2015年3月8日
深部脑刺激(DBS)手术治疗作用背后的机制仍需进一步研究。本文所述方法介绍了一种实验性方法,通过分析可能促进DBS术后神经发生的候选基因的基因表达谱,来探讨DBS所触发的细胞事件。
本实验的总体目标是对大鼠丘脑前核进行深部脑刺激,并研究其海马组织中基因表达的变化。首先对动物实施麻醉,随后进行手术准备。
在头皮上做切口并暴露颅骨。随后,在相对于bgma的正确位置钻出骨孔。插入DBS电极并进行刺激。
最后,处死动物并解剖脑组织。为分离海马体,对组织进行RNA提取,随后进行cDNA合成和定量PCR检测。最终结果表明,深部脑刺激可影响大鼠海马体中的基因表达。
该方法有助于解答脑深部电刺激手术中的关键问题,例如脑深部电刺激手术治疗效应背后的分子机制是什么?该技术的意义不仅延伸至癫痫的治疗,还涵盖其他神经系统疾病,如帕金森病、阿尔茨海默病和肌张力障碍。由于脑深部电刺激(DPS)正逐渐成为治疗多种神经功能障碍的外科手段,在手术准备阶段,应使用手术垫覆盖工作台,并确保配备有生物危害废物处理设施。
称重大鼠,并根据文本方案计算麻醉剂量。将两个电极安装并固定在立体定位手术架的电极夹持器上,使用显微镜检查电极尖端是否对齐。将电极固定在相距三毫米的位置,注意避免电极尖端接触硬质表面。注射氯胺酮和赛拉嗪。
将腹腔内注射给药至动物体内,并通过检查趾夹反射、呼吸频率以及呼吸的深度和节律来确认动物已达到外科麻醉水平。将动物固定并置于立体定位仪上。在动物眼睛上涂抹眼用润滑剂以防止过度干燥,并使用碘伏和酒精或无菌生理盐水交替擦拭三次,对头皮进行消毒。
将动物置于循环温水垫上,或使用加热灯以维持动物体温在最佳水平。根据 Paxos 和 Watson 大鼠脑图谱,采用以下立体定位坐标来定位丘脑前核或 NT(前-后方向 -1.6 毫米,内侧-外侧 1.5 毫米,背侧-腹侧 5.2 毫米)。
接下来,在头皮上做矢状切口以暴露颅骨。使用一对牵开器固定切开的头皮,以充分暴露颅骨。然后用浸有乙醇的无菌棉签清洁切口区域,清晰显露颅骨缝。定位脑内侧前核(bgma),并用黑色标记笔标记,以确定钻孔位置。
在矢状缝两侧约 1.5 毫米处以及冠状缝后方 1.6 毫米处再各标记两点。现在开始制作两个钻孔,先用乙醇对钻头尖端进行消毒。
以45度角持钻头进行钻孔,交替在两个孔之间频繁切换,以避免任一钻孔中心产生过多热量。持续钻孔直至暴露硬脑膜。使用尖端弯成L形的针头,清除可能阻碍电极插入的任何碎骨片。
在移除骨碎片时需小心,避免损伤下方的硬脑膜和/或脑组织。将双电极组件固定在立体定位仪旋转手柄上,并将手柄固定于90度角。利用立体定位仪的调节装置,将左侧电极精确定位于bgma正上方。
利用立体定位调整介质。通过外侧定位,将左侧电极精确向左移动1.5毫米至bgma的左侧,使现在有两个电极沿冠状缝完美对齐,但相隔一定距离。即在bgma的外侧向内侧方向相距1.5毫米。
然后通过前后向立体定位调整,将电极移至冠状缝后方1.6毫米处。接着通过背腹向调整, lowering 电极以首先检查钻孔位置是否正确,确保电极能够顺利插入,且不接触钻孔粗糙的边缘。若位置正确,则将电极插入至颅骨表面下5.2毫米的深度。
通过导线将电极连接至刺激器,设置参数为130赫兹、2.5伏特,脉冲宽度为90微秒。在所需时间内给予高频刺激。可进行单侧或双侧刺激。
刺激结束后,小心移除电极,使用三枚零号缝线或无菌外科缝合钉闭合切口,皮下注射布托啡诺,并监测动物直至其恢复至正常活动状态,然后将其送回饲养设施。将脑组织置于冰上预冷的丙烯酸脑切片模具中,使用剃刀片从脑最前缘向后约七到八毫米处进行冠状切面切割。
在第一次切割的内侧和后侧再进行第二次切割,以便移除一块约五毫米厚的脑组织切片。使用刀片将脑组织切片转移至含有冰冻 PBS 的培养皿中,分离两个半球部分,并注意记录哪一部分对应左侧和右侧。使用精细镊子和剪刀小心剥离海马组织,将组织在干冰上速冻,并在负20摄氏度下保存,直至进行后续RNA实验步骤。按照此处所示文本方案进行操作,图为在指定时间点,BDNF 相对于对照基因 beta actin 的相对表达水平。
脑深部电刺激(DBS)术后刺激。在DBS手术后立即观察到BDNF表达上调,并在刺激后3小时达到表达峰值。该观察结果提示,BDNF表达增强及其介导的神经保护作用可能有助于DBS对癫痫患者的治疗获益。
该图显示了GABA受体G-A-B-R-D的表达情况,在DBS刺激后3小时,与未刺激的对照组动物相比,刺激组动物中G-A-B-R-D的表达增强。考虑到GABA激动剂被用作有效的癫痫发作抑制剂,观察到DBS后G-A-B-R-D表达增强,提示GABA可能参与了DBS的抗癫痫作用。按照本实验方案进行操作。
其他方法如蛋白质印迹(western blot)、染色质免疫沉淀以及许多其他标准的分子生物学检测也可进行。这些方法有助于回答有关蛋白质表达变化、翻译后修饰、转录因子在特定基因启动子区域的结合情况等问题。观看本视频后,您应能充分掌握如何在大鼠中实施深部脑刺激手术。
分离海马组织并分析其基因表达变化。
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本文详细介绍了一种在成年雄性Wistar大鼠中进行前丘脑核(ATN)深部脑刺激(DBS)的实验方案,随后分析海马组织中基因表达的变化。该方法包括立体定位手术、电刺激、组织分离、RNA提取、cDNA合成以及定量RT-PCR。该技术路线可用于研究DBS治疗效应背后的分子机制,尤其适用于癫痫及其他神经系统疾病的机制探索。
对丘脑前核(ATN)深部脑刺激(DBS)后大鼠海马区基因表达变化进行定量分析,可为神经调控疗法所调节的分子通路提供机制性视角。该方法使生物制药研究人员能够探索与神经调控相关的潜在治疗靶点。&D团队用于研究靶点结合及下游生物学效应,从而支持对转化神经科学项目组合的预测信心。该方法位于靶点验证与中枢神经系统治疗开发的机制性风险降低的交汇点。
本方案通过实现对神经调节作用于基因表达的假设驱动型测试,融入从发现到临床前研究的连续过程,支持靶点验证和机制层面的风险评估。