Name: 自噬的分析产黄青霉通过结合使用饥饿垫荧光显微镜 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: 了解如何使用饥饿垫和荧光显微镜在产黄青霉中诱导和观察自噬过程。该方法通过追踪荧光标记蛋白向液泡的转运来监测细胞自噬，为研究真菌细胞生物学和筛选调控自噬的化合物提供了有效工具。

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CQS 收到了来自 LOEWE 卓越集群整合真菌研究（IPF）的奖学金。作者感谢 Ida J. van der Klei 提供本研究中使用的 P. chrysogenum 菌株，以及 Andreas S. Reichert 惠赠雷帕霉素。

1. 青霉菌（P. chrysogenum）饥饿实验前的准备
<ol>
	<li>若目标 P. chrysogenum 菌株保存在大米培养基（“绿色大米”）上，取2-3粒覆盖有产孢菌丝的大米放入1.5 ml 微量离心管中，加入500 µl YGG培养基（10 g/l KCl，20 g/l 葡萄糖，10 g/l 酵母氮源基础，5 g/l K2HPO4，20 g/l 酵母提取物）。
	<ol>
		<li>涡旋振荡管子30秒，使孢子有效从大米上脱落。</li>
		<li>在室温下（例如，20–25 °C）孵育1天。</li>
		<li>用无菌自来水将该孢子悬液稀释至1/50，充分混匀。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>若目标 P. chrysogenum 菌株保存在琼脂平板上（例如，YGG琼脂平板），使用无菌牙签或移液器吸头取少量菌丝碎片，转移至含有400 µl无菌自来水和约100 mg玻璃珠的1.5 ml微量离心管中。
	<ol>
		<li>涡旋振荡管子2分钟，使菌丝充分破碎。立即使用管内混合物。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 在饥饿垫上培养P. chrysogenum的预备步骤
<ol>
	<li>打开加热板并将温度设置为约 60 °C。</li>
	<li>将2 g琼脂糖溶于100 ml自来水，放入微波炉中加热溶解。注意加热后溶液必须完全澄清；若未澄清，需再次加热直至琼脂糖完全溶解。将琼脂糖溶液冷却至约60 °C后使用。</li>
	<li>将1.5 ml微量离心管（2–4个，根据样本数量而定）各加入400 µl无菌自来水（不添加其他化合物）或400-x µl（在步骤2.5中加入x µl化合物溶液），然后置于加热板上至少1分钟，使管内液体变暖。</li>
	<li>将带有中央凹槽的载玻片置于加热板上，至少加热 1 min。</li>
	<li>向1.5 ml离心管中的溶液加入400 µl 2%琼脂糖，短暂涡旋混匀。此步骤之后，可根据需要添加其他化合物（即， 1 µM 雷帕霉素）。每次向管中加入新物质后，需短暂涡旋混匀。将离心管放回加热台，以防止过早凝固。 
	注意：微量离心管中的总体积应为 800 µl。</li>
</ol>
3. 制备含饥饿垫的显微镜载玻片
<ol>
	<li>用移液器将140 µl琼脂糖溶液加入载玻片的凹槽中（载玻片仍置于加热板上）。尽量避免产生气泡。</li>
	<li>立即在琼脂糖溶液上放置盖玻片。 
	注意：这将形成一个平整的表面。</li>
	<li>将载玻片放置在实验台面上约4分钟，使琼脂糖垫凝固。</li>
	<li>用拇指或食指轻轻滑动，小心地将盖玻片从琼脂糖垫上移除（佩戴手套以避免污染！）。</li>
	<li>将带有琼脂糖垫的载玻片放入湿盒中，以防止干燥。建议：使用一个空的枪头盒，盒内仍保留用于固定移液器枪头的插架。向盒内加入无菌水，使底部被覆盖。将载玻片放置在插架上，并盖上盒盖。</li>
</ol>
4. 用P. chrysogenum接种饥饿培养垫并进行培养
<ol>
	<li>若培养物生长在大米上，取5 µl 1/50稀释的孢子液；若培养物生长在琼脂平板上，则取5 µl未稀释的含有菌丝片段的溶液，将其滴加到饥饿培养垫的中央。</li>
	<li>盖上湿润培养盒，并用塑料袋包裹（以进一步防止饥饿培养垫干燥）。操作时需小心，避免过度移动盒子，否则会扰动接种液滴。</li>
	<li>将包裹好的盒子在室温下静置至少20小时，然后进行样品分析。</li>
</ol>
5. 样品的显微分析
<ol>
	<li>孵育 20 小时后，样品即可进行显微镜分析；将显微镜载玻片置于干燥的纸巾上（底部容易变湿）。</li>
	<li>用移液器吸取少量水（约 50 µl）滴加到饥饿培养垫上。将盖玻片盖在培养垫上，并挤出多余的水分。用纸巾吸除多余的水。</li>
	<li>将显微镜载玻片放置在荧光显微镜的观察台上。为全面观察菌丝体生长情况，使用 20X 物镜；为研究 GFP 在菌丝中的定位，使用 63X 或 100X 物镜。为防止样品逐渐干燥，每次观察时间不应超过 15 分钟，之后应立即将样品放回湿室中。</li>
	<li>定期重复步骤 5.3（例如，在培养 40 小时和 60 小时后）。 
	注意：样品可重新放回湿室中。无需取下盖玻片，因其对菌丝体生长无影响。</li>
</ol>

