Name: 现货正确的组织多组织块每一次 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 53 s
Description: 学习使用HistoGel和组织标记染料制作标本定向标签SpOT，用于多组织石蜡块中的组织识别。该方法成本低、操作简单，可提高组织学研究中样本定位的准确性。

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作者谨此感谢 Brent Harris 博士对本文稿提供的关键性审阅意见。本研究在 Lombardi 综合癌症中心组织病理学实验室完成 &amp;#38; 组织共享资源，部分由美国国立卫生研究院/国家癌症研究所资助项目P30-CA051008支持。本内容仅由作者负责，不一定代表国家癌症研究所或美国国立卫生研究院的官方观点。

1. SpOT 的构建
<ol>
	<li>在15 ml锥形管或2 ml微量离心管中，将50 mg牛血清白蛋白（BSA）加入1 ml组织标记染料中，涡旋振荡1分钟，或直至完全溶解。 
	注意：本实验方案中请使用生化级BSA。尽管其他级别和纯度的BSA尚未经过测试，但预计其级别和纯度对SpOT实验的成功影响不大。</li>
	<li>将9 ml羟乙基琼脂糖处理凝胶置于15 ml锥形管中，在微波炉中以30%功率每次加热10秒，直至凝胶完全融化。</li>
	<li>将融化的处理凝胶与染料-BSA溶液合并至同一15 ml锥形管中，用移液器充分混匀，随后涡旋振荡混合液。</li>
	<li>将锥形管放入冰箱中数小时，或直至凝固成块。</li>
	<li>使用长而细的金属刮刀或探针，轻轻将着色的凝胶块从锥形管中取出。</li>
	<li>使用手术刀或剃刀刀片将凝胶块横向切成5 mm厚的片状。去除两端的弧形部分，并作为废弃物处理（图2A）。</li>
	<li>将凝胶片平放于组织学包埋盒中，浸入70%乙醇中固定1小时。在24小时内每2–4小时更换一次70%乙醇，至少更换3次。</li>
	<li>手动将凝胶片依次通过乙醇梯度脱水（每步1小时：70%乙醇、80%乙醇、95%乙醇、100%乙醇（更换3次）），然后用透明剂透明处理3次（每次1小时）（例如，本实验方案中使用脂肪族碳氢化合物（二甲苯替代品），但二甲苯也可接受），最后用熔融石蜡浸蜡处理3次（每次1小时），可手动操作或使用组织处理机进行。 
	注意：在完成100%乙醇完全脱水前，染料可能从凝胶片中渗出，从而影响自动组织处理机中的其他组织样本及液体试剂。因此，强烈建议采用手动处理方式，但自动化处理同样有效。</li>
	<li>采用标准石蜡包埋方法将多个处理后的凝胶片进行包埋（图2B）。待蜡块冷却硬化后，恢复至室温。</li>
	<li>使用所需尺寸的皮肤穿孔针头，从包埋的凝胶块中取出SpOT核心，直至耗尽整个蜡块（图2C）。单个蜡块最多可提供约20个2 mm2的核心。将核心储存在阴凉处。本实验方案中使用的皮肤穿孔针头见图示：1.5 mm（图1D和2D）或2 mm（图1B、1C和2C）。</li>
</ol>
2. 使用 SpOTs 定向非阵列块
<ol>
	<li>绘制组织定位图，以标明所有待共同包埋的各个组织块的预期位置和身份，以及 SpOT 的位置。 
	注：组织定位图是一张示意图，包含所有组织块的物理位置，并以标识符进行标注，同时标明 SpOT 的位置。该图可电子绘制，也可手绘。应根据使用最终产品的技术人员和研究人员的偏好选择最合适的绘制方式。此图将作为研究人员的参考指南，以便在显微镜分析期间轻松识别样本。本方案中使用的图是手绘的，展示了组织包埋块和玻璃载玻片，其中每个组织块和 SpOT 的位置均按实际包埋块和载玻片中的位置绘制并标注。</li>
