Name: 在小鼠睾丸活体显微注射和电穿孔 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 39 s
Description: 学习小鼠睾丸活体显微注射和电穿孔技术，用于转染睾丸细胞并研究生精过程。该方法结合基因递送与电穿孔，为生殖生物学研究提供高效、低成本的实验手段。

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我们感谢明斯特大学生殖医学与男科学中心的Birgit Westernstroeer教授传授睾丸显微注射技术。此外，我们感谢Ursula Antkewitz和Petra Reckling提供的技术协助。我们感谢 德国研究基金会（DFG）对本工作的资助（WE2458/10-1）。&#160;

所有动物实验均已获得当地伦理委员会（德国梅克伦堡-前波美拉尼亚州农业、食品安全与渔业局）的批准。
1. 质粒制备
<ol>
	<li>质粒制备时，使用带有内毒素去除缓冲液的质粒纯化试剂盒（见材料表）或类似方法，以避免动物产生免疫反应。请遵循说明书中的操作步骤。使用ddH2O稀释质粒溶液。</li>
	<li>将DNA溶液以最大速度（20,000 × g）离心，去除碎片，然后收集上清液。</li>
	<li>使用分光光度计测定质粒浓度（见材料）。</li>
	<li>用ddH2O将质粒浓度调整至1–3 µg(DNA)/µl。&#160;注意：浓度过低会降低转染效率，而过高可能导致注射液过于黏稠。此外，转染效率取决于质粒大小，需针对不同质粒单独测试。</li>
	<li>注射前，准备混合溶液，例如将&#160;40 µl质粒溶液与5 µl PBS（10倍浓度）和5 µl快绿染料（0.5%）混合。快绿用于追踪注射过程。建议使用薄壁PCR管或Parafilm。注意：&#160;根据睾丸大小，每侧睾丸需要20–50 µl的注射体积。&#160;</li>
</ol>
2. 显微注射针的制备
<ol>
	<li>使用硼硅酸盐毛细管（参见&#160;材料表）制备显微注射针。</li>
	<li>使用垂直毛细管拉制仪（参见&#160;材料表）拉制玻璃毛细管。</li>
	<li>用镊子轻轻敲击毛细管尖端使其断裂。尖端直径通常为 50–80 µm，长度约为 1 cm。应避免制备过长的尖端，因其刚性不足，难以穿透组织。</li>
	<li>最后，使用微管斜面打磨仪将尖端以 30° 至 45° 角度磨尖（参见&#160;材料表）。</li>
	<li>用注射溶液混合物（参见质粒制备）装填显微注射针。使用小注射器将溶液从玻璃毛细管后端注入。注意：装填时应尽量避免产生气泡，否则气泡将随质粒溶液一同注入曲细精管，从而降低导电性，并可能造成组织损伤。</li>
</ol>
3. 麻醉与手术
<ol>
	<li>在无菌条件下使用无菌材料进行操作（即， 注射器、针头、手术器械等。这将减少动物感染风险，并确保较高的存活率。</li>
	<li>使用6至8周龄的雄性小鼠进行电穿孔实验。</li>
	<li>为启动术后镇痛治疗，应在手术前一天为小鼠提供添加镇痛药物的饮用水。此举可预防术后极可能出现的饮水减少（低饮水量）情况，实现预先镇痛。为此，可将饮用水中加入例如小儿布洛芬混悬液（20 mg/ml）。含药饮用水应在术后第1天和第2天以相同浓度继续供给。这意味着每日剂量为7.5 mg/kg，适用于8周龄C57BL/6J小鼠，体重25 g，每日饮水量5 ml。该镇痛方案可确保基本的疼痛缓解，促进快速恢复，并提高动物福利水平26.</li>
	<li>用于制备&#160;手术当天配制麻醉工作液，将10%氯胺酮与2%赛拉嗪按1:1比例混合（参见&#160;材料表）。</li>
	<li>为麻醉动物，按每100 mg体重0.25 ml的剂量皮下注射麻醉剂溶液（氯胺酮 = 0.125 g/kg；赛拉嗪 = 0.025 g/kg）。注射部位应选择骨盆与肢体之间的区域，以避免对小鼠器官造成损伤或伤害。通常需要约10分钟，小鼠即可达到深度麻醉状态。</li>
