2015年1月20日
本实验方案的目的是概述一种手术方法,以在小鼠模型中直接进入背侧耳蜗核。
本实验的总体目标是通过手术暴露小鼠模型的耳蜗核,以开展基于光遗传学的实验研究。首先,需对小鼠进行开颅术前准备,并将覆盖在头颅侧面的皮肤、软组织和肌肉向外侧牵开。第二步,在左侧顶间骨进行开颅,位置大约位于矢状缝后方两毫米处。
该区域覆盖耳蜗核。接下来,使用五法式吸引管吸除覆盖在DCN上方的左侧小脑最外侧部分。结果显示DCN视野清晰无遮挡。
与立体定向引导等辅助方法相比,该技术的主要优势在于能够直接可视化耳蜗核,并可将神经刺激器(如光源或电极阵列)放置于脑干表面。该方法有助于我们解答光遗传学与听觉研究领域的关键科学问题。无需假体装置,基因转导即可实现以足够空间与时间分辨率的光刺激听觉脑干。
通过腹腔注射氯胺酮和赛拉嗪麻醉小鼠后,检查其脚趾夹捏回缩反射,并监测心率和呼吸频率以确认麻醉效果。然后在双眼涂抹兽医用眼膏,防止角膜干燥。接着,剃除覆盖在头皮上的毛发,以充分暴露手术区域。
此后,将小鼠置于小型动物立体定位仪中。调整鼻夹,使其松紧适度,既能保证小鼠呼吸顺畅,又能完全固定小鼠头部。在显微镜下,从耳廓之间中线处开始,沿皮肤做一垂直切口,并延伸至枕骨结节部位。
然后将皮肤向侧方牵开。使用手术刀或虹膜剪去除覆盖在颅骨左侧顶骨、间顶骨和枕骨上的肌肉组织。同时,用棉签轻轻按压10至15秒,以尽量减少出血。
接下来,确定矢状缝和人字缝的位置。使用一对Ron宝石刀,在人字缝线旁侧约两毫米处的左侧顶骨上进行开颅。
该区域位于开颅术后耳蜗核(DCN)的上方。应仔细观察覆盖在小脑表面的一层薄薄的硬脑膜,并使用手术刀片小心将其去除。用棉签清除凝固的血液,或轻轻滴加生理盐水冲洗小脑表面以清除血液。
然后使用一根5 French的吸引管,吸除左侧小脑最外侧覆盖耳蜗核(DCN)的区域,以协助操作。在吸引过程中,将显微镜的焦平面调节至耳蜗核预期深度,以改善视野并确保图像清晰。切除左侧小脑约四分之一至三分之一的部分。
与耳蜗背核(DCN)相邻的主要解剖标志是上半规管的弓形凸起(AM)。在吸除操作后,若出现进一步出血、脑脊液积聚以及小脑对DCN的压迫,应迅速将生理盐水注入开颅孔,以防止血液凝固。采用牙科棉签轻柔擦拭与吸引相结合的方式,清除路径上的阻碍,以便直接观察DCN。
当DCN清晰可见且无血液和脑脊液覆盖时,使用5微升气密型Hamilton注射器向其内进行微量压力注射。采用34号带有浅斜面的针头,以尽量减少钝性损伤,并将注射体积局限在DCN内。然后通过显微操作仪缓慢插入针头,直至针尖在DCN表面下不可见为止。
开始注射1.5 µL的载体。注射完成后,缓慢撤出针头,随后缝合皮肤,并按照标准恢复程序让小鼠恢复。在愈合及病毒介导的基因转导孵育2至4周后,重新麻醉已注射载体的小鼠,然后清除颅骨开孔部位上方的瘢痕组织。
随后,辨认出覆盖在小脑深部核团(DCN)上方的残余小脑组织与瘢痕组织组合。使用五法式吸引器吸除覆盖的残余小脑及瘢痕组织。完成吸引后。
迅速将生理盐水注入颅骨开窗区域。为防止血液凝结,使用轻柔的牙科尖头棉签轻拭并结合吸引清除术野,以实现对小脑下核(DCN)的直接可视化。现在可对DCN进行基于光遗传学的生理学实验,图中显示将激光光纤直接放置在DCN表面,从而实现对表达光敏蛋白的DCN神经元进行光学刺激。在感染了光敏蛋白的DCN表面给予蓝光脉冲序列,可诱发光驱动的听觉脑干反应。
使用显微操作器,将连接至蓝光激光器的光纤直接放置在耳蜗核表面并开启。在此我们可以观察到耳蜗核表面的脉冲蓝光刺激。完成该操作后,可进一步实施其他方法,例如对核团进行电刺激,从而能够直接比较声刺激诱发的神经反应、电刺激诱发的神经反应以及光刺激诱发的神经反应。
观看本视频后,您应能够充分了解如何准备并实施开颅术及小脑吸除术,最终实现对耳蜗核的直接观察与暴露。
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本文介绍了一种针对小鼠背侧耳蜗核(DCN)的详细手术方案,可实现对中枢听觉系统的直接通路,从而开展光遗传学及其他神经生理学实验。所述的后颅窝入路可实现对DCN的精确定位与操作,有助于病毒介导的基因转导及后续功能研究。
对小鼠背侧耳蜗核(DCN)进行直接可视化和操作,可实现对中枢听觉通路的精确光遗传学与基因转导研究,填补了外周系统之外听觉研究领域的一项关键空白。该技术手段有助于在听觉及神经退行性疾病模型中开展神经治疗靶点的机制性去风险化和靶点验证,提升在早期发现及临床前关键阶段的预测可靠性,从而为中枢神经系统(CNS)治疗药物的研发决策提供依据。
该方法通过实现对中枢神经系统听觉回路的假设验证、靶点确证和功能检测,融入了从发现到临床前研究的连续过程。