Name: 方法来描述自发和惊吓引起的步态中的鱼藤酮诱导的帕金森病模型果蝇 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: 了解如何使用鱼藤酮诱导的帕金森病果蝇模型来评估自发性和惊吓引起的运动行为。该方法通过双瓶装置和果蝇活动监测器量化运动缺陷，为研究神经退行性疾病中的运动障碍提供了重要框架。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者谨此感谢科尔比学院语言资源中心的Qiuli Wang在视频处理方面的技术支持，以及科尔比学院音乐系的Eric Thomas提供的背景音乐。本项目得到了美国国家研究资源中心INBRE项目（P20RR016463-12）、美国国家普通医学科学研究所（P20 GM103423-12）、美国国立卫生研究院、科尔比学院科学部资助（STA）的资助。JL和LWM获得了科尔比学院暑期学者基金的资助。

1. 果蝇 惊跳诱导的运动行为检测
<ol>
	<li>药物处理
	<ol>
		<li>使用 CO₂ 麻醉以固定所需数量（约 8-12 只）的 1-3 日龄雄性果蝇2 并将它们转移到含有药物补充食物的离心管中。注意：另一种麻醉剂 例如， 可以使用乙醚或冰对果蝇进行麻醉，以便于计数和操作。</li>
		<li>让果蝇在水平放置的试管中恢复麻醉状态20分钟（或直至完全恢复），以防止果蝇粘附在食物上；随后将试管直立，置于25 °C、12小时黑暗/12小时光照的培养箱中继续实验。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>实验设置
	<ol>
		<li>用永久性记号笔在双瓶装置的瓶壁上画圆标记，将其分为三个相等的部分，每段长度为6.33 cm。</li>
		<li>药物暴露3天后，将果蝇在不麻醉的情况下转移至底部小瓶中，并迅速将上部小瓶盖在开口上。用透明胶带将两个小瓶固定在一起。</li>
		<li>让果蝇在新环境中适应15分钟。</li>
		<li>将小瓶置于白色背景上，并将数码相机放置在双小瓶装置前方适当距离处，确保计时器可见。调整相机位置，使整个装置完整出现在单张图像画面中，且所有果蝇均处于清晰对焦范围内。为保持各次试验图像范围的一致性，需标记相机和小瓶的固定位置。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>迁移实验
	<ol>
		<li>在摄像视野中清晰显示试验编号、药物处理和计时器。</li>
		<li>用力将双瓶装置在实验台面上轻敲3次，确保所有果蝇均落入瓶底。同时启动计时器。</li>
		<li>每1分钟内每隔5秒拍摄一次装置的照片。注意：也可录制视频，并在适当的时间间隔暂停视频进行测量。</li>
		<li>让果蝇恢复静置 1 分钟，期间不要打扰。</li>
		<li>重复上述步骤2次，每次试验之间间隔1分钟恢复时间。注意：每套装置的数据采集需耗时5分钟。各次试验之间的敲击力度应保持一致。可同时操作多个（至少3个）装置。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>数据分析
	<ol>
		<li>观察并记录随时间推移各区域内的果蝇数量。计算随时间推移各区域内果蝇的百分比。 
注意事项：使用同一批果蝇，在2至3个感兴趣的时间点重复整个实验过程，例如第3、5和7天。若实验过程中果蝇死亡过多，可增加初始实验果蝇数量以补偿死亡率。采用适当的统计学方法对数据进行比较。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Drosophila 自发运动检测
<ol>
	<li>食物制备
	<ol>
		<li>用 15 ml 去离子水和所需剂量的鱼藤酮（或其他感兴趣的药物）重悬 3 g 即用型 Drosophila 培养基。</li>
		<li>待食物混合物凝固（约 5 分钟）后，小心地将食物装入制造商提供的透明管（5 mm × 65 mm）中，高度约为 1 cm。通过将管子垂直插入食物中并轻轻旋转，使食物进入管内。注意：可在管口轻按手指以形成负压，有助于填充。食物中不应含有气泡或表面不平整，否则果蝇可能被困住。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>实验设置
	<ol>
		<li>在靠近食物一端的管口盖上塑料帽。尽量轻柔地推入塑料帽，以免用力过猛在瓶内产生气泡。</li>
		<li>使用 CO2 麻醉 1 日龄雄性果蝇，并用画笔小心地将 1 只雄蝇放入每根管中。根据所需实验重复次数重复此步骤。</li>
		<li>用一小团棉球塞住远离食物一端的管口，棉球可由市售大团棉花手工搓成。</li>
		<li>将管子水平放置，让果蝇恢复 15 分钟，确保所有果蝇存活且活动正常。将管子插入 DAM 系统，并确保所有管子相对于 DAM 的位置一致。注意：可将监测区域置于管子中部，也可将所有管子推至一侧，使管子末端处于监测范围内。注意：有关该方法的变体，请参见讨论部分。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>数据采集
	<ol>
		<li>将 DAM 系统置于设定为 25 °C、12 小时黑暗与 12 小时光照循环的培养箱中。将 DAM 连接到数据采集系统。打开 DAM 软件，在“偏好设置”中选择时间间隔（bin length）为 10 分钟。开始数据采集，并让程序连续采集 7 天的数据。注意：如有需要，可调整时间间隔。</li>
		<li>数据分析 
		注意：对数据进行处理，以每分钟活动计数作为长期自发运动的衡量指标。
		<ol>
			<li>打开 DAM 文件扫描程序，点击“选择输入数据”以访问监测数据。</li>
			<li>选择适当的监测器范围，并将时间间隔设为 10 分钟。</li>
			<li>在输出文件类型中选择“通道文件”。其余选项保持默认设置。</li>
			<li>点击“扫描数据”并保存至指定文件夹。</li>
			<li>将数据导入昼夜节律分析软件，获得每分钟计数。注意：Clocklab 软件常用于数据分析，但也有其他可用选项。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Olanow, C. W., Tatton, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Etiology+and+pathogenesis+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+review+of+neuroscience%22%5BJournal%5D)">Etiology and pathogenesis of Parkinson's disease.</a> Annual review of neuroscience. 22, 123-144 (1999).</li>