	<li>用兽医用眼膏覆盖小鼠眼睛，以防止麻醉期间眼睛干燥。</li>
	<li>测试深度麻醉状态，表现为完全无反应。为此，可轻捏动物的脚趾进行检查。</li>
	<li>手术开始时，使用电动剃须刀或类似工具去除腹部毛发，并用Sterilium或类似消毒剂对术区进行消毒。</li>
	<li>在腹部区域中央的包皮腺正上方做一个腹侧切口。首先将皮肤拉开，在此处做一个约8-14 mm的小的横向皮肤切口，然后沿腹肌层继续切开。 
	注意：病灶应尽可能小，以减少对动物的伤害。</li>
	<li>小心提起腹脂垫以暴露附着的睾丸，并将其放置在切口旁预先准备好的防水一次性手术纸巾上&#160;(图2A).</li>
	<li>使用双目显微镜寻找输出小管作为注射靶点。输出小管为睾丸与附睾之间的细小血管连接处，位于明显的睾丸动脉旁。该小管与动脉呈近45°角走行，并明显进入附睾头。注意：根据小鼠年龄的不同，输出小管通常埋藏于脂肪组织中。</li>
	<li>使用精细镊子清除输出管中的脂肪组织。之后，将游离的输出管置于无菌的&#160;使用试纸条以确保导管清晰可见，同时不损伤周围组织。</li>
</ol>
4. 显微注射与DNA应用
<ol>
	<li>将装有质粒溶液的显微注射移液管连接至显微操作器/注射装置。</li>
	<li>将显微注射针平行置于输出小管旁，针尖朝向睾丸网（图2B）。</li>
	<li>使用精细镊子将小管在显微注射移液管上方剥离。拉动过程中需确保毛细管始终与小管保持平行。 
	注意：此操作方式比使用显微操作器移动针头穿刺血管更为方便。</li>
	<li>小心将针头朝向睾丸推进，当其刚好穿透白膜正下方的睾丸网时即停止（图2C）。 
	注意：&#160;若针头过度深入睾丸网，质粒溶液将泄漏至间质空间，通常会导致生精小管转染失败。</li>
	<li>进行质粒溶液注射时，使用显微注射仪并设置如下参数：pi：&#160;100 hPa，ti：&#160;0.2 秒，pc：&#160;0 hPa（图2D）。</li>
	<li>通过观察绿色染料的填充情况，监测整个注射过程。注意质粒溶液仅需填充至睾丸体积的2/3即可（图2E）。 
	注意：&#160;若注射体积过大，可能损伤睾丸组织。</li>
</ol>
5. 睾丸电穿孔
<ol>
	<li>为了实现有效的电穿孔，将镊子电极浸入 PBS (1x) 中。这可以确保足够的导电性。</li>
	<li>用湿润的电极轻轻夹住睾丸（图&#160;2F）。使用电穿孔仪测量电阻。</li>
	<li>对睾丸施加电流。在睾丸的 4&#160;个不同位点上，各施加 8 次 40 V 的方波脉冲，每次脉冲持续时间为 50 毫秒，间隔时间为 950 毫秒。</li>
</ol>
6. 伤口闭合与术后处理
<ol>
	<li>电穿孔完成后，将睾丸放回原位。</li>
	<li>使用外科缝合线缝合内层肌肉组织（参见材料部分）。</li>
	<li>使用缝合夹闭合皮肤。用镊子提起皮肤，注意避免夹住肌肉层。每枚缝合夹之间的距离不应超过5 mm。 
	注意：由于小鼠可能吞咽外科缝合线，因此推荐使用缝合夹来闭合皮肤切口。</li>
	<li>将小鼠置于铺有无菌纸巾的无菌空鼠笼中，使其从麻醉中恢复，笼子应放置在37 °C的温控加热垫上。加热垫应仅加热笼子的一半区域，以形成温度梯度，使动物可根据自身需求选择最舒适的温度区域。此外，用一张无菌纸巾覆盖小鼠，以进一步减少其应激反应。&#160;注意：由于小鼠体表面积相对于体重的比例显著高于大型动物，因此适当的保温措施对啮齿类动物的顺利恢复尤为重要。</li>
	<li>当手术动物完全清醒后，将其转移至一个配备齐全的全新鼠笼中进行后续恢复。切勿将其放回原来的笼子或与其他小鼠合笼。确保笼具尽可能清洁无菌，以防止伤口感染。密切监测整个恢复过程。在将小鼠送回动物饲养设施前，需确认其已完全恢复且行为表现正常。 
	注意：Pritchett-Corning KR 等6进一步讨论了术中及术后相关的辅助策略。</li>
</ol>