	<li>正常处理组织块，确保在整个大体检查和处理步骤中始终保持正确的标识。本方案中，将组织依次在以下试剂中各处理 1 小时：70% 乙醇、80% 乙醇、95% 乙醇、100% 乙醇（更换 3 次）、脂肪族碳氢化合物（二甲苯替代物）（更换 3 次）以及 60 °C 的熔融浸蜡石蜡（更换 3 次）。 
	注：所有组织应按照标准组织学实验室程序进行处理。具体步骤可能因实验室操作、组织大小和类型而异，但这不会影响 SpOT 作为定位工具的使用效果。</li>
	<li>根据组织定位图，在包埋台上将组织块按指定的正确位置排列。以组织定位图为参考，指导技术人员在每个包埋块中如何摆放 SpOT 和组织块。 
	注：在本方案中，包埋技术人员将手绘的定位图放置在包埋台旁，并在包埋台上以与图中完全相同的排列方式放置组织块。这确保了所有组织块在最终产品中仍可被准确识别。这对于多组织块的成功使用至关重要。</li>
	<li>确保 SpOT 芯的高度高于所有将被包埋在块中的组织块。</li>
	<li>根据组织定位图所示的正确位置，采用标准包埋方法，先包埋组织块，再将 SpOT 以末端（横切面）朝下方式包埋。必要时，用镊子扶住 SpOT，直至石蜡充分凝固，使 SpOT 不再倾倒（约 1–2 分钟）。</li>
	<li>使用标准方法对含有 SpOT 的石蜡切片进行切片和染色。
	<ol>
		<li>将切片置于 40 °C 的水浴中展平，并贴附于带正电荷的玻璃载玻片上（未测试无电荷载玻片）。将载玻片置于 60 °C 的烘箱中干燥至少 20 分钟。</li>
		<li>将载玻片放入自动染色机，依次通过以下试剂：二甲苯（二甲苯 1：5 分钟，二甲苯 2 和 3：各 2 分钟）、100% 乙醇（2 分钟）、95% 乙醇（1 分钟）、80% 乙醇（30 秒）、70% 乙醇（30 秒）、流动自来水（2 分钟）、苏木精（1.5 分钟）、流动自来水（3 分钟）、酸性乙醇（1 分钟）、流动自来水（2 分钟）、蓝化试剂（1 分钟）、流动水（2 分钟）、80% 乙醇（30 秒）、伊红（1 分钟）、流动水（10 秒）、80% 乙醇（1 分钟）、100% 乙醇（更换 3 次，每次 2 分钟）、二甲苯（更换 3 次，每次 30 秒）。</li>
		<li>用中性树胶封片，加盖玻璃盖玻片。 
		注：在本方案中，组织技术人员使用切片机将石蜡包埋块切成 5 µm 厚的切片。本方案使用了自动染色机，但手动染色也可获得同等效果。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 组织微阵列中的 SpOT（手动组织微阵列试剂盒）
<ol>
	<li>按照 2.1 节所述方法创建组织定位图，并确定 SpOT 的预定位置。</li>
	<li>在包埋仪上将熔化的石蜡倒入 TMA 模具中。当模具开始冷却时，根据组织定位图所示的预定位置，将 SpOT 垂直嵌入 TMA 模具的边缘区域。必要时，用镊子夹住 SpOT 保持直立，直至石蜡充分固化，确保 SpOT 不再倾倒（约 1–2 分钟）。</li>
	<li>根据制造商的说明，并结合 SpOT 在阵列边缘的位置（图 2D），组装 TMA 芯片，并按照标准切片和染色流程进行操作。 
	注：有关本方案中所用切片和染色方法的详细信息，请参见步骤 2.6。</li>
</ol>