<li>Coulom, H., Birman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+exposure+to+rotenone+models+sporadic+Parkinson%27s+disease+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Chronic exposure to rotenone models sporadic Parkinson's disease in Drosophila melanogaster.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 10993-10998 (2004).</li>
<li>Hosamani, R., Ramesh, S. R., Muralidhara, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attenuation+of+rotenone-induced+mitochondrial+oxidative+damage+and+neurotoxicty+in+Drosophila+melanogaster+supplemented+with+creatine%5BTitle%5D)+AND+%22Neurochemical+research%22%5BJournal%5D)">Attenuation of rotenone-induced mitochondrial oxidative damage and neurotoxicty in Drosophila melanogaster supplemented with creatine.</a> Neurochemical research. 35, 1402-1412 (2010).</li>
<li>Islam, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+neuroprotective+role+of+the+human+uncoupling+protein+2+%28hUCP2%29+in+a+Drosophila+Parkinson%27s+disease+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+disease%22%5BJournal%5D)">A neuroprotective role of the human uncoupling protein 2 (hUCP2) in a Drosophila Parkinson's disease model.</a> Neurobiology of disease. 46, 137-146 (2012).</li>
<li>Lawal, H. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+vesicular+monoamine+transporter+reduces+pesticide-induced+loss+of+dopaminergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of%22%5BJournal%5D)">The Drosophila vesicular monoamine transporter reduces pesticide-induced loss of dopaminergic neurons.</a> Neurobiology of. 40, 102-112 (2010).</li>
<li>St Laurent,, O'Brien, R., M, L., Ahmad, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+butyrate+improves+locomotor+impairment+and+early+mortality+in+a+rotenone-induced+Drosophila+model+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Sodium butyrate improves locomotor impairment and early mortality in a rotenone-induced Drosophila model of Parkinson's disease.</a> Neuroscience. 246, 382-390 (2013).</li>
<li>Sherer, T. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+of+toxicity+in+rotenone+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Mechanism of toxicity in rotenone models of Parkinson's disease.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 23, 10756-10764 (2003).</li>
<li>Munoz-Soriano, V., Paricio, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+models+of+Parkinson%27s+disease%3A+discovering+relevant+pathways+and+novel+therapeutic+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Parkinson%27s+disease%22%5BJournal%5D)">Drosophila models of Parkinson's disease: discovering relevant pathways and novel therapeutic strategies.</a> Parkinson's disease. , 520640(2011).</li>
<li>Steffan, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+deacetylase+inhibitors+arrest+polyglutamine-dependent+neurodegeneration+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Histone deacetylase inhibitors arrest polyglutamine-dependent neurodegeneration in Drosophila.</a> Nature. 413, 739-743 (2001).</li>
<li>Auluck, P. K., Bonini, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+prevention+of+Parkinson+disease+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+medicine%22%5BJournal%5D)">Pharmacological prevention of Parkinson disease in Drosophila.</a> Nature medicine. 8, 1185-1186 (2002).</li>