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</ol>

Marten Michaelis、Alexander Sobczak 和 Joachim M. Weitzel 任职于德国杜默斯托夫莱布尼茨家畜生物学研究所（FBN）生殖生物学研究所，声明他们不存在任何竞争性经济利益。

生殖生物学领域的研究，特别是在男性生育力和精子发生方面，不可避免地依赖于活体生物。为了研究睾丸功能，目前尚未建立能够充分反映从二倍体精原细胞到单倍体成熟精子所有关键形态变化的合适细胞培养/体外系统1,2。因此，构建转基因动物常常是男性生殖生物学研究中必不可少且极具价值的工具。为此，研究人员已构建了大量转基因、基因敲除和基因敲入小鼠，这些模型为理解男性生育力提供了重要见解。然而，转基因小鼠的制备通常需要将基因构建体注射到受精卵的原核中。该技术耗时较长，且通常需由专业实验室完成。而构建基因敲除或基因敲入动物的技术则更为复杂。
研究活体模式生物基因功能的另一种方法是瞬时转染。然而，常用的病毒载体转导可能引发免疫原性或其他非特异性反应，并需要特殊的生物安全规范。脂质体转染3和微粒轰击4等方法则受限于特定的细胞深度，甚至可能对组织产生不良影响。
然而，通过在靶组织上直接施加电方波脉冲（即所谓的电穿孔），实际上可以实现对活...

哺乳动物的精子发生被认为是一个复杂的过程，其中自我更新的干细胞相继经历有丝分裂、减数分裂和分化，最终发育为成熟的单倍体精子。这些形态学变化由多种细胞类型协同调控，尽管已有大量深入研究，目前仍无法在细胞培养体系中完全模拟这些过程。1,2因此，迄今为止关于精子发生的研究仍依赖于活体生物 在 体内 模型。通常，基因功能研究依赖于转基因动物。然而，构建和维持此类动物模型耗时较长、成本高昂且操作复杂。这主要是由于需要通过长期的繁育过程来获得并维持跨代的转基因。此外，当靶向的基因在多个区域具有必需功能时，采用转基因或基因敲除方法对整个生物体进行遗传操作容易导致生理功能障碍。 例如，睾丸外或全身性地。
此外，一些瞬时转染方法存在一些关键性缺点。例如，病毒介导的基因转移通常可能引发免疫反应，并需要额外的安全规范；而脂质体转染3和微粒轰击4则可能对组织造成损伤，且其转染效率仅限于一定深度的细胞层。
相比之下，电穿孔（EP）作为另一种常见的瞬时转染方法，似乎是一种有望实现体内转染和持续进行体内基因分析的技术。通常，EP 被称为一种动态现象，依赖于跨膜局部电压，从而在纳秒内介导形成孔道。这些孔道可维持数毫秒，足以允许 DNA、RNA 或小分子进入细胞5。当施加的电压&#160;过高时，由于产热以及过度通透性的诱导，EP 通常具有的瞬时特性会被抵消，进而导致细胞发生不可逆损伤5。
在此，我们证明电穿孔是一种有效且经济的转染系统，可用于遗传性睾丸转化，以阐明睾丸基因特性 在 体内本文介绍了质粒制备、通过输出小管进行显微注射以及随后对小鼠睾丸进行电穿孔的技术。该方法可作为实现小鼠睾丸曲细精管快速、特异且高效转染的首选手段。 在 体内 为了研究精子发生过程。

