Name: 光图案蛋白质和细胞中的水环境中使用二氧化钛 2光催化 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 26 s
Description: 了解利用二氧化钛光催化技术修饰细胞培养支架表面的方法，通过紫外光照射选择性吸附胶原蛋白，创建微结构域以控制细胞黏附。该技术适用于体外和原位环境，可广泛应用于组织工程领域。

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作者感谢大久保幸太郎先生在扫描电镜成像方面提供的帮助。本工作得到了日本科学促进会基础研究（B）项目（20310069）、研究活动启动项目（25880021）以及久保纪念日立科学技术振兴财团和日本板硝子材料科学与工程财团研究基金的资助。

1. 二氧化钛（TiO2）包被玻璃盖玻片的制备
<ol>
	<li>使用金刚石刻刀对盖玻片进行编号。这不仅有助于追踪每一片盖玻片，还能确保样本的正确面朝上。先用流动的ddH₂O清洗盖玻片，2O，然后将它们浸入piranha溶液（H2SO4：H2O2 = 4:1）。10 分钟后，用 ddH₂O 将盖玻片彻底冲洗 8 次。2O. 在氮气下干燥盖玻片2 流</li>
	<li>设置 TiO2 射频（RF）溅射系统中的靶材。使用聚酰亚胺胶带将盖玻片固定在溅射设备的样品台上。将样品台放入溅射腔室。抽真空至腔室内压力达到2.0×10⁻⁶ Pa-4 Pa</li>
	<li>向腔室中通入Ar气，并将沉积压力设定为4.0 mTorr。在保持快门关闭的情况下，逐步将射频功率升高至70 W。</li>
	<li>打开快门，溅射15分钟，以获得厚度为120–150 nm的薄膜（图1：步骤A）每台设备均需测定薄膜的生长速率。</li>
</ol>
2. 使用抗细胞黏附薄膜进行表面包被
<ol>
	<li>使用 O2 等离子体处理样品，以亲水化 TiO2 表面，具体操作请遵循等离子体反应仪制造商提供的说明。我们采用 200 W 功率处理 5 分钟，O2 流速为 100 sccm。将样品浸入 ddH2O 中，确认表面呈超亲水性。随后在 N2 气流下彻底干燥表面。</li>
	<li>通过将 39.6 μl 正十八烷基三氯硅烷（OTS）加入 100 ml 甲苯中，配制 1 mM OTS 溶液。将样品浸入该溶液中，在室温下反应 1 小时。此步骤需在充满 N2 的手套袋内进行（图 1：步骤 B）。</li>
	<li>为去除物理吸附的分子，依次在甲苯、丙酮、乙醇和 ddH2O 中对样品进行超声处理，每种溶剂各 5 分钟。随后用新鲜 ddH2O 漂洗样品四次，并在 N2 气流下干燥表面。处理后的表面应呈疏水性，接触角为 100–110°。</li>
</ol>
3. Ex-Situ 表面图案化
<ol>
	<li>在超净工作台中，使用金刚石刻划笔在表面划出几道划痕。这些划痕有助于标记已处理区域，并辅助显微镜聚焦。对OTS修饰的TiO₂进行灭菌2 用70%乙醇浸泡样品5分钟进行消毒，然后用无菌ddH₂O将样品冲洗两次2O.</li>
	<li>将样品置于35 mm培养皿中，加入2 ml PC12生长培养基（见步骤4.2）。在CO₂培养箱中孵育超过3小时。2 培养箱（37 °C）。该步骤旨在使血清白蛋白吸附至表面。吸附的白蛋白可抑制其他蛋白质和细胞的进一步吸附（图1步骤 C）。</li>
	<li>等待期间，设置倒置荧光显微镜。
	<ol>
		<li>打开弧光灯，插入紫外滤光片组，将物镜调至20倍。</li>
		<li>测量光强度 I （W cm-2使用紫外强度计测量，并计算照射时间 t （单位：秒）对应某一剂量的 d （每平方厘米焦耳，J/cm²）-2作为： t = d/I. 
		例如，以 200 J cm 的剂量进行照射-2 使用600 mW cm的光源-2，需要照射333秒。</li>
		<li>使用载物台测微尺并关闭视场光阑，以设定待照射区域的大小。 例如, 200 μm.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>孵育3小时后，向培养基中补充 200 μl 3.0 mg/ml-1 IV型胶原蛋白（Col-IV；终浓度 300 μg ml-1).</li>
	<li>将35 mm培养皿转移至显微镜载物台。找到划痕标记，调节显微镜聚焦至样品表面，并以200 J/cm²的剂量照射紫外光。-2 (图1：步骤 D）。可通过调节视场光阑的开口大小，或用任意几何形状的金属掩膜替换视场光阑，来改变紫外光照射区域。</li>
	<li>更换为新鲜的生长培养基（不含Col-IV），并将样品放回培养箱中。</li>
</ol>
4. 细胞培养
<ol>
	<li>PC12 细胞的常规培养在胶原蛋白包被的塑料培养皿中进行。
	<ol>
		<li>用 ddH₂O 润湿 60-mm 组织培养皿表面后，加入 Col-IV 进行包被2O，并吸除所有ddH₂O2O.</li>
		<li>准备 300 μg ml-1 通过将原始溶液（3 mg/ml）稀释来制备 Col-IV-1) 用ddH₂O稀释10倍2O.</li>
		<li>添加 200 μl 的 300 μg ml-1 每60 mm培养皿使用Col-IV。让溶液充分覆盖表面。</li>
		<li>在超净工作台中干燥培养皿约1小时。</li>
		<li>用 4 ml 的杜尔贝科磷酸盐缓冲液（D-PBS）冲洗表面两次。若不立即使用包被的培养皿，请用 4 ml 的去离子水（ddH₂O）冲洗一次。2O. 吸去 ddH₂O 后2将培养皿存放在培养箱中。请尽量不要存放超过两周。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>PC12 细胞在以下培养基中培养：DMEM（低糖型） + 10% 胎牛血清 + 5% 马血清 + 1% 青霉素-链霉素溶液。将细胞置于含 5% CO₂ 的培养箱中，在 37°C 下孵育。2 培养箱（37 °C，5% CO₂2），每隔一天更换一半培养基。细胞在达到汇合前进行传代。
	<ol>
		<li>吸除培养基，加入 2 ml PBS+ (D-PBS + 10 mg/ml 胰岛素)-1 牛血清白蛋白（BSA）+ 10 mM EDTA）预热至 37 °C孵育5分钟于 37 °C轻轻敲击培养皿，使所有细胞脱落。</li>
		<li>收集细胞至15 ml锥形管中。用3 ml预热至室温的新鲜D-PBS冲洗培养皿， 37 °C.</li>
		<li>将试管在150 × g条件下离心4分钟。</li>
		<li>吸除上清液，加入1 ml培养基。</li>
		<li>常规培养时，以1:3至1:5的比例传代细胞。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将细胞接种至经紫外光修饰的OTS/TiO表面2 样品，计数细胞密度并加入 3.0×105 35 mm 培养皿中的细胞（图1：步骤 E）。将培养皿置于湿润的培养箱中孵育（37 °C，5% CO₂2）1-2 天。可用于图案化实验的细胞包括未分化的和经神经生长因子（NGF）分化的 PC12 细胞。对于 NGF 分化，使用 100 ng/ml-1 在将细胞接种到样品上之前数天，向生长培养基中添加7S-NGF。NGF诱导的分化似乎可增强PC12细胞的黏附性，使操作更为简便，尤其是在 原位 图案化实验。</li>
</ol>
5. 原位 表面图案化
<ol>
	<li>培养1-2天后 原位之外 修饰表面后，确认细胞仅在紫外光照射区域贴附和生长。按照步骤3.4所述设置显微镜。</li>
	<li>将样品转移至含有培养基和100 ng/ml-1 NGF（若使用NGF诱导分化的细胞）以及 100 μg 毫升-1 Col-IV</li>
	<li>将培养皿置于显微镜载物台上，找到合适位置，以200 J/cm²的剂量照射紫外光。-2 (图1：步骤 F、G）。新创建的许可区域用星号标示在 图1步骤 G。</li>
	<li>尽量在30分钟内完成单个样本的处理。照射后，将样本转移回不含Col-IV的培养基中。</li>
	<li>在转移培养细胞的培养皿以及将样品从一个培养皿转移到另一个培养皿时，需格外小心，以防止图案化细胞脱落。</li>
</ol>
<img alt="紫外光诱导蛋白质结合示意图；TiO2玻璃、OTS自组装单分子层、白蛋白、胶原蛋白、PC12细胞过程。" src="/files/ftp_upload/53045/53045fig1highres.jpg" width="700" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1"> 
图1. 整体过程的示意图。 详见正文。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53045/53045fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>