<ol><li>Fischer, F., Hamann, A., Osiewacz, H. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+quality+control%3A+an+integrated+network+of+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biochem.+Sci%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial quality control: an integrated network of pathways.</a> Trends Biochem. Sci. 37 (7), 284-292 (2012).</li>
<li>Pollack, J. K., Harris, S. D., Marten, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+in+filamentous+fungi%5BTitle%5D)+AND+%22Fungal+Genet.+Biol%22%5BJournal%5D)">Autophagy in filamentous fungi.</a> Fungal Genet. Biol. 46 (1), 1-8 (2009).</li>
<li>Scheckhuber, C. Q., Osiewacz, H. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Podospora+anserina%3A+a+model+organism+to+study+mechanisms+of+healthy+ageing%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Genet.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Podospora anserina: a model organism to study mechanisms of healthy ageing.</a> Mol. Genet. Genomics. 280 (5), 365-374 (2008).</li>
<li>Pinan-Lucarré, B., Iraqui, I., Clavé, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Podospora+anserina+target+of+rapamycin%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Genet%22%5BJournal%5D)">Podospora anserina target of rapamycin.</a> Curr. Genet. 50 (1), 23-31 (2006).</li>
<li>Kikuma, T., Ohneda, M., Arioka, M., Kitamoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+the+ATG8+homologue+Aoatg8+and+role+of+autophagy+in+differentiation+and+germination+in+Aspergillus+oryzae%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryot.+Cell%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of the ATG8 homologue Aoatg8 and role of autophagy in differentiation and germination in Aspergillus oryzae.</a> Eukaryot. Cell. 5 (8), 1328-1336 (2006).</li>
<li>Pinan-Lucarré, B., Balguerie, A., Clavé, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+cell+death+in+Podospora+autophagy+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Eukaryot.+Cell%22%5BJournal%5D)">Accelerated cell death in Podospora autophagy mutants.</a> Eukaryot. Cell. 4 (11), 1765-1774 (2005).</li>
<li>Veneault-Fourrey, C., Barooah, M., Egan, M., Wakley, G., Talbot, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagic+fungal+cell+death+is+necessary+for+infection+by+the+rice+blast+fungus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Autophagic fungal cell death is necessary for infection by the rice blast fungus.</a> Science. 312 (5773), 580-583 (2006).</li>
<li>Bartoszewska, M., Kiel, J. A., Bovenberg, R. A., Veenhuis, M., van der Klei, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autophagy+deficiency+promotes+beta-lactam+production+in+Penicillium+chrysogenum%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Autophagy deficiency promotes beta-lactam production in Penicillium chrysogenum.</a> Appl. Environ. Microbiol. 77 (4), 1413-1422 (2011).</li>
<li>Meijer, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peroxisomes+are+required+for+efficient+penicillin+biosynthesis+in+Penicillium+chrysogenum%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Peroxisomes are required for efficient penicillin biosynthesis in Penicillium chrysogenum.</a> Appl. Environ. Microbiol. 76 (17), 5702-5709 (2010).</li>
<li>Cubitt, A. B., Heim, R., Adams, S. R., Boyd, A. E., Gross, L. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding%2C+improving+and+using+green+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biochem.+Sci%22%5BJournal%5D)">Understanding, improving and using green fluorescent proteins.</a> Trends Biochem. Sci. 20 (11), 448-455 (1995).</li>
<li>Jung, C. H., Ro, S. H., Cao, J., Otto, N. M., Kim, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mTOR+regulation+of+autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">mTOR regulation of autophagy.</a> FEBS Lett. 584 (7), 1287-1295 (2010).</li>
<li>Hickey, P. C., Read, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+living+cells+of+Aspergillus+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Mycol%22%5BJournal%5D)">Imaging living cells of Aspergillus in vitro.</a> Med. Mycol. 47, Suppl 1. S110-S119 (2009).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本文所介绍的方法可方便、可重复地研究P. chrysogenum中的自噬作用。例如，该方法可用于筛选各种化合物是否能够调节该真菌自噬反应的效果。雷帕霉素的实验结果表明，抑制TOR信号通路可显著诱导P. chrysogenum中的自噬作用，这一现象在其他生物中也已有报道11。
可以利用在饥饿垫上生长的菌丝，用于更精密显微镜的分析例如，共聚焦激光扫描显微镜）。样品置于物镜下方或物镜上方（倒置显微镜）均无影响。可利用靶向特定区室的各种荧光蛋白来监测自噬过程中不同细胞器的命运（例如， 线粒体&#62; 线粒体自噬；内质网&#62; 内质网自噬， 等等综上所述，本文所述技术扩展了用于显微研究真菌的方法范围。 12.
该实验方案通常简单明了且易于操作。然而，必须特别注意饥饿平板绝不能干燥，否则将导致人为假象及细胞死亡。因此强烈建议：（i）在加热板上制备仍处于液态的琼脂糖溶液后，应立即将载玻片从加热板上取下（...