<table><tbody><tr><td>离心机</td><td>Sigma</td><td>1-15 PK</td><td></td></tr><tr><td>分光光度计</td><td>Nanodrop</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>微量移液器拉制仪</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td>垂直毛细管拉制仪</td></tr><tr><td>显微注射毛细管</td><td>Clark</td><td>GC100-10</td><td>硼硅酸盐标准壁</td></tr><tr><td>微量移液器斜面研磨仪</td><td>Bachofer</td><td>Typ 462</td><td>旋转盘式斜面研磨仪</td></tr><tr><td>电穿孔仪</td><td>Nepagene</td><td>CUY 21EDIT</td><td>方波电穿孔仪</td></tr><tr><td>镊形电极</td><td>Nepagene</td><td>CUY 650P5</td><td>5 mm &amp;Oslash; 圆盘电极</td></tr><tr><td>体视显微镜</td><td>Zeiss</td><td>Stemi 2000-C</td><td></td></tr><tr><td>冷光源</td><td>Zeiss</td><td>KL 1500LCD</td><td></td></tr><tr><td>显微注射泵</td><td>Eppendorf</td><td>Femtojet</td><td></td></tr><tr><td>显微操作器</td><td>自制</td><td></td><td>XYZ 三维平移台</td></tr><tr><td>外科手术器械</td><td>FST</td><td></td><td>剪刀、镊子、持针器</td></tr><tr><td>精细镊子</td><td>FST</td><td>Dumont #5, #7</td><td>用于输出小管制备</td></tr><tr><td>Michel夹施加器</td><td>FST</td><td>Michel, 12029-12</td><td></td></tr><tr><td>Michel缝合夹</td><td>FST</td><td>Michel, 12040-01</td><td>7.5 x 1.75 mm</td></tr><tr><td>外科缝合线</td><td>Catgut, Markneukirchen, Germany</td><td>Catgut 00</td><td></td></tr><tr><td>带30G针头的注射器</td><td>B. Braun</td><td>Omnican 40</td><td>用于填充微量移液器及麻醉</td></tr><tr><td>质粒提取试剂盒</td><td>Promega</td><td>Cat. # A2495</td><td>质粒中量提取</td></tr><tr><td>质粒pEGFP-C1</td><td>Clontech</td><td>Cat. #6084-1</td><td>CMV启动子 + EGFP</td></tr><tr><td>质粒pDsRed2-N1</td><td>Clontech</td><td>Cat. #6084-1</td><td>CMV启动子 + DsRed2</td></tr><tr><td>快绿染料</td><td>Sigma</td><td>F7258-25G</td><td>用于在ddH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O中稀释</td></tr><tr><td>10% 氯胺酮</td><td>Serum Werk, Bernburg, Germany</td><td>Urotamin</td><td>与赛拉嗪按1:1比例混合使用</td></tr><tr><td>2% 赛拉嗪</td><td>Serum Werk, Bernburg, Germany</td><td>Xylazin</td><td>与氯胺酮按1:1比例混合使用</td></tr><tr><td>斯迪林消毒液</td><td>Bode Chemie</td><td>Sterillium</td><td>消毒</td></tr><tr><td>兽用软膏</td><td>S&amp;K Pharma, GmbH</td><td>Kerato Biciron 5%, Augensalbe</td><td>眼科软膏，用于防止眼睛干燥</td></tr><tr><td>To-Pro-3 碘化物</td><td>Invitrogen</td><td>T3605</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;10x PBS, pH 7.4&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>1.37 M NaCl</td><td>Carl Roth</td><td>3957.1</td><td></td></tr><tr><td>布洛芬，Dolormin</td><td>Johnson &amp; Johnson Consumer Health Care Germany</td><td>01094902</td><td>术后镇痛用解热镇痛药（非甾体抗炎药）儿童溶液</td></tr><tr><td>27 mM KCl</td><td>Carl Roth</td><td>6781.1</td><td></td></tr><tr><td>100 mM Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;&amp;middot;2H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Carl Roth</td><td>T106.2</td><td></td></tr><tr><td>18 mM KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Carl Roth</td><td>3904.1</td><td></td></tr></tbody></table>

