2015年10月26日
我们描述了一种在水相环境中改性支架表面细胞亲和力的方案。该方法利用二氧化钛的光催化作用,分解光照区域的有机薄膜。我们证明,该方法可用于在体外(ex situ)和原位(in situ)构建支架蛋白的微区结构。
以下实验的总体目标是利用二氧化钛的光催化活性,对细胞培养支架进行表面改性。该过程首先在玻璃盖玻片上沉积一层薄薄的二氧化钛,然后用八甲基环四硅氧烷(Octa dessaline)进行涂层,从而使整个表面具有疏水性。第二步,将基底浸入含有血清白蛋白的细胞培养基中,以封闭表面。
白蛋白吸附到表面,使表面不能支持细胞黏附。接着,将样品转移至含有胶原蛋白的水溶液中,并使用聚焦的紫外光照射该表面。这使得胶原蛋白分子选择性地吸附到被紫外光照射的区域,从而使该区域能够支持细胞黏附。
该过程可重复进行,以实现多种蛋白质或细胞类型的图案化。本视频中,我们展示了如何通过紫外光照射选择性地修饰 PC 12 细胞的黏附区域。当我们意识到二氧化钛光催化已作为自清洁玻璃窗的商业应用,可在光照下分解表面有机污染物时,便提出了该方法的设想,该实验将由我实验室的一名研究生共同负责。
首先使用金刚石刻写笔对盖玻片进行编号,编号方式应有助于确保样本的正确面朝上。然后先用流动的双蒸水冲洗盖玻片进行初步清洁,再将其浸入piranha溶液中10分钟。10分钟后,用双蒸水冲洗盖玻片八次,并在氮气流下吹干。
接下来,将二氧化钛靶材装入射频溅射系统中,然后使用聚酰亚胺胶带将洁净的盖玻片固定在样品托上,将样品托放入溅射腔室,并对腔室抽真空,直至压力降至 2.0 × 10⁻⁴ 帕斯卡。随后向腔室内通入氩气,并在保持快门关闭的情况下,将沉积压力设定为 4.0 mTorr。逐步将射频功率升高至 70 瓦。
然后打开快门,溅射15分钟,以获得厚度为120至150纳米的薄膜。首先,将玻璃烧杯和镊子放入烘箱中,在120摄氏度下干燥30分钟。接着,将盖玻片放入等离子体反应器中,以100标准毫升/分钟的氧气流速,在200瓦功率下用氧气等离子体处理二氧化钛表面5分钟,以形成更具亲水性的表面。
然后取出样品,浸入双蒸水中,以确认表面具有超亲水性,并在氮气流下将表面彻底干燥。接着,将样品、干燥的烧杯和镊子放入充满氮气的手套袋中,配制浓度为一毫摩尔的八氯三氯乙烯甲苯溶液。将样品在室温下浸入该溶液中一小时,以在二氧化钛表面形成自组装单分子层。
然后依次用甲苯、丙酮、乙醇对样品进行洗涤,以去除任何相位分子,每种溶剂各处理五分钟。最后用新鲜的重蒸水处理五分钟。随后将样品在新鲜的重蒸水中清洗四次,并在氮气流下干燥样品表面。
将包被的盖玻片浸入70%乙醇中5分钟以进行灭菌。随后用无菌的双蒸水冲洗样品两次。接着,将样品放入35毫米培养皿中,并加入2毫升PC 12生长培养基。
在37摄氏度、CO2缓冲培养箱中孵育样品至少三小时,期间培养基中的血清白蛋白会吸附到盖玻片表面。等待过程中,设置倒置荧光显微镜:首先打开弧光灯,然后插入紫外滤光立方体,并将物镜旋转至20倍放大倍数。
使用紫外强度计测量光强度,并计算达到200焦耳/平方厘米剂量所需的照射时间。接着,使用镜台测微尺,通过调节视场光阑将待照射区域的直径设定为200微米。在3小时孵育后,向覆盖盖玻片的培养基中补充200微升浓度为3.0毫克/毫升的IV型胶原蛋白。
然后将35毫米培养皿转移至显微镜载物台上,利用划痕标记将显微镜聚焦到样品表面。用200焦耳/平方厘米的剂量对盖玻片区域进行紫外光照射。随后更换培养基,加入2毫升含神经生长因子(NGF)但不含IV型胶原的新鲜生长培养基,并将样品重新放回培养箱中。
在15毫升锥形管中收集培养的NGF诱导分化的PC 12细胞,于150 × g离心4分钟。随后吸除上清液,加入1毫升生长培养基。使用血细胞计数板,通过轻柔吹打将细胞重悬。
计数细胞密度,并将 3.0 × 10⁵ 个细胞加入含有经修饰盖玻片的 35 毫米培养皿中。在 XC 两种修饰表面培养一至两天后,将培养皿置于 37 °C、5% CO₂ 培养箱中继续孵育一至两天。使用显微镜确认细胞仅在盖玻片的紫外光照射区域贴壁并生长。
然后向培养细胞的培养皿中加入67 µL的IV型胶原蛋白,使胶原蛋白的终浓度为100 µg/mL,并设置显微镜用于表面图案化。将培养皿置于显微镜载物台上,将照射区域定位在当前细胞位置附近。以200 J/cm²的剂量用紫外光照射盖玻片。
照射后,更换为不含胶原的培养基,并将样品放回培养箱中,尽量在30分钟内完成单个样品的处理。这是一张溅射沉积二氧化钛薄膜的横截面扫描电子显微镜图像。根据观察,该薄膜的厚度估计约为150纳米。
此处还可观察到所沉积的二氧化钛薄膜具有良好的平整性。通过原子力显微镜进一步分析表明,表面的均方根粗糙度仅为 0.2 纳米。IV 型胶原蛋白溶液会优先吸附至经紫外光照射的区域,在该区域,白蛋白已被激光移除。
为了展示该方法的多功能性,其他蛋白质(如纤维蛋白)也已采用相同技术实现了图案化。此处细胞生长在盖玻片上经 XC 二重图案化处理的区域,紧邻虚线所界定的区域。该盖玻片最近在原位接受了两次紫外照射,并包被了 IV 型胶原蛋白。
在接下来的五天内,细胞增殖并迁移以覆盖新编码的区域。本文介绍的方法可用于在培养条件下任意操控细胞,并有望用于排列多种类型的细胞,构建复杂的共培养系统。
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本文介绍了一种利用二氧化钛光催化作用来改性支架表面细胞亲和力的实验方案。该方法能够形成用于支架蛋白的微区结构,从而实现细胞的选择性黏附。
该方法利用光催化激活,可在生物材料表面实现蛋白质图案的精确空间控制,有助于构建用于细胞实验的明确定义的微环境。通过允许细胞在照射区域选择性黏附,该方法可在生理条件下促进可重复的共培养体系构建以及亚细胞水平的操作。该策略提供了一个可调节的平台,以空间分辨的方式研究细胞-基质相互作用及表型响应,从而提高早期发现研究中的预测可靠性。
该技术适用于从靶点验证到先导化合物优化的整个发现工作流程,尤其适用于需要可控细胞微环境的检测。通过实现细胞相对于生化信号的精确定位,该技术在表型筛选与机制后续研究之间架起了桥梁。