<li>Whitworth, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+glutathione+S-transferase+activity+rescues+dopaminergic+neuron+loss+in+a+Drosophila+model+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Increased glutathione S-transferase activity rescues dopaminergic neuron loss in a Drosophila model of Parkinson's disease.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 8024-809 (2005).</li>
<li>Ahmad, S. T., Steinmetz, S. B., Bussey, H. M., Possidente, B., Seggio, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Larval+ethanol+exposure+alters+free-running+circadian+rhythm+and+per+Locus+transcription+in+adult+D.+melanogaster+period+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+brain+research%22%5BJournal%5D)">Larval ethanol exposure alters free-running circadian rhythm and per Locus transcription in adult D. melanogaster period mutants.</a> Behavioural brain research. 241, 50-55 (2013).</li>
<li>Seggio, J. A., Possidente, B., Ahmad, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Larval+ethanol+exposure+alters+adult+circadian+free-running+locomotor+activity+rhythm+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Chronobiology+international%22%5BJournal%5D)">Larval ethanol exposure alters adult circadian free-running locomotor activity rhythm in Drosophila melanogaster.</a> Chronobiology international. 29, 75-81 (2012).</li>
<li>Chaudhuri, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+genetic+and+environmental+factors+in+a+Drosophila+parkinsonism+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+neuroscience+%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Interaction of genetic and environmental factors in a Drosophila parkinsonism model.</a> The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 2457-2467 (2007).</li>
<li>Feany, M. B., Bender, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+model+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A Drosophila model of Parkinson's disease.</a> Nature. 404, 394-398 (2000).</li>
<li>Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assaying+locomotor%2C+learning%2C+and+memory+deficits+in+Drosophila+models+of+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Assaying locomotor, learning, and memory deficits in Drosophila models of neurodegeneration.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2011).</li>
<li>Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+iterative+negative+geotaxis+%28RING%29%3A+a+new+method+for+assessing+age-related+locomotor+decline+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+gerontology%22%5BJournal%5D)">Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila.</a> Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).</li>
<li>Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+assay+Drosophila+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Methods to assay Drosophila behavior.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).</li>
<li>Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+video+tracking+of+locomotion+in+adult+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2009).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