<ol><li>Jawhar, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+microarray%3A+a+rapidly+evolving+diagnostic+and+research+tool%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Saudi.+Med%22%5BJournal%5D)">Tissue microarray: a rapidly evolving diagnostic and research tool.</a> Ann. Saudi. Med. 29 (2), 123-127 (2009).</li>
<li>Dhir, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+microarrays%3A+an+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Bio%22%5BJournal%5D)">Tissue microarrays: an overview.</a> Methods Mol. Bio. 441, 91-103 (2008).</li>
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<li>Suvarna, S., Layton, C., Bancroft, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSuvarna%2C+S+%22Bancroft%E2%80%99s+Theory+and+Practice+of+Histological+Techniques.+7th+ed%22">Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques. 7th ed</a>. , 7th ed, Churchill Livingstone Elsevier Ltd. London, UK. (2013).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

成功制备和使用 SpOTs 需要严格遵循若干技术步骤。羟乙基琼脂糖的融化应缓慢进行，并使用低温加热。若在高温下快速融化，可能导致琼脂糖部分降解，从而影响最终效果。在将含染料的凝胶块切割成小块以进行后续处理时，应确保每块厚度大于 4.5 mm 且不超过 7 mm。两端的圆弧部分因厚度不均（非均匀的 5 mm）应作为废料去除。厚度小于 5 mm 的小块将导致生成较短的 SpOTs，在邻近组织材料尚未耗尽前即可能因切片而被完全消耗。为确保 SpOTs 能贯穿整个包埋块，小块厚度需至少为 4.5–5 mm。然而，为确保石蜡充分渗透，小块厚度不应超过 7 mm。在对染料小块进行脱水以实现石蜡渗透时，染料会在较低浓度乙醇中轻微渗出。这种渗出不会影响最终产物，SpOTs 仍将被强烈染色并清晰可见。但该渗出可能影响其他组织，因此在染料小块达到 100% 乙醇之前，组织切片不应与染料小块在同一溶液中处理。
将SpOTs放入阵列块时，需确保在添加SpOT之前已完成所有其他组织的放置。由于SpOT已浸透石蜡，若在受体块的熔融石蜡中放置时间过长，可能导致SpOT核心开始融化。因此，应先排列好所有组织块，随...

将多个个体的组织样本包埋于同一个石蜡块中，可实现不同处理组及个体间的并列比较，消除切片间的变异，并降低样本切片与染色的成本和工作量。这类多组织石蜡块通常以组织微阵列（TMA）形式制备，或采用非阵列布局将多个个体的组织包埋于同一石蜡块中。在任何多组织分析中，维持样本身份的准确性至关重要。自TMA技术问世以来，研究人员一直利用其提高分析效率、减少切片间差异、节约珍贵的组织资源，并降低实验的时间与成本1。TMA的正确取向可通过多种方法实现，包括使用空白区域、在组织芯之间设置行或列间隔2-4、不对称排列组织芯组3,5（例如，对照组 vs. 处理组）、设置“信标”组织芯6，以及在TMA矩阵外部设置特定的取向标识组织芯3。尽管这些方法在TMA中效果良好，但多数方法会占用宝贵的TMA组织芯空间，且随着时间推移组织芯逐渐耗尽，带有空隙或间隔作为标识的TMA可能变得难以辨认。此外，这些方法不适用于非阵列格式的多组织石蜡块，因为它们依赖于高度有序的微阵列组织芯排列中的异常模式作为识别标志。大多数非阵列式多组织石蜡块需容纳形态不一的组织，且本质上不具备规则的阵列网格结构，因此无法使此类异常特征明显呈现为定位标志。
尽管使用组织芯片（TMA）具有多种优势，但其最主要的缺点之一是芯样尺寸较小，对于高度异质性的组织而言，往往不具备充分的代表性1。非阵列式多组织块保留了TMA的诸多优点，但包含更大的组织样本，或来自动物实验的完整器官。使用单个芯样的组织微阵列在不同目标蛋白上的检测结果与整张组织切片的一致性存在差异，许多情况下需要多个芯样以提高一致性7-11。由于某些生物标志物表型具有复杂性和异质性，即使使用大量芯样（&#62;10）的TMA仍可能不足，需采用微阵列以外的方法进行分析8。此外，TMA的构建过程耗时较长，技术要求高，且需要初期投入购买组织芯片仪或获得使用权限。相比之下，非阵列式多组织块可在任何基础实验室中制备，所需时间和工作量显著减少，对于需要比芯片更多组织量的研究，或为降低成本、简化分析流程的情况，是一种有效的替代方案。
非阵列式多组织块同样需要可靠的定位标记来追踪样本身份，然而这类标记的开发却十分有限。现有文献中描述的组织定位方法主要集中于单个组织样本包埋时的正确生理学方向，例如使用墨水对组织进行纹身标记12、在处理前将组织预先包埋于琼脂-明胶中13，或通过切口14或缝线15对特定组织进行标记。尽管这些方法具备一定功能，但由于存在局限性，它们并不适合作为多组织块中的标记。缝线在切片过程中会很快被切过，可能无法在每一张切片中都可见；使用琼脂-明胶的预包埋技术虽可在处理和包埋过程中保持组织的正确方向，但无法在石蜡块及切片中提供视觉提示以区分多个样本；组织上的切口或染料可能干扰分析，或遮蔽重要的形态学细节。另一种方法是通过将组织样本以非对称方式包埋来维持非阵列式多组织块中的组织身份识别，但该方法需要至少3个或更多的组织样本，且可能无法实现组织在分析时的最佳排列方式。
标本定向标签（SpOT）作为一种简便且低成本的方法，可清晰识别多组织石蜡块中的不同组织，相较于现有的定向方法具有诸多优势。SpOT 是一种微小而色彩鲜艳的核心结构，由羟乙基琼脂糖包埋处理凝胶和组织标记染料组成，并浸润有石蜡（图2C）。在多组织石蜡包埋块中，SpOT 核心被端对端地包埋于某一单个组织旁，在石蜡块及其所有切片中均呈现为一个明亮的色点（图1A-D），从而明确指示出包埋块及切片的正确方向，便于组织的快速识别。