体内 小鼠睾丸显微注射与电穿孔

In Vivo Microinjection and Electroporation of Mouse Testis

本视频与文章详细介绍了小鼠睾丸的显微注射与电穿孔技术 在 体内这种特定的睾丸小鼠细胞转染技术可用于研究精子发生过程中的独特机制。
以下实验方案重点介绍将质粒构建体转染入小鼠睾丸细胞的操作。具体而言，我们使用了报告载体 pEGFP-C1，该载体表达增强型绿色荧光蛋白（eGFP），同时也使用了表达红色荧光蛋白（DsRed2）的 pDsRed2-N1 载体。两种报告基因均由人巨细胞病毒立即早期启动子（CMV）驱动表达。
为了将基因导入小鼠睾丸，需将报告质粒构建体注射到活体小鼠的睾丸中。为此，需暴露麻醉动物的睾丸，并准备显微注射部位。我们首选的注射部位是输出小管，其最终连接的睾网是精子在睾丸与附睾之间运输的解剖通路。通过使用染色的DNA溶液，可在显微注射后很好地实现并控制曲细精管的填充。当观察到睾丸因其着色的管状结构而充分填充后，对该器官进行电穿孔处理。这使得DNA溶液能够进入睾丸&#160;细胞。经过3天的孵育后，取出睾丸并在显微镜下检测绿色或红色&#160;荧光，以显示转染是否成功。
通常，本方案可用于将DNA或RNA载体递送至活体小鼠睾丸中，以实现基因的（过）表达或基因敲低，从而促进 在 体内 基因功能分析。此外，该技术也适用于报告基因载体或推测的基因调控元件的研究。因此，电穿孔技术的主要优势在于操作快速、耗时较少，且相较于其他替代技术，所需的设备和技术要求适中。

小鼠睾丸显微注射与电穿孔实验操作环境 体内 如按照方案使用，其示意图如下所示 图1尽管可以购买工业制造的微量移液器，但我们更倾向于通过拉制来自制移液器图1A）以及斜面处理（图1B) 玻璃毛细管，以满足我们的需求。显微注射和电穿孔所用设备如图所示 图1C出于转染效率的考虑，使用方波电穿孔仪至关重要。
图2展示了小鼠手术的关键步骤，特别聚焦于输出小管的准备。在此过程中，首先暴露睾丸（图2A），通过双目显微镜观察识别输出小管，并将其从脂肪组织中分离（图2B）。随后，使用显微注射移液管穿刺输出小管，并注入质粒溶液（图2C-E）。最后，将载有质粒的睾丸置于两个电极之间，通过施加方波脉冲进行转染（图2F）。
这种...

本文描述了小鼠睾丸的显微注射与电穿孔技术 在&#160;体内 作为&#160;用于研究精子发生独特过程的小鼠睾丸细胞转染技术。本方案包含玻璃毛细管制备、通过输出小管显微注射以及电穿孔转染等步骤。