在本研究中，我们描述了两种用于检测鱼藤酮诱导条件下长期自发运动和短期惊吓诱发运动的方法 黑腹果蝇 帕金森病模型。还可以测量暴露于其他已知可模拟帕金森病的药理学试剂的果蝇的这些运动特征 例如， 百草枯14帕金森病的遗传模型 例如， α-突触核蛋白突变体15以及其他影响运动能力的果蝇疾病模型。对于这两种方法，均可考虑替代方案和修改方案。可以使用冰对果蝇进行麻醉，这有助于缓解CO₂麻醉的一些局限性。2 麻醉，例如在数据收集中因二氧化碳滞留导致的延迟2 效果消退。
在惊跳诱导的运动实验中，由于果蝇的活动能力存在昼夜节律变化，因此在不同实验之间于每天相同时间点采集数据至关重要。此外，将果蝇引入测试装置时应避免使用麻醉。与大多数依赖在预定时间内跨越阈值瞬间状态的惊跳反应运动实验不同10,11,15,16，我们的方法类似于快速迭代负向趋地性（RING）实验17,18，能够对一段时间内多个连续时间点的运动情况进行监...

运动功能障碍是帕金森病的主要症状，主要由黑质多巴胺能神经元的退化引起1。鱼藤酮是一种酮类杀虫剂，已被广泛用于在Drosophila中建立帕金森病运动功能障碍的模型2-6。鱼藤酮通过阻断氧化磷酸化通路引发氧化损伤，最终导致细胞死亡7。多巴胺能神经元对鱼藤酮的毒性更为敏感，使得该化学物质的作用主要表现为运动功能障碍2,7。通过在果蝇中诱导帕金森病症状，我们可以更深入地理解该疾病并改善其症状6,8-11。Drosophila是研究这一效应的理想模型，因其基因操作简便、易于饲养且生命周期短。
多项研究表明，鱼藤酮会导致果蝇（Drosophila）出现短期惊跳诱导的运动缺陷——当果蝇在添加鱼藤酮的食物中饲养时，其受到惊跳刺激后的负向趋地性反应会变慢2-6。与对照组相比，果蝇在试管装置中向上攀爬的速度减慢，表明其存在惊跳诱导的运动缺陷。
鱼藤酮对长期自发运动的影响尚不明确。 果蝇 活动监测器（DAMs）已成功用于监测运动行为 果蝇 昼夜节律研究12,13将果蝇分别放入单独的管中，并装入DAM系统。该装置配备有红外传感器，可记录果蝇穿过红外光束的次数。这些计数可用于评估果蝇不受干扰状态下的运动和活动水平12,13通过将果蝇置于DAM中，可表征鱼藤酮对其长期运动能力的影响。本研究描述了测量短期惊吓诱导运动和长期自发运动的方法，以更深入地理解鱼藤酮介导的运动功能缺陷。对模拟帕金森病的运动缺陷进行表征具有重要意义，因其有助于研究其他可能逆转此类运动障碍的化合物。

<table><tbody><tr><td>标准窄瓶</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-120</td><td></td></tr><tr><td>鱼藤酮</td><td>Sigma</td><td>R8875</td><td>储存于冷冻柜中，每次实验前新鲜配制</td></tr><tr><td>二甲基亚砜（DMSO）</td><td>Sigma</td><td>D8418</td><td>鱼藤酮的溶剂</td></tr><tr><td>即用型果蝇培养基</td><td>Carolina Biological&amp;nbsp;</td><td>配方 4-24</td><td></td></tr><tr><td>果蝇活动监测仪（DAM）</td><td>Trikinetics</td><td>DAM2</td><td>trikinetics.com</td></tr><tr><td>DAM 管</td><td>Trikinetics</td><td>5 × 65 mm 管</td><td></td></tr><tr><td>含鱼藤酮食物配方（125 mM 剂量）</td><td></td><td></td><td>将 25 mg 鱼藤酮溶于 1 ml DMSO 中，配制成 62.5 mM 的鱼藤酮储备液；对于 125 mM 剂量，将 10 mM 鱼藤酮储备液（溶于 DMSO）加入 5 ml 水中。</td></tr></tbody></table>

用于表征鱼藤酮诱导的帕金森病模型中自发性及惊吓诱导运动行为的方法 果蝇

Methods to Characterize Spontaneous and Startle-induced Locomotion in a Rotenone-induced Parkinson's Disease Model of Drosophila

帕金森病是一种神经退行性疾病，由中枢神经系统中多巴胺能神经元的退化引起，主要发生在黑质部位。该疾病导致运动功能障碍，在人类中表现为僵硬、震颤和痴呆。鱼藤酮是一种杀虫剂，通过抑制线粒体电子传递链的功能引起氧化损伤，也可用于建立帕金森病的动物模型。 果蝇果蝇具有固有的负向趋地性反应，当受到惊扰时会向上攀爬。已有研究证实，鱼藤酮会导致果蝇早期死亡及运动功能障碍，使其在被轻敲向下后丧失向上攀爬能力。然而，鱼藤酮对果蝇自发运动的影响尚缺乏充分记录。本研究提出了两种灵敏、可重复且高通量的检测方法，用于表征鱼藤酮引起果蝇短期惊吓诱导运动能力缺陷和长期自发运动能力下降的情况 果蝇这些检测方法可方便地加以调整，用于表征其他 果蝇 运动缺陷模型及治疗药物疗效评估

果蝇 惊吓诱导运动行为检测
野生型 canton-S 果蝇表现出强烈的负向趋地性反应，在双管装置中经过30秒后，约88%和5%的果蝇分别位于上部和下部区域（图1）。经125 μM和250 μM鱼藤酮处理3天的果蝇，其上部区域的果蝇数量略有减少，下部区域的果蝇数量略有增加。经500 μM鱼藤酮处理的果蝇表现出显著的负向趋地性反应缺陷（p &lt; 0.05，ANOVA，Bonferroni成对比较），表现为与对照组果蝇相比，上部区域的果蝇数量更少，而下部区域的果蝇数量更多（图1）。这种由于无法在装置中迅速攀爬而导致的负向趋地性反应缺陷，提示存在惊吓诱导的运动能力障碍。
Drosophila 自发运动检测
野生型 ...

