Name: 一个协议感染秀丽隐杆线虫与鼠伤寒沙门氏菌 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
Description: 学习利用RNA干扰技术抑制宿主基因表达，进而感染秀丽隐杆线虫与鼠伤寒沙门氏菌，以研究宿主-病原体相互作用并识别关键防御基因。该方法为感染生物学研究提供了可靠的实验框架。

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感谢 Diane Baronas-Lowell 博士对本文稿的审阅。本研究得到了佛罗里达大西洋大学查尔斯·E·施密特理学院种子基金以及艾利森医学基金会老年医学奖学金对 K.J. 的资助。

1. XLD（木糖赖氨酸脱氧胆酸盐）琼脂平板
XLD 琼脂是一种用于Salmonella的选择性培养基，该菌在 XLD 琼脂平板上呈现黑色菌落。然而，若无污染顾虑，可使用普通的 LB 平板替代。
<ol>
	<li>称取 5.5 g XLD 琼脂，加入 5 ml 去离子水中重悬。</li>
	<li>充分混匀直至所有琼脂润湿，再加入 95 ml 去离子水，搅拌至无结块，培养基完全重悬。</li>
	<li>加热煮沸使培养基完全溶解（切勿高压灭菌）。</li>
	<li>将培养基在室温下冷却至 50 °C。</li>
	<li>每块 95 × 15 mm（直径 × 高度）的培养皿中倒入 25 ml 琼脂（用 Parafilm 封口的培养皿可在 4 °C 保存长达 1&#160;个月）。</li>
</ol>
2. 线虫生长培养基（NGM）RNAi 饲喂平板
秀丽隐杆线虫（C. elegans）NGM 平板的制备方法已有先前报道19。此处简要描述向 NGM 培养基中添加抗生素氨苄青霉素和 RNAi 化学诱导剂异丙基-β-D-硫代半乳糖苷（IPTG）以制备 RNAi 饲喂平板的步骤。
<ol>
	<li>将3 g NaCl和2.5 g Bacto蛋白胨溶解于1 L&#160;去离子水中。</li>
	<li>向培养基中加入17 g Bacto琼脂。</li>
	<li>将培养基在高压灭菌器中灭菌45分钟&#160;，然后在水浴中冷却至50 °C。</li>
	<li>加入以下溶液：1 ml胆固醇溶液（5 mg/ml，溶于95%乙醇）、1 ml 1 M CaCl2、1 ml 1 M MgSO4和25 ml 1 M磷酸钾缓冲液（pH 6.0）。充分混匀。</li>
	<li>加入1 ml 1 M IPTG和500 µl氨苄青霉素溶液（100 mg/ml，溶于无菌水）。</li>
	<li>充分混匀后，按照无菌操作规程，使用移液器辅助装置和25 ml血清移液管，将溶液倒入60 × 15 mm（直径 × 高度）的培养皿中，每皿加入12 ml琼脂。平板可在4 °C保存最多1&#160;个月。</li>
</ol>
3. 准备用于感染的RNAi处理动物
以必需的自噬基因 bec-1 为例，研究宿主基因在抵御沙门氏菌感染中的功能。实验流程如图1和表1所示。以下为用于感染实验的RNAi处理动物的制备方案，括号中注明各实验步骤的进行日期。
<ol>
	<li>将 -80 °C 保存的 bec-1 RNAi 饲喂细菌和对照空载体 L4440 RNAi 饲喂细菌的冻存菌块接种至 2 ml 添加了 100 mg/ml 氨苄青霉素的 LB 培养基中（第 1 天）。在整个实验期间每周重复此步骤一次，以获得新鲜的 RNAi 细菌。不使用时将菌液保存于 4 °C 冰箱中。</li>