<table><tbody><tr><td>组织包埋处理凝胶（Histogel Specimen Processing Gel）</td><td>Thermo Scientific</td><td>HG-4000-012</td><td>&lt;a href=&quot;http://www.thermoscientific.com/en/product/richard-allan-scientific-histogel-specimen-processing-gel.html&quot; target=&quot;_blank">http://www.thermoscientific.com/en/product/richard-allan-scientific-histogel-specimen-processing-gel.html&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>组织标记染料</td><td>Triangle Biomedical Sciences, Inc.</td><td>TMD-5</td><td>任何组织标记染料均可能足够使用。</td></tr><tr><td>Arraymold 2 mm 套件 A（60 芯）</td><td>Arraymold</td><td>20015A</td><td>任何手动组织芯片仪均可实现类似功能。</td></tr></tbody></table>

每次都能在多组织块中精准定位正确组织

SpOT the Correct Tissue Every Time in Multi-tissue Blocks

多组织石蜡包埋块可实现高通量分析，提高实验效率，增强实验一致性，并减少时间和成本。组织芯片构成了多组织石蜡包埋块的主体，但越来越多的研究人员开始使用非阵列式包埋块，其中包含来自多个个体的较大组织样本，这类包埋块可在无需大量投入规划和设备的情况下，提供与组织芯片相似的诸多优势。任何多组织分析的关键环节在于用于识别每一份独立组织的定位方法。尽管已有若干方法可用于维持多组织包埋块中各组织的正确方位和识别，但大多数方法并不适用于非阵列式包埋块，可能占用阵列中的宝贵空间，和/或在常规组织学实验室中难以制备。标本定位标签（Specimen Orientation Tag, SpOT）是一种简单、低成本的定位工具，在石蜡包埋块及所有组织切片中均清晰可见，可为阵列式和非阵列式布局中的标本提供可靠的识别。SpOT 在非阵列式包埋块的应用中优于现有定位方法，因其无需对组织本身进行任何直接改造，且允许组织片段排列方式具有更高的灵活性。

SpOT 在石蜡包埋块中呈现为一个圆形、颜色鲜艳的圆点（图1A 和 2D），在所有石蜡切片中均可见，并且在经过 H&amp;E 或免疫组化染色过程后仍保留在玻片上（图1B–1D 和 2D）。这一明显的视觉标记有助于组织技术员和研究人员识别每一块独立的组织样本，并简化沟通：技术员可利用该视觉标记向在显微镜下观察玻片并收集数据的研究人员说明组织样本的排列方式。提供给研究人员的玻片应附带组织方位示意图，并详细解释，以确保显微分析过程中无任何混淆。图2A 显示了固化后的有色琼脂糖凝胶块切片的结果。图2B 显示了将切好的琼脂糖凝胶块包埋于石蜡块中的结果。图2C 显示了使用皮肤打孔器制备 SpOT 核心的结果。
<img alt="组织样本制备方法：组...