帕金森病是一种神经退行性疾病，由中枢神经系统中多巴胺能神经元的退化引起，导致运动功能障碍。鱼藤酮可在Drosophila（果蝇）中建立帕金森病模型。本文介绍了两种检测方法，用于表征由鱼藤酮引起的自发性运动障碍以及惊吓诱发的运动障碍。

帕金森病是一种神经退行性疾病，由中枢神经系统中多巴胺能神经元的退化所致，……

本实验的总体目标是确定在鱼藤酮诱导的果蝇帕金森病模型中，惊吓诱发的以及长期自发性运动行为的变化。该目标通过在添加鱼藤酮的食物上培育果蝇以诱导表型来实现。第二步，将果蝇进行惊吓反应检测，并使用双瓶装置进行长期自发运动行为检测。在果蝇活动监测仪中获得的结果显示，根据对惊吓反应和长期自发运动的定量分析，鱼藤酮暴露会导致果蝇出现运动功能缺陷。这些方法有助于回答果蝇研究领域中神经退行性疾病和运动障碍模型的关键问题，例如惊吓诱发运动和长期自发运动中的缺陷。首先，在标准的果蝇小瓶中加入1.5克即用型果蝇培养基，并加入5毫升去离子水配制培养基，其中含有适当剂量的鱼藤酮。随后，使用二氧化碳麻醉8至12只日龄为1至3天的雄性果蝇，并将其转移至含有药物的试剂瓶中。将食物添加药物后，使果蝇在水平放置的试剂瓶中恢复麻醉状态20分钟。然后将试剂瓶直立放置于25摄氏度、12小时光照/12小时黑暗循环的培养箱中，继续完成后续实验。接下来，将一个标准的果蝇小瓶倒置在另一个小瓶上，并用胶带密封接缝处，以制成双瓶装置。然后使用永久性记号笔在小瓶周围画出标记线，将双瓶装置均分为三段，每段长度为6.33厘米。在药物暴露三天后，将果蝇转移至双瓶装置中。更换接缝处的胶带，让果蝇在新环境中适应15分钟。然后将小瓶置于白色背景上，并设置好数码相机。确保整个装置都能完整地呈现在单张照片画面中，双瓶装置和计时器均可见，且所有果蝇都处于清晰对焦状态。标记相机和小瓶的位置，以确保各次试验之间的画面一致，并在相机视野中清晰显示试验编号和药物处理信息。随后，将双小瓶装置在台面上轻轻敲击三次，确保所有果蝇均落至小瓶底部，然后立即启动计时器。每5秒对装置拍摄一张照片，持续1分钟。然后让果蝇不受干扰地恢复一分钟。每次试验之间间隔一分钟的恢复时间，再重复该实验两次。查看图像并记录随时间推移各区域内的果蝇数量，以进行计算：用15毫升去离子水和适当浓度的鱼藤酮，重新配制三克速溶OPH培养基。五分钟后，小心地将试管垂直放入透明小瓶中，并通过旋转试管将固体食物装填至高度约一厘米。接着，轻轻将塑料瓶盖推入试管末端，避免产生气泡。用二氧化碳麻醉一天大的雄性果蝇，并用画笔小心地将每只果蝇逐一放入各试管中。然后用一小团棉花塞住管子的末端。将管子水平放置，让果蝇从二氧化碳中恢复15分钟，并确保所有果蝇均存活且活跃。将管子插入果蝇活动监测仪（DAM）中，并检查所有管子相对于DAM的位置是否一致。将DAM置于25摄氏度、12小时光照/12小时黑暗的培养箱中。接着，将DAM连接至数据采集系统。然后在首选项中打开DAM软件。选择10分钟的时间段长度并开始数据采集，让程序连续采集七天的数据。接着，打开DAM文件扫描程序，通过点击“选择输入数据”来访问监测数据。然后选择合适的监测范围，并将时间段长度设置为10分钟间隔。接下来，在输出文件类型中选择通道文件，并将所有其他选项保留为默认设置。然后点击扫描数据，并将文件保存到指定文件夹。最后，将数据导入昼夜节律数据分析软件，以获得每分钟计数。经过三天不同剂量的 roone 暴露后，野生型 Canton s 果蝇在暴露于较高剂量时表现出惊吓反应缺陷。30 秒后，装置上部区域的果蝇百分比较低，而下部区域的果蝇百分比较高，提示存在惊吓反应缺陷；在自发运动行为实验中也观察到类似趋势。每分钟活动次数通过果蝇活动监测仪（Drosophila Activity Monitor，DAM）进行测定。暴露后第四天，暴露于250微摩尔和500微摩尔鱼藤酮的果蝇每分钟计数显著减少。这些检测方法可方便地用于表征其他食管疾病模型中的运动缺陷以及治疗药物的疗效。