	<li>将 100 ml 过夜培养的 RNAi 细菌接种到 RNAi 平板上。准备三个 bec-1 RNAi 平板和三个对照空载体 RNAi 平板。将平板置于 37 °C 培养箱中过夜培养（第 2 天）。</li>
	<li>将 RNAi 平板从 37 °C 培养箱中取出，在实验台上静置至室温。挑取健康摄食的 L4 期野生型 N2 雌雄同体线虫，转移至 bec-1 RNAi 和对照空载体 RNAi 平板中。每板放置三条线虫，每个处理设三个重复平板。同一天，按照步骤 3.2 所述方法准备新的 RNAi 平板（第 3 天）。</li>
	<li>将接种了线虫的 RNAi 平板置于 20 °C 培养箱中培养 36–40 小时&#160;，然后将线虫转移至步骤 3.3 中准备的新鲜对应 RNAi 平板上。线虫转移后，将平板继续在 20 °C 培养箱中培养 64 小时&#160;（第 4 天）。</li>
</ol>
4. 准备用于感染的Salmonella
<ol>
	<li>将 -80 °C 保存的沙门氏菌（Salmonella）菌种划线接种于 1&#160;XLD 琼脂平板上，37 °C 培养过夜（第 5 天）。</li>
	<li>挑取一个分离良好的黑色沙门氏菌（Salmonella）单菌落，接种至 2 ml LB 液体培养基中，37 °C 振荡培养过夜（第 6 天）。</li>
	<li>将 80 ml 沙门氏菌（Salmonella）过夜培养物接种至 1&#160;个秀丽隐杆线虫（C. elegans）60 × 15 mm（直径 × 高度）NGM 琼脂平板上，共制备 6&#160;个平板。室温孵育 6&#160;小时，使细菌培养物干燥并在平板表面形成菌苔（第 7 天）。</li>
</ol>
5. 用RNAi处理的蠕虫进行感染 沙门氏菌
<ol>
	<li>转移 bec-1 经RNAi处理的及对照空载体RNAi处理的L4期N2雌雄同体线虫（第3步中设置的线虫的子代） 沙门氏菌 平板。每板放置40条线虫于3个&#160;每组使用培养板，在20 °C条件下将线虫培养板孵育48小时&#160;(第7天).</li>
	<li>按照步骤 3.1 和 3.2 所述，制备一组新鲜的 RNAi 平板（第7天 和 第8天).</li>
	<li>48 小时后&#160;感染，转染 沙门氏菌将感染的线虫转移至第5.2步制备的相应RNAi平板中，于20 °C培养（第9天).</li>
</ol>
6. 存活率测定
<ol>
	<li>每天记录线虫的存活情况，并在线虫产卵期间将其转移至新鲜的相应RNAi平板上。每次转移线虫前，按照步骤3.1和3.2所述方法预先准备一组新鲜RNAi平板。用末端压平的铂金丝轻轻触碰线虫身体（头部、中段和尾部）。若未观察到线虫身体任何部位的运动，则记为死亡。</li>
	<li>每天或每隔一天记录一次线虫存活情况；在线虫停止产卵后，每周将线虫转移至新鲜的相应RNAi平板两次。</li>
	<li>当所有线虫死亡后，将三个重复平板的存活数据合并为一个数据集。将每组的存活数据输入适当的统计软件（如GraphPad Prism），以生成生存曲线并进行Kaplan-Meier生存分析。整个实验至少重复一次，以验证结论。</li>
</ol>