丝状真菌是研究发育过程的优良模式系统。它们具有多种实验优势，例如培养成本低、后代数量多以及遗传操作便利。最后一点对于构建转化子尤为重要，可用来研究迄今尚未表征的基因在各种细胞机制中的重要性。丝状真菌在阐明多种细胞质量控制通路的组分和机制方面发挥了关键作用，例如蛋白酶活性在异常蛋白质降解中的作用、线粒体动态变化在维持线粒体完整性中的作用，以及自噬在清除多余和/或功能障碍的细胞组分以及在饥饿条件下维持细胞活力中的作用1,2,3。
目前有多种实验技术可用于研究丝状真菌中的自噬作用2：(i) 在蛋白酶被抑制的条件下，通过透射电子显微镜观察液泡内是否含有致密的自噬小体4；(ii) 通过荧光显微镜监测GFP-Atg8焦点以可视化自噬体5,6；以及(iii) 使用荧光染料单丹磺酰尸胺检测酸化的自噬体结构7。
此处介绍一种新型的培养方法 Penicillium chrysogenum 用于自噬研究的方法被提出。主要组成部分是“饥饿垫”，其仅由1%琼脂糖溶解于无菌自来水中构成。可添加其他化合物（例如， 胁迫剂、清除剂、自噬调节剂）可添加至垫片中，前提是这些物质不产生自发荧光。该垫片置于含有浅层中央凹腔的显微镜载玻片中。可通过孢子悬浮液或小型菌丝片段对垫片进行接种。若目标菌株产孢效率较低，建议采用后者。例如， Δatg1 菌株 8将载玻片置于湿盒中（可用空的移液枪头盒简易制作）以防止样品干燥，并在室温下孵育。 P. chrysogenum 在这些条件下能够生长数天。通过观察液泡增大可从显微镜下检测自噬现象，液泡增大是真菌自噬的阳性标志。本研究中，一种 P. chrysogenum 使用一种菌株（Wisconsin 54-1255），其表达的绿色荧光蛋白通过C末端的‘SKL’序列靶向过氧化物酶体 9因此，可以监测过氧化物酶体的降解过程。也可以对细胞的其他区室进行标记（例如， 线粒体）通过使用适当的定位信号来分析其降解过程。尽管来自 P. chrysogenum Ws54-1255（GFP-SKL）在此展示，该“饥饿垫”方法也完全可用于其他丝状真菌例如， Neurospora crassa, Sordaria macrospora，曲霉属物种， 等等。).