标本定位标签（SpOT）的用途是作为定位工具，以辅助在多组织石蜡包埋块中进行单个组织的识别。这些方案展示了如何使用常见且低成本的组织学材料轻松构建该标签，并证明其在石蜡包埋块及切片中可作为可靠的可视标记物。

多组织石蜡包埋块可实现高通量分析，提高实验效率、增强实验一致性，并减少时间和成本。组织……

本实验的总体目标是构建一种工具，以辅助在多组织石蜡包埋块中进行组织识别。该目标首先通过将HistoGel与组织标记染料混合，形成颜色鲜艳的凝胶块来实现。第二步是按照标准的组织处理和包埋技术，对染色的HistoGel凝胶块进行处理和包埋。接下来，使用活检打孔器移除这些小圆柱体。这些是标本定位标签或点样。最后一步是将点样包埋于多组织块中，并准确记录点样的位置及每个样本的位置，以便于后续参考。最终，该标记点为组织芯片和多组织块中的样本定位与鉴定提供了清晰的视觉提示。与现有的缝合标记或不对称核心标记等方法相比，该技术的主要优势在于标记点不会改变组织本身，并且允许样本排列具有灵活性，从而实现最佳分析效果。我们最初产生这一方法的想法，源于研究人员提出的需求：希望将来自多只动物的组织样本整合到同一个石蜡包埋块中，以节省成本并简化分析流程。制备标记点时，首先在15毫升锥形管中加入50毫克生化级BSA和1毫升组织标记染料。将混合物涡旋振荡至少一分钟，直至完全溶解。随后，将9毫升羟乙基丙烯酸酯加工凝胶加入15毫升锥形管中，并在微波炉中以30%的功率加热。以每10秒为间隔脉冲加热，直至凝胶完全融化。现在将融化的处理胶与染料BSA溶液合并至一个15毫升的锥形管中，并用移液器充分混匀。然后涡旋振荡该溶液，转移至冰箱中静置数小时以使其凝固。待完全凝固后，用窄 spatula 轻轻释放，取出凝胶中的固体稀释物。将组织块切成5毫米厚的切片，不要使用两端的圆形部分。取3至6个切片转移至组织学包埋盒中，并浸入70%乙醇中，每2至4小时更换一次70%乙醇溶液，在24小时内至少更换三次，直至组织块完全脱水。它们会将部分标记染料渗入乙醇溶液中。最初更换新鲜乙醇有助于冲洗掉多余的染料，从而获得更干净的包埋块，减少染料渗出。接下来，将包埋盒转移至80%乙醇中，然后转移至95%乙醇中，每次浸泡一小时。染料可能从凝胶塞中渗出，从而影响其他组织以及自动组织处理机中的液体试剂。因此，强烈建议采用手动脱水。然而，自动处理同样有效。用100%乙醇进行三次洗涤，每次一小时，完成脱水。将样品浸入芳香烃或二甲苯中，每次一小时，重复三次，以清除样品。现在用三个一小时的浸润步骤对切片进行渗透。在融化的石蜡中，将处理好的组织切片按常规包埋。当包埋块冷却至室温后，使用皮肤穿刺针制作点状芯。一个包埋块可制备22个直径2毫米的芯，甚至可制备更多直径1.5毫米的芯。首先绘制一张示意图，标明所有待共同包埋的组织块的预期位置和身份，以及定位点的位置。准备一份副本以备随时查阅。正确使用标本定位标签需要一张清晰且易于遵循的生物标本图，准确标注所有生物标本的位置及其相对于定位点的方向。 处理完组织块后，将其放置在包埋台上。根据组织方向示意图，正确的方向至关重要。同时必须确保点样核心的高度超过将要包埋在蜡块中的所有组织块。完成组织排列后，包埋组织点。用镊子将每个组织点保持直立，直至石蜡完全凝固，以防倾倒。一到两分钟即可足够。对于手动TMA试剂盒，将熔化的石蜡倒入TMA模具中。在模具冷却过程中，以类似方式在阵列边缘固定点样位置。随后切片，并用该点样进行染色。采用标准方法制备5微米厚的切片。将切片置于40摄氏度的水浴中漂浮，然后转移至带正电荷的玻璃载玻片上。切片附着于载玻片后，在60摄氏度下干燥至少20分钟。现在可以手动或使用自动染色系统对载玻片进行染色。对于常规的苏木精和伊红染色、特殊染色或免疫组织化学染色，染色结果在石蜡包埋块及所有石蜡切片中均呈现为圆形且颜色鲜明的区域。点样标记有助于在包含来自不同个体和处理组的外观相似组织的多组织块中进行准确定位和组织识别。在组织中使用微阵列点样标记时，可确保每个核心都用于珍贵的组织样本，且可轻松识别出紧邻组织微阵列核心的标记点。在执行该操作时，必须牢记对生物样本及其在组织块中位置的准确、清晰记录，是其成功应用的关键。观看本视频后，您应能够充分了解如何轻松制作并使用标本定位标签，作为多组织石蜡包埋块中的组织识别辅助工具。