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</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

C. elegans 是一种简单的遗传模式生物，以细菌作为营养来源。因此，很容易将其正常的食物细菌替换为肠道病原体，以研究 C. elegans 与特定病原体之间的相互作用。本文描述了一种将 Salmonella 感染与 C. elegans 的 RNAi 饲喂处理相结合的实验方案，用于探究宿主基因在抵御 Salmonella 感染中的作用。以往的感染方案通常在整个生命周期内使 C. elegans 暴露于包括 Salmonella 在内的致病菌中20。在本方案中，Salmonella 对线虫的感染仅持续两天。此后，线虫不再接触 Salmonella。这种 Salmonella 感染显著缩短了 C. elegans 野生型个体的寿命。因此，侵入的 Salmonella 可在线虫体内复制并导致其死亡10。这种短期暴露于 Salmonella 的方式模拟了人类的 <e...

自由生活的土壤线虫Caenorhabditis elegans是一种结构简单且遗传操作便利的模式生物，被广泛用于研究多种生物学问题。C. elegans主要以自体受精的雌雄同体形式存在，雄性个体则在配子形成过程中因X染色体不分离而自发产生1,2。在食物充足的情况下，C. elegans会连续经历四个幼虫阶段后发育为成虫。温度也影响C. elegans的发育过程，较高温度下发育速度更快。在实验室中，通常将C. elegans培养在接种了大肠杆菌Escherichia coli（菌株OP50）作为食物的琼脂平板上，标准培养温度为20 °C1,2。
近十年来，C. elegans 已成为研究宿主-病原体相互作用的无脊椎模式生物3-5。在自然环境中，C. elegans 以细菌作为营养来源1,2。其常规的实验室细菌食物 OP50 可轻易替换为其他病原菌，从而研究 C. elegans 与特定病原菌之间的相互作用。在此类条件下，肠道是感染的主要部位。事实上，多种细菌病原体已被证实可对 C. elegans 造成致死性感染3-5。
革兰氏阴性菌Salmonella是一种胃肠道病原体，可在全球范围内引起人类食源性疾病6,7。C. elegans是Salmonella typhimurium的良好宿主模型，因为该细菌可在其中复制并引发持续性肠道感染8-10。研究人员已利用C. elegans鉴定出多种新的以及已知的Salmonella毒力因子11。有趣的是，C. elegans的免疫系统能够有效限制Salmonella的复制。先前有报道称，抑制自噬相关基因会导致Salmonella在C. elegans体内复制增加，从而导致感染线虫过早死亡10。巨自噬（本文中简称为自噬）是一个动态过程，涉及细胞内膜结构的重排，以包裹细胞质成分和细胞器，并将其运送至溶酶体进行降解12。已有研究报道，自噬可在C. elegans及哺乳动物中限制Salmonella的复制10,13。
这 秀丽隐杆线虫 基因组是首个被测序的多细胞真核生物基因组；其对RNAi处理具有响应性14-16此外，可通过让蠕虫摄取含有目的基因双链RNA的细菌（称为RNAi喂养）来有效实施RNAi。16,17. 已构建全基因组RNAi饲喂文库，用于全基因组范围的RNAi筛选16,18. 此处，一种 沙门氏菌 感染方案与RNAi喂养相结合，以实现检测 秀丽隐杆线虫 目的基因在抵御特定作用方面的保护能力 沙门氏菌 感染。

<table><tbody><tr><td>LB 肉汤</td><td>Fisher</td><td>BP9723-500</td><td></td></tr><tr><td>XLD 琼脂</td><td>EMD Chemicals</td><td>1.05287.0500</td><td></td></tr><tr><td>Bacto 琼脂</td><td>Fisher</td><td>DF0140-01-0</td><td></td></tr><tr><td>蛋白胨</td><td>Fisher</td><td>BP1420-500</td><td></td></tr><tr><td>氯化钠</td><td>Fisher</td><td>S671-500</td><td></td></tr><tr><td>氯化钙</td><td>Fisher</td><td>C69-500</td><td></td></tr><tr><td>硫酸镁</td><td>Fisher</td><td>M65-500</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Gold Biotechnology</td><td>12481C50</td><td></td></tr><tr><td>胆固醇</td><td>Sigma</td><td>C8667-25G</td><td></td></tr><tr><td>氨苄青霉素</td><td>Fisher</td><td>BP1760-25</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Salmonella typhimurium&lt;/em&gt;</td><td>ATCC</td><td>ATCC14028</td><td></td></tr><tr><td>95 × 15 mm 培养皿</td><td>Fisher</td><td>FB0875714G</td><td></td></tr><tr><td>60 × 15 mm 培养皿&amp;nbsp;</td><td>Fisher</td><td>08-757-13A</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 血清移液管</td><td>Fisher</td><td>13-668-2</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Express Pipet-Aid</td><td>Fisher</td><td>13-675-42</td><td></td></tr><tr><td>MaxQ6000 摇床培养箱&amp;nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>SHKE6000-7</td><td></td></tr><tr><td>培养箱</td><td>Percival</td><td>I-36DL</td><td></td></tr></tbody></table>