<table><tbody><tr><td>带中央腔的显微镜载玻片</td><td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany</td><td>H884.1</td><td>清洁后可多次使用。</td></tr><tr><td>玻璃珠</td><td>Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany</td><td>A553.1</td><td>直径：0.25 - 0.50 mm</td></tr></tbody></table>

自噬分析 penicillium chrysogenum 通过使用饥饿垫结合荧光显微镜技术

Analysis of Autophagy in Penicillium chrysogenum by Using Starvation Pads in Combination With Fluorescence Microscopy

细胞质量控制系统的研究已成为当前极具活力且重要的研究领域。研究表明，细胞具备多种防御机制，可抵御对生物大分子（如核酸、脂质和蛋白质）造成的损伤。除了细胞器动态（融合/分裂/运动/遗传）和严格调控的蛋白酶活性外，通过自噬（细胞“自我消化”）降解多余、受损或功能异常的细胞器也受到科学界的广泛关注。自噬的调控机制十分复杂，依赖于遗传和环境因素，其中许多因素至今尚未阐明。本文介绍一种新方法，可方便地在丝状真菌Penicillium chrysogenum中研究自噬过程。该方法基于将真菌培养在所谓的“饥饿垫”上，以可重复的方式诱导自噬。样品可直接通过显微镜检测，并用于评估自噬的诱导程度与进程。本文所述方案不仅限于P. chrysogenum，也可轻松适用于其他丝状真菌。

为了验证上述方案的实用性，分析了 P. chrysogenum 菌株 Ws54-1255 (GFP-SKL) 中的过氧化物酶体降解过程。在该菌株中，GFP-SKL 通常会被导入过氧化物酶体9。当通过荧光显微镜观察样品时，会呈现出多个球形结构。如果发生自噬，液泡会增大。GFP-SKL 通过自噬（即过氧化物酶体自噬，pexophagy）被包裹进入液泡中。由于 GFP 对液泡蛋白酶的降解具有抗性，因此可标记这些细胞器10。因此，在该菌株中观察自噬（过氧化物酶体自噬）的两个参数——液泡增大和 GFP-SKL 定位于液泡——可通过荧光显微镜方便地进行监测。
在培养20小时时，从未在液泡中观察到GFP信号（图1），且液泡未出现膨大现象。然而，在培养40小时后，部分菌丝中开始出现GFP标记的液泡，表明自噬（过氧化物酶体自噬，pexophagy）已被激活（图1）。在培养60小时后，GFP标记的液泡数量进一步增加。作为阴性对照，使用了产黄青霉（P. chrysog...

