2014年11月25日
本文介绍了小龙虾腹部神经索的解剖方法,同时演示了一种电生理技术,用于记录泳足运动神经元的模拟运动活动。
本实验的总体目标是解剖小龙虾的腹神经索,以便将其用于电生理学研究。首先,对小龙虾进行麻醉,然后进行粗略解剖以分离其腹板。
然后进行精细解剖,将中枢神经系统从脑神经节完全分离至腹部神经节。最后,去除所有神经节的神经节鞘,以利于进行电生理实验。
最终,腹部神经节链可用于细胞外或细胞内记录,以研究中枢模式发生器的协调机制,或分析已鉴定神经元的形态及其突触环境。该方法有助于回答神经科学领域的关键问题,例如通过在离体神经系统中记录 fictive FLA 活动,为神经网络功能提供实践性认识,或用于表征腹部神经节以及特定神经元的形态学特征。
尽管该方法可为研究小龙虾的游泳速率系统提供见解,但它也可应用于其他系统,例如驱动小龙虾尾部翻转行为的神经网络。以太平洋斯泰西娅线虫小龙虾(Pacific Stacia Linea Guus)为实验对象。根据文本方案将动物麻醉后,将其腹面朝上固定,用锋利的剪刀在靠近胸节处剪除双侧螯足基部。
然后移除左右两侧的螯足。将动物腹面朝上放置在铺有黑色蜡纸的解剖皿中,通过螯足开口用冷生理盐水进行灌注。接着,使用锋利的剪刀在螯虾眼睛后方做一个横向切口,以完成去头操作。
然后移除靠近基部关节的所有步足,以将腹部连同最后一段胸节从其余胸节部分分离。将剪刀尖插入第二对步足的开口处,剪至对侧。按照文本方案所述,将切口向两侧延伸穿过胸部并暴露部分内部器官后,移除胸部的前部结构。
现在去除内脏,并用冷生理盐水冲洗动物。继续解剖,在胸骨板全长范围内,于肋骨与游泳鼠之间最外侧位置做切口。在另一侧做同样的切口。
将螯虾的腹部朝上放置在解剖皿中。使用昆虫针在尾节后端和头胸甲残余部分前端固定标本。向解剖皿中加入螯虾生理盐水,直至完全浸没标本。
用左手持粗镊子,从步足的开口处插入并撑开标本。辨认出两条较大的背侧屈肌肌束,将其固定,并切断其腹侧基部以及胸动脉。
暴露第一腹神经节A一及其相关神经N一、N二。现在移至第二腹节段,去除靠近腹侧基部的肌束基部。
腹部神经节A2现已可见,其相关联的神经为N1、N2和N3。在距离神经索最远的位置横切N3神经。对接下来的三个腹节段及其腹部神经节重复上述步骤。
三到五。到达腹神经节时,为六。在六的神经后方切断胸板。
保留腹侧部分并用针固定,将背侧朝上置于显微镜下盛有生理盐水的培养皿中。使用镊子去除头胸部腹面最前端的部分。
然后剪断剩余外骨骼结构之间的肌肉。小心抬起腹神经索的前端后,从侧方剪断胸部神经。选定一个体节,将其第一神经(N1)和第二神经(N2)剪下,长度最多保留一厘米,以便将其展开固定。
接下来,移至第2腹节,并识别该节段的N1、N2和N3神经。腹部神经节A2至A5的N1神经位于每个节段的两片胸节腹侧表皮褶之间,并被肌肉组织覆盖。
然后从腹部外侧边缘开始,沿胸骨后侧角质层向内折叠处做一切口,向中线方向进行,按照文本方案暴露神经 N one。如有必要,尽可能远地切断该神经。继续至对侧,从中线附近神经节处开始,沿胸骨后侧角质层向内折叠处向侧缘方向解剖,分离神经 N one。
现在将该神经节的神经 N2 剪至适合固定长度。然后重复对腹部神经节 A2 至 A3 到 A5 所示的操作步骤,尽可能向远端进行。
切断第六神经节的神经。用镊子夹住第六神经节的多条神经,以抬起神经节并开始将神经节链从胸板上分离。完全分离神经索后,使用不锈钢丝制成的小型图钉,将神经节链转移至铺有透明硅胶垫且盛有生理盐水的培养皿中,同时施加轻柔的牵拉。
将神经节链以背侧朝上的方式沿直线固定,神经索朝上排列。仅保留最后两个胸神经节,并将胸神经向两侧固定。将其中一个神经以与神经索成90度角的方向展开并固定。
然后继续处理第二对神经(N2),将其以相对于神经索35至45度的角度固定。一旦第一对神经(N1)按照文本方案分离并固定,即将N1的前支以与神经索成90度角的位置固定。随后,将N1的后支固定在N1前支与N2神经之间。
由于所有腹神经节均需去除鞘膜,使用精细的弹簧剪在神经节后方、神经N2与N3之间的侧面位置,于神经节鞘上做一小的侧向切口。然后在连合上方横向剪开鞘膜,再沿神经节的侧缘继续剪开,最后去除鞘膜。
如有必要,使用精细镊子抬起鞘膜以进行细胞外记录。按照文本方案中列出的工具和试剂准备完毕后,将神经节链置于显微镜载物台上,并从下方照明。将记录电极插入目标神经附近的舌鞘保护结构内,参考电极则插入靠近但位于神经节侧方的位置。
然后将目标神经弯曲环绕至记录电极处。在拉伸并固定神经后,使用装有石蜡油且带有圆头的20号针头注射器,将目标神经与浴液隔离。对所有需要记录其电活动的神经重复此操作。
最后,如图所示开始记录,同侧PS2至PS5运动神经元的细胞外PS活动从PS5的节律性爆发开始,兴奋波向前方传播。此外,每个节段中从一次爆发起始到下一次爆发起始的时间间隔保持恒定,定义为节律周期。爆发持续时间在不同制备样本间可能有所变化,但各节段之间的相位滞后始终保持恒定,约为周期的四分之一,与节律频率无关。
这些协调模式在下图所示的相位直方图中最为清晰。此处使用尖锐的微电极,从 Ps.运动神经元树突进行细胞内记录,显示出单个神经元与同一半节腹神经节中所有PS运动神经元的细胞外记录活动之间的同相振荡。为了鉴定细胞内记录的神经元,可通过尖锐微电极和离子电泳法对细胞进行DiI染色填充。
在此图中,两个双填充的PS运动神经元的腹侧胞体位于神经一基部的后方。初级神经突向前延伸,并在侧神经节内分支。轴突经由神经一的后支投射至肌肉组织。
一旦掌握,若操作得当,该技术可在45分钟至1小时内完成。在实施该步骤时,需注意定期更换生理盐水,以保持神经组织的健康状态。完成该步骤后,可进一步采用其他方法,如运动神经元或中间神经元的细胞内记录,以回答更多科学问题,例如分析协调行为的细胞机制、测量离子电流,或研究神经调质对特定细胞节律性活动的影响。
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本文介绍了小龙虾腹部神经索的解剖方法,并演示了一种电生理技术,用于记录泳足运动神经元的虚拟运动活动。
小龙虾游泳足神经索解剖与细胞外记录方案为研究节律产生神经网络及微环路协调提供了一个可靠的模型。该系统可精确检验中枢模式发生器功能的假设,有助于在神经生物学早期发现中降低机制风险并提高预测可信度。其可重复性及定量输出特性使其在神经药理学研究流程中的转化研究与检测方法开发方面具有重要价值。
该方法可融入从早期假设验证到神经环路功能临床前模型构建的整个发现过程。