一种感染方案 秀丽隐杆线虫 与 鼠伤寒沙门氏菌

A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium

在过去的十年中，秀丽隐杆线虫（C. elegans）已成为研究宿主与病原体相互作用的无脊椎动物模型，包括宿主对革兰氏阴性菌鼠伤寒沙门氏菌（Salmonella typhimurium）的防御反应。Salmonella 可在 C. elegans 肠道内建立持续性感染，并导致感染个体早期死亡。目前已在 C. elegans 中鉴定出多种免疫机制，用于抵御 Salmonella 感染。自噬是一种在进化上保守的溶酶体降解途径，已被证明可在 C. elegans 和哺乳动物中限制 Salmonella 的复制。本文介绍了一种感染 C. elegans 的实验方案，使线虫仅短暂暴露于 Salmonella，类似于人类中的 Salmonella 感染过程。Salmonella 感染显著缩短了 C. elegans 的寿命。以自噬关键基因 bec-1 为例，我们将该感染方法与 C. elegans 的RNAi喂养技术相结合，证明该方案可用于研究 C. elegans 宿主基因在抵御 Salmonella 感染中的功能。由于目前已具备覆盖 C. elegans 全基因组的RNAi文库，本方案使得利用全基因组RNAi文库系统性筛选抵抗 Salmonella 及其他肠道病原体的 C. elegans 基因成为可能。

在20 °C条件下，野生型N2线虫的中位寿命为17天（图2A和表2）。Salmonella感染显著缩短N2线虫的中位寿命至10.5天（p = 0.0002，log-rank检验）（图2A）。
如果一个 C. elegans 基因在抵御 Salmonella 感染中发挥重要作用，则预测其抑制将导致对 Salmonella 感染的易感性增加。事实上，与经 Salmonella 感染并以对照 RNAi 处理的 N2 动物相比，经 Salmonella 感染并以 bec-1 RNAi 处理的 N2 蠕虫的中位寿命从 10.5 天缩短至 9 天（p &lt; 0.0001，log-rank 检验）（图 2B 和 表 2）。其最大寿命显著缩短了 14 天（从 24 天缩短至 10 天，图...

C. elegans 已成为研究宿主-病原体相互作用的一种新型遗传学模型。本文介绍了一种利用Salmonella typhimurium感染C. elegans并结合双链RNA干扰（RNAi）技术来研究宿主基因在抵御Salmonella感染中作用的实验方案。

在过去十年中，秀丽隐杆线虫（C. elegans）作为一种无脊椎模式生物，逐渐被用于研究宿主与病原体之间的相互作用，包括宿主防御机制……

本实验的总体目标是通过沙门氏菌感染秀丽隐杆线虫，以研究宿主与病原体之间的相互作用。该目标首先通过RNA干扰（RNAi）抑制宿主基因的表达来实现；实验的第二步是用沙门氏菌感染经RNAi处理的线虫。通过将感染的线虫转移至非致病性的 rna eye 饲养平板来终止感染。最后步骤是记录感染线虫的存活情况。根据这些数据计算存活率，并最终鉴定出对抵御沙门氏菌至关重要的基因。演示该实验操作的是来自某实验室的技术员 Julie John。首先准备所需的培养平板。第一步，制备 XLD 琼脂平板。它们对沙门氏菌具有选择性，沙门氏菌在这些平板上呈现为黑色菌落。使用前务必将XLD琼脂以每毫升1克的比例悬浮于水中，然后再加入至完全体积的水中混匀。切勿进行高压灭菌。此琼脂刚用加热板加热。接着制备直径为95毫米的XLD平板，每板加入25毫升琼脂。采用标准方法制备含RNAi的NGM饲喂平板，即在培养基经高压灭菌后，加入氨苄青霉素和RNAi化学诱导剂IPTG，从而制得所谓的RNAi平板。冷却后，向60毫米的培养皿中加入12毫升琼脂，置于4°C保存，可使用长达一个月。使用前，先用细菌进行孵育。在此示例中，Beck1为目标基因，因其对抵抗沙门氏菌的防御至关重要。首先制备RNAi和对照培养物。从-80摄氏度保存的菌种中取一环冻存细菌，加入2毫升含氨苄青霉素的LB培养基中。该细菌应表达RNAi或不表达RNAi，但均需含有空载体。将这两种培养物转移至培养箱中，过夜培养。应每周定期进行此操作，以确保次日始终有细菌可用。取100微升培养物接种至RNA眼平板中。每种平板类型至少制备三个实验组和三个对照组。将这些平板在37摄氏度下培养过夜。次日，将平板恢复至室温。然后将三只营养良好的L4期野生型N2雌雄同体线虫转移至每个培养皿中。每个培养皿放置三只线虫即可。于同日将这些培养皿在20°C条件下进行培养。准备更多含有培养细菌的RNAi平板。在20摄氏度下培养36至40小时后，将蠕虫从第一块RNAi平板转移至新的RNAi平板，然后继续在20摄氏度下培养64小时。从–80摄氏度冰箱中取出沙门氏菌菌种，在XLD平板上划线接种。将平板置于37摄氏度培养过夜。次日，挑取平板上单个黑色菌落，接种于2 mL LB培养基中。第二天早晨，将其设置为在37摄氏度下振荡培养过夜。用接种的LB培养基接种六块NGM平板。在室温放置六小时后，每块平板加入80微升，此时细菌培养物应已干燥，并在NGM平板上形成菌苔。然后将经RNAi处理的线虫和对照处理的线虫分别转移到六个培养皿中。每个培养皿放置40只线虫，在20°C条件下孵育48小时。从此时起，每天开始制备新的RNAi培养皿。这样可确保从两天后开始，每天都有准备好的线虫用于生存测定实验。48小时后，将感染的线虫转移至新制备的RNAi平板或空载体对照平板中。此后每天在接近其产卵时间时，将这些平板