一种研究自噬的便捷而强大的方法 Penicillium chrysogenum 通过使用饥饿垫（载玻片中央凹槽内含有琼脂糖与自来水混合物）的方法在此介绍。

自噬分析 Penicillium chrysogenum 通过使用饥饿垫结合荧光显微镜技术

细胞质量控制系统的研究已成为当代科研中一个高度活跃且极具相关性的领域。目前人们已明确，细胞……

本实验的目的是在丝状真菌中诱导并观察自噬现象。首先，将含有营养物质的培养基小体积接种孢子或菌丝小片段。第二步，在玻璃显微镜载玻片的凹槽中制备饥饿垫，然后将接种物转移至饥饿垫上。在最后一步中，将饥饿垫置于湿室中孵育以诱导自噬。最终，可通过荧光显微镜监测目的荧光标记蛋白向液泡的转位来追踪自噬过程。该方法有助于研究细胞生物学领域中的关键问题，例如鉴定能够调节自噬过程的新化合物。为了准备饥饿实验，如果目标P cresa genum菌株保存在绿色大米上，首先取两到三粒覆盖有菌丝的大米，放入1.5毫升离心管中，并向管中加入500微升酵母提取物葡萄糖生长培养基或wide GG培养基。然后将离心管涡旋振荡30秒，使孢子从大米上脱落，并在室温下孵育一天。次日，若p cryogen保存在琼脂上，则用无菌自来水将孢子悬浮液稀释至1:50浓度，并充分混匀。使用移液枪枪头将少量菌丝转移至含有 400 微升无菌自来水和约 100 毫克玻璃珠的 1.5 毫升微量离心管中。然后将离心管涡旋振荡两分钟，使菌丝断裂成碎片。若要在饥饿培养垫上培养 PCE genum，首先将加热板预热至约 60 摄氏度。接着，将2克aros溶于100毫升自来水中，在微波炉中加热，直至溶液完全澄清，同时使aros冷却至约60摄氏度。每个样品准备一支1.5毫升微量离心管，加入400微升无菌自来水或化合物溶液。然后将离心管和载玻片置于加热板上预热至少60秒。将400微升60摄氏度的aros转移至所有离心管中，使每管总体积达到800微升，短暂涡旋混匀，然后将离心管放回加热板上，以防止过早凝固。现在将140微升相应的aros溶液用移液器加入每张显微镜载玻片的凹槽中。注意避免产生气泡，立即用盖玻片压平aros，随后将载玻片静置约四分钟。当 aros 垫在室温下凝固后，用拇指或食指小心地将盖玻片滑下，并将载玻片和垫片放入湿室中。接着，用移液器吸取 5 µL 前期制备好的 P er genum，加至饥饿垫的中央，再用塑料袋包裹湿室，以进一步防止干燥，注意不要过度移动盒子或扰动培养物。随后，将接种物在室温下存放至少 20 小时，然后再分析样品。第二天，将载玻片转移至干燥的纸巾上，然后在每个饥饿培养基上滴加50微升水。用盖玻片挤出多余的水分，并用新的纸巾吸除。随后，对每张载玻片使用20倍物镜获取菌丝生长的总体观察图像。为了评估GFP在Hy-Fi中的定位，使用63倍或100倍物镜打开图像。每次观察后，将玻片放回湿盒中，直至下一个实验时间点。在这些图像中，使用 G-F-P-S-K-L-P Creo Genum 菌株评估了在 20 小时培养时间下的过氧化物酶体降解情况。此时在液泡中未观察到 GFP，这些细胞器也未出现增大。然而，在培养 40 小时后，可在部分菌丝中观察到 GFP 标记的液泡，表明自噬已被激活；在 60 小时培养时，GFP 荧光信号更为明显，且液泡进一步增大。在本实验中，使用 p caressa 基因组的 delta 80 G 一突变体作为阴性对照。需要注意的是，即使在生长 60 小时后，该突变体仍无液泡扩张和 GFP 信号。作为阳性对照，使用自噬诱导药物雷帕霉素处理，与未经处理的 G-F-P-S-K-L 菌株观察结果一致。GFP 标记的液泡在生长 40 小时后开始可见，至 60 小时时，Hy-Fi 中已完全充满含有大量 GFP 的巨大液泡。观看本视频后，您应能够充分理解如何在神经菌类真菌中分析自噬作用。

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生物学

自噬的分析<em&gt;产黄青霉</em&gt;通过结合使用饥饿垫荧光显微镜

本文描述了一种用于监测细胞器向酵母液泡酸性腔内递送以进行降解和回收的稳健方法。该方法依赖于利用基因编码的双发射荧光pH生物传感器对目标细胞器进行特异性标记，并通过荧光显微镜观察单个细胞。...