methods-to-characterize-spontaneous-startle-induced-locomotion

Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

方法来描述自发和惊吓引起的步态中的鱼藤酮诱导的帕金森病模型<em&gt;果蝇</em

高分辨率视频追踪成年黑腹果蝇的运动行为

本视频介绍了如何追踪自由行走的果蝇以评估其基本运动能力。所展示的实验方案演示了如何使用视频追踪软件进行实验设置和数据分析。...

追踪自由行走的果蝇：一种评估运动能力的方法 果蝇

本文介绍了两种已建立的实验方法，用于研究黑腹果蝇（Drosophila）中多巴胺能（DA）神经元随年龄增长而发生的神经退行性变化：攀爬/惊吓诱导的负向趋地性实验，可用于研究DA神经元功能退化的效应；以及酪氨酸羟化酶免疫染色，用于在全脑制片中识别并计数DA神经元。...

评估神经退行性表型 黑腹果蝇 通过攀爬实验和全脑免疫染色检测多巴胺能神经元

Drosophila melanogaster 可用于研究影响自发运动行为等表型的遗传或环境干预。...

Drosophila melanogaster 自发运动活性的测定

利用网络摄像头以及免费或低成本的软件组合，可以分析黑腹果蝇（Drosophila...

一种低成本分析类癫痫活动及运动行为的方法 黑腹果蝇

我们提出了一种优化的、低成本且可靠的黑腹果蝇（Drosophila...

神经退行性疾病果蝇模型中攀爬缺陷的定量分析

本逐步实验方案利用一种可容纳数百只果蝇并由电动机同步其行为的自动化多圆筒系统，分析黑腹果蝇（Drosophila）的负向趋地性行为。在实现同步后，对果蝇的负向趋地性行为进行检测，并使用自主设计的RflyDetection软件进行数字记录与分析。...

一种用于分析成年果蝇攀爬行为的自动化快速迭代负向趋地性实验方法 果蝇 神经退行性疾病模型

我们介绍了使用FLLIT的详细方案，FLLIT是一种完全自动化的机器学习方法，用于追踪自由活动的黑腹果蝇（Drosophila...

基于特征学习的腿部分割与追踪技术（FLLIT）实现自由移动昆虫腿部的全自动追踪

本实验方案用于评估动物的运动活动能力 果蝇...

一种检测运动活性的简易技术 黑腹果蝇

本方案介绍了一种基于α-突触核蛋白建立便秘模型的实验方法 果蝇 帕金森病模型...

测量便秘 果蝇 帕金森病模型

本方案介绍了一种高通量、低成本的方法，通过量化果蝇运动功能障碍来评估其神经毒性，作为传统哺乳动物模型的替代方案。该方法旨在利用一种灵敏、可重复且符合伦理要求的模型，评估药物化合物、环境因子或基因修饰的神经毒性效应。...

Drosophila melanogaster 运动功能障碍的行为学分析作为神经毒性的检测指标

了解如何使用鱼藤酮诱导的帕金森病果蝇模型来评估自发性和惊吓引起的运动行为。该方法通过双瓶装置和果蝇活动监测器量化运动缺陷，为研究神经退行性疾病中的运动障碍提供了重要框架。

用于表征鱼藤酮诱导的帕金森病模型中自发性及惊吓诱导运动行为的方法果蝇

探索更多视频

用于表征鱼藤酮诱导的帕金森病模型中自发性及惊吓诱导运动行为的方法 果蝇

探索更多视频

用于表征鱼藤酮诱导的帕金森病模型中自发性及惊吓诱导运动行为的方法果蝇