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科研

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生物学

现货正确的组织多组织块每一次

组织芯片提供了一种高效的方法，可同时获取大量组织的并行信息。将代表性组织区域组装到一个石蜡块中，从该石蜡块切片后用于免疫组织化学染色及蛋白质表达模式分析。通过数字扫描生成相应的图像，用于数据的分发与共享。...

人类蛋白质图谱中组织微阵列的制备、免疫组织化学染色及数字化

复杂的组织团块，从器官到肿瘤，均由多种细胞成分构成。我们利用多重荧光标记的转基因小鼠，结合多参数免疫荧光染色及光谱解混技术，解析了组织内不同细胞表型的贡献，从而根据蛋白质表达情况确定细胞来源及其特性。...

荧光组织移植后用于可视化细胞来源、类型及相互作用的定量多光谱分析

我们提出了一种用于三维（3D）组织学体积重建的图像配准方法，该方法有助于在由细胞构成的宏观结构水平上研究器官的变化。利用该方法，我们研究了野生型与Igfbp7基因敲除型乳腺组织之间的三维结构差异。...

三维组织学图像体积重建及其在小鼠乳腺研究中的应用

本方案旨在优化组织微阵列的构建与质量，以用于生物标志物研究。内容涵盖规划与设计、数字病理学、虚拟切片标注以及自动化组织阵列化等方面。...

一种用于生物标志物研究的下一代组织微阵列（ngTMA）实验方案

免疫组织化学是一种用于评估组织内蛋白质定位和表达的强有力实验技术。目前用于定量的半自动化方法往往引入主观性，并常导致结果不可重复。本文中，我们描述了多重免疫组织化学的方法，以及利用多光谱成像对蛋白质表达和共定位进行客观定量的技术。...

使用多重免疫组织化学染色与多光谱成像定量蛋白质表达及共定位

本文展示了在生物样本库项目中，为猪动物模型生成代表性组织样本的各种方法的实际应用与性能，这些方法适用于广泛的下游分析，包括体积测定、系统性随机取样，以及针对定性和定量形态学与分子分析类型的组织样本差异处理。...

生物银行中猪类 biomedical 模型组织样本的采样策略与处理方法

本文介绍一种简单且易于实施的策略，用于对福尔马林固定石蜡包埋的肿瘤组织切片中的免疫细胞进行可视化、定量和定位分析。该方法结合了现有的成像技术和数字分析手段，旨在拓展成像检测的多重检测能力和多参数分析水平。...

肿瘤微环境中免疫细胞群体的可视化、定量与定位分析

我们描述了利用离体成像系统评估穿膜肽转导效率的实验方案，并以心脏靶向肽为例，后续结合石蜡包埋、切片及共聚焦荧光显微镜进行分析。在本方案中，单个实验动物可用于对相同器官进行两种类型的成像评估，从而将研究所需的动物数量减少一半。...

体内成像评估心脏靶向肽的转导效率

本文介绍了一种用于生成、药物处理及分析患者来源的离体组织的方法，以在活体、与患者相关且具有临床前意义的模型系统中评估肿瘤对药物的反应。...

源自患者的肿瘤外植体作为预测患者药物耐药性的“活体”临床前平台

本方案概述了使用不同深度的福尔马林固定石蜡包埋供体组织块，通过胶带法手动构建组织微阵列的方法。...

使用胶带法和手持式微阵列仪手动构建组织微阵列

学习使用HistoGel和组织标记染料制作标本定向标签SpOT，用于多组织石蜡块中的组织识别。该方法成本低、操作简单，可提高组织学研究中样本定位的准确性。

每次都能在多组织块中精准定位正确组织

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