一种用于监测酵母Saccharomyces cerevisiae中线粒体自噬的荧光显微镜检测方法

自噬是一种普遍存在的过程，使细胞能够降解并回收蛋白质和细胞器。我们采用先进的荧光显微技术，对自噬诱导过程中发生的微小但关键的物理变化进行可视化和定量分析，包括自噬体和溶酶体的形成与分布，以及它们融合形成自噬溶酶体的过程。...

利用先进的三维荧光显微镜对自噬进行定量分析

通过荧光标记的自噬标志物进行延时显微成像，可实现对动态自噬反应的高时间分辨率监测。结合三种不同颜色的特异性自噬和细胞器标志物，我们能够在稳定的空间和时间背景下追踪某蛋白质在自噬体形成过程中的作用。...

活细胞成像观察早期自噬事件：omegasome 及其相关过程

可通过盲肠结扎穿刺（CLP）法在小鼠中诱导实验性脓毒症。目前评估自噬的方案 体内...

盲肠结扎穿刺诱导脓毒症作为研究小鼠自噬的模型

为了抑制病原体扩散，宿主细胞会重组其细胞骨架以区隔细菌并诱导自噬。使用 志贺氏菌 组织培养细胞感染过程中，宿主与病原体的相关决定因子被鉴定并表征。利用斑马鱼模型 志贺氏菌 感染，对所发现的分子和机制的作用进行研究 体内.

使用 Shigella flexneri 研究自噬-细胞骨架相互作用

本研究采用多光谱成像流式细胞术，结合分析功能，对3种自噬标志物的明场细节图像进行比较，并定量分析其共定位情况，同时进行LC3斑点计数，从而以客观、定量且具有统计学稳健性的方式检测自噬水平。...

利用多光谱成像流式细胞术通过检测LC3、p62和LAMP1共定位评估自噬流

我们开发了一种简单且可适应的工作流程，用于从基于荧光成像的细胞生物学研究中提取定量数据，以分析神经退行性 Drosophila...

神经退行性变的定量细胞生物学研究 果蝇 使用 ImageJ 对荧光标记蛋白进行无偏分析

本文详细介绍了一种制备隐球菌细胞与阿米巴原虫共培养体系的实验方案，该体系通过静态荧光图像和高分辨率透射电子显微镜图像进行研究。文中展示了定量数据如何补充此类定性信息。...

显微技术与荧光读取在研究中的互补应用 隐球菌-阿米巴相互作用

本方案描述了在细胞中诱导自噬的方法 黑腹果蝇 幼虫脂肪体 通过...

分析饥饿诱导的黑腹果蝇（Drosophila melanogaster）幼虫脂肪体中的自噬作用

本实验方案的目的是通过LC3免疫荧光染色及LC3点状结构定量分析，检测胰腺癌细胞和胰腺腺泡细胞中的自噬水平。...

利用LC3免疫荧光评估两种不同胰腺细胞模型中的自噬水平

本文介绍了一种基于内源性荧光标记的优化切片上相关光镜-电镜联用技术方案，用于研究稀有蛋白质相对于细胞超微结构的定位。该方法的优势通过在未使用巴佛洛霉素处理的饥饿细胞中实现内源性LC3蛋白的超微结构定位得以展示。...

通过切片上相关联的光学-电子显微镜对内源性LC3进行超微结构定位

了解如何使用饥饿垫和荧光显微镜在产黄青霉中诱导和观察自噬过程。该方法通过追踪荧光标记蛋白向液泡的转运来监测细胞自噬，为研究真菌细胞生物学和筛选调控自噬的化合物提供了有效工具。

自噬分析 Penicillium chrysogenum 通过使用饥饿垫结合荧光显微镜技术

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