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Research

科研

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Immunology and Infection

免疫学与感染

一个协议感染<em&gt;秀丽隐杆线虫</em&gt;与<em&gt;鼠伤寒沙门氏菌</em

来源： Chen, Y., 等评估毒力与致病机制 气单胞菌属 感染在A中 秀丽隐杆线虫 模型。 视频实验杂志 (2018)本视频展示了一种利用秀丽隐杆线虫（C.

建模 气单胞菌属 发病机制 C. elegans 使用存活率测定实验

蠕虫分选仪通过根据荧光报告基因的表达对秀丽隐杆线虫（Caenorhabditis...

由细菌病原体不同程度定植的 C. elegans 的自动化分离

C. elegans 通常在接种了 E. coli 的固体琼脂平板或液体培养基中培养。为了防止细菌代谢产物对毒理学和营养学研究造成干扰，我们采用了一种无菌液体培养基...

培养 秀丽隐杆线虫 在无菌液体培养基中培养及通过微粒轰击法创建转基因蠕虫

本文中，我们介绍线虫Caenorhabditis...

秀丽隐杆线虫——一种多功能的模式生物 体内 研究宿主-微生物相互作用的模型

斑马鱼（Danio rerio）正成为研究微生物定植与致病机制的常用脊椎动物模型。本实验方案描述了利用纤毛原生动物尾草履虫（Paramecium caudatum）作为载体，建立斑马鱼幼鱼食源性感染的方法。P. caudatum...

利用原生动物Paramecium caudatum作为斑马鱼幼虫食源性感染的载体

本方案描述了一种由沙门氏菌（Salmonella）诱导的小鼠肠道纤维化模型，该模型具有类似于克罗恩病的关键病理特征，包括透壁性炎症和纤维化。该方法可用于利用维持在C57Bl/6遗传背景上的基因突变小鼠，评估影响纤维化结局的宿主因素。...

慢性沙门氏菌感染诱导的肠道纤维化

以下方案描述了一种高通量工作流程的建立与优化，用于线虫培养、荧光成像及自动图像处理，以定量多聚谷氨酰胺聚集物，从而评估蛋白质稳态的变化。...

自动化聚集体定量分析 秀丽隐杆线虫

微孢子虫寄生虫Nematocida parisii感染Caenorhabditis...

研究微孢子虫感染的 Caenorhabditis elegans 模型中的遗传免疫

肠道微生物可能对宿主的健康产生正面或负面的影响 通过 特异性或保守性机制 秀丽隐杆线虫 是一种用于筛选此类微生物的便捷平台。本实验方案描述了对48种细菌分离株进行高通量筛选，以评估其对线虫应激抗性的影响，该指标被用作线虫健康状况的替代参数。...

高通量筛选影响微生物分离物 秀丽隐杆线虫 健康

本方案描述了一种在低温麻痹和表面漂白 以去除外部细菌后，对单个细菌定植的Caenorhabditis...

利用单条线虫数据量化异质性 秀丽隐杆线虫- 细菌相互作用

学习利用RNA干扰技术抑制宿主基因表达，进而感染秀丽隐杆线虫与鼠伤寒沙门氏菌，以研究宿主-病原体相互作用并识别关键防御基因。该方法为感染生物学研究提供了可靠的实验框架。

一种感染方案秀丽隐杆线虫与鼠伤寒沙门氏菌

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一种感染方案 秀丽隐杆线虫 与 鼠伤寒沙门氏菌

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