本视频与文章详细介绍了小鼠睾丸体内显微注射与电穿孔技术的完整操作流程。该特定……

本实验的目的是将基因构建体显微注射到小鼠睾丸中，随后进行活体电穿孔。该方法可实现针对精子发生及睾丸功能的全面基因分析。首先通过在精囊腺正上方的腹部切口暴露睾丸，以获得对睾丸的手术通路。第二步是通过将血管从其脂肪组织中分离出来，制备附着有输出管的睾丸以进行显微注射。接着，用装载好的显微注射移液管穿刺附睾网管（ENT duct），并将染色的遗传构建体溶液注入睾丸曲细精管。最后一步是对睾丸进行双侧电穿孔转染。最终，在转染三天后取出转染的睾丸，通过荧光显微镜观察或发光仪检测来评估转染效果，具体方法取决于所使用的报告基因构建体。这种将显微注射技术应用于小鼠睾丸的瞬时转染方法，相较于转基因动物或基因敲除小鼠等现有技术，具有显著优势。该方法具有操作快速、成本低廉以及仅需一般技术水平即可完成的优点。这一方法学手段有望为男性生育力研究领域的现有技术提供有益补充。该方法可能对解决涉及实验性基因及生育过程的广泛问题具有重要意义，尤其在采用该技术进行功能获得或功能缺失实验形式的遗传学分析时，其应用前景更为可观。该方法对于研究生精作用特异性基因等的调控元件也可能非常有用。开始实验时，将6至8周龄的雄性小鼠通过皮下注射1:1混合的10%氯胺酮和2%赛拉嗪进行麻醉。然后通过夹捏脚趾确认小鼠已处于深度麻醉状态。涂抹眼膏以防止眼睛干涩。接着，使用电动剃须刀去除腹部毛发，随后对手术区域进行消毒。在腹部区域中央，于PrepU腺体正上方做一腹侧切口。为此，牵拉皮肤并做一个小的横向皮肤切口，然后沿腹肌层继续分离。小心提起腹脂垫以暴露附着的睾丸，并将其置于腹部的无菌纸上。随后，使用体视显微镜寻找用于显微注射的附睾管。附睾管是睾丸与附睾之间的细小血管连接处，位于睾丸动脉附近。用精细镊子去除覆盖在附睾管上的脂肪组织。随后，将释放导管置于无菌纸条上，确保导管清晰可见且不干扰周围环境。接着，将预先装有染色质粒溶液的显微注射移液管连接至显微操作注射装置。然后，将显微注射针与EENT导管平行放置，针尖朝向REIT睾丸。然后使用精细镊子将导管拉过显微注射移液管。拉动导管时，确保移液管与导管保持平行。小心地将针头朝向睾丸方向推进，并在针头刚好穿透白膜下方的 REIT 睾丸时立即停止。接下来，设置显微注射仪的参数。随后，开始注射基因构建体溶液。通过观察睾丸的充盈状态，全程监测注射过程。借助有色质粒溶液，将睾丸注射至其体积的三分之二左右，以实现有效的电穿孔。将镊子状电极浸入1倍浓度的PBS溶液中，以确保足够的导电性。然后将睾丸样本轻轻夹在湿润的电极之间，使用电穿孔仪测量其电阻。接着，正确设置电穿孔仪参数，确保能够向睾丸施加总共八个方波脉冲。在睾丸的四个不同位点，围绕整个睾丸全面进行电穿孔操作。电穿孔完成后，将睾丸放回腹腔内，尽可能置于其原始位置。用可吸收的外科缝线缝合内层肌肉组织，然后使用缝合夹闭合皮肤。让小鼠从麻醉中恢

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

在小鼠睾丸活体显微注射和电穿孔

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E15小鼠胚胎的子宫内脑室内注射与电穿孔技术

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我们展示了一种 体内 电穿孔转染方案，用于在多种出生后年龄段的小鼠中转染单个或少量成簇的视网膜神经节细胞（RGCs）及其他视网膜细胞类型。该方法实现了对出生后RGCs的标记与遗传操作 体内...

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体内 电穿孔转染发育中小鼠视网膜

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小鼠 在子宫内 电穿孔：可控时空基因转染

小鼠内耳是一种由外胚层生发层（placode）衍生而来的感觉器官，其发育程序在胚胎发育期间逐步展开。我们定义了一种 在子宫内 基因转移技术，包括三个步骤：小鼠腹部剖腹术、经子宫显微注射和 体内...

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体外电穿孔转染中期小鼠胚胎菱脑唇下部

我们介绍一种将DNA质粒递送至小鼠膀胱尿路上皮细胞的新方法 体内...

通过电穿孔法将质粒DNA递送至小鼠膀胱尿路上皮的新方法

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一个 体内 研究小鼠血睾屏障完整性的方法

本文报道了一种 体内 通过腹腔手术和睾丸注射 CENP-E 抑制剂 GSK923295，建立了一种研究雄性减数分裂的有价值模型。利用免疫荧光、流式细胞术和透射电子显微镜检测，我们发现 CENP-E...

利用精子细胞对驱动蛋白-7 CENP-E 的功能评估 体内 抑制、免疫荧光与流式细胞术

本方案描述了显微注射及 体内...

利用体细胞基因组编辑小鼠模型 体内 显微注射与电穿孔

学习小鼠睾丸活体显微注射和电穿孔技术，用于转染睾丸细胞并研究生精过程。该方法结合基因递送与电穿孔，为生殖生物学研究提供高效、低成本的实验手段。

体内小鼠睾丸显微注射与电穿孔

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