条件下离心2分钟，弃去上清液并加入新鲜的胰蛋白酶。加入制霉菌素后，将组织在37°C下旋转孵育1小时。孵育结束后，将组织涡旋5至10秒。然后加入含有10% FBS和1%青霉素-链霉素的2毫升培养基。为灭活胰蛋白酶，将细胞在200至400 × g离心2至3分钟。然后弃去上清液，并重悬细胞沉淀。将细胞悬液接种于含两毫升培养基的六厘米细胞培养皿中，并轻轻刮擦培养皿表面以促进原

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本视频介绍了从人网膜标本中分离原代人腹膜间皮细胞的实验方案。分离得到的间皮细胞可用于建立 体外...

间皮细胞分离：一种从人网膜组织标本中分离原代间皮细胞的技术

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从实体标本中获取原发性卵巢癌细胞的方法

在此，我们介绍一种构建三维的方案 体外 由原代人腹膜间皮细胞和成纤维细胞与细胞外基质分层构建的腹膜腔内衬模型，用于研究卵巢癌细胞的黏附、侵袭和增殖。...

模拟人类腹膜腔类器官培养中卵巢癌扩散的早期步骤

本研究提出了一种标准化且经过验证的小鼠原代子宫内膜基质细胞和上皮细胞的分离与培养方法，可用于共培养系统以研究 体外...

小鼠子宫内膜上皮细胞和基质细胞的分离方法用于 体外 蜕膜化

本研究提供了一种经过验证和优化的人子宫内膜基质细胞分离与培养的实验方案，可用于 体外...

人子宫内膜基质细胞的分离 体外 蜕膜化

本方法的目的是通过成球实验，结合功能分析以及流式细胞术和蛋白质印迹法进行表型鉴定，以可靠地鉴定癌细胞系和原代人肿瘤样本中的肿瘤干细胞（CSC）。...

从妇科及乳腺癌肿瘤中获取肿瘤干细胞球

本文介绍了一种生成人原代子宫内膜类器官的方案，该类器官包含上皮细胞和间质细胞，并保留了天然子宫内膜组织的特性。本方案详细描述了从子宫组织获取到子宫内膜类器官组织学处理的全过程。...

人原代子宫内膜类器官的多细胞生成

本方案描述了建立小鼠子宫内膜上皮类器官以进行基因表达和组织学分析的方法。...

从小鼠子宫建立三维子宫内膜类器官

本方案展示了一种可靠且有效的方法，用于从绝经前或绝经后的人类阴道组织中分离原代成纤维细胞。现有的阴道成纤维细胞分离方案未考虑从衰老组织中进行细胞分离所面临的挑战。阴道组织来源于接受盆腔器官脱垂手术后的女性。...

人体阴道组织处理及原代成纤维细胞的分离

该方案展示了一种新型的体外实验模型，可通过三维（3D）打印支架重现两种贴壁细胞系的生物学特性。文中详细描述了从细胞制备、细胞培养到分析与评估的模型构建及操作流程。...

使用两种贴壁细胞系的共培养模型

了解从子宫切除标本中建立人子宫内膜基质细胞原代培养的两种方法。本视频详细演示机械刮取法和胰酶消化法的操作步骤，并通过qPCR和免疫荧光技术验证细胞身份，为生殖生物学和妇科疾病研究提供可靠的体外模型。

从子宫切除标本中建立原代人子宫内膜基质细胞的两种方法

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