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</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

在本实验方案中，TiO2 薄膜通过射频磁控溅射法形成。我们倾向于使用这种沉积方法，因为它能够重复性地制备出表面粗糙度在亚纳米级别的光催化 TiO2 薄膜。尽管溅射沉积技术在材料科学家和电子工程师中较为常见，但对生物学家而言可能较难获得。在此情况下，旋涂法制备的 TiO2 薄膜可作为替代方案23。该方法利用离心力将溶解于溶剂中的 TiO2 纳米颗粒均匀铺展在基底表面。所需特殊设备为旋涂仪，其成本远低于溅射系统。我们曾自行使用旋涂法制备的 TiO2 纳米颗粒薄膜，并已证实该薄膜同样可用于开展类似实验（数据未显示）。旋涂法制备的 TiO2 薄膜表面相对粗糙，均方根粗糙度达数十纳米，且在需要多次旋涂以获得较厚薄膜时，要实现基底上均匀且可重复的涂层需一定操作经验。然而，该方法可能是生物学家的首选方案。
迄今为止，我们已将该方法用于不仅对PC12细胞进行图案化，还对人胰腺癌细胞系AsPC-1以及从胚胎大鼠海马组织中分离的原代神经元进行图案化<...

半导体光刻工艺及其衍生技术——例如光刻1,2、电子束光刻3-6和微接触印刷7-10——现已成为细胞生物学中一种成熟的技术，可用于在特定位置和几何形状下培养活细胞。该图案化方法依赖于微加工基底，其结构为在非允许细胞附着的背景上形成允许细胞附着的微小区域涂层。此类基底可作为细胞图案化的模板。这些技术为我们提供了在单细胞和多细胞水平上调控细胞及其功能的新方法，有助于揭示细胞的内在特性，并提高基于细胞的药物筛选通量11。
如果能够改变模板图案的几何形状，细胞图案化的自由度将大大增加 原位, 即，而细胞则在表面培养。传统的图案形成方法无法直接应用于这种情况，因为这些方法是在大气或真空条件下处理样品的。因此，已提出多种基于不同原理的新型表面改性技术， 例如，关于光反应性化合物12,13 或激光消融5,14，仅举几例而已。Robertus 已对这些提出的方法进行了很好的综述 等15，以及最近由 Choi 等16 以及由 Nakanishi17.
本文中，我们介绍一种新的实验方案 原位 表面修饰，利用二氧化钛（TiO₂）表面有机分子的光催化分解2表面18,19. 在该方法中，使用 TiO2 在玻璃基板与细胞接触的有机薄膜之间插入一层薄膜，并使有机薄膜分解 原位 通过将紫外光（UV）局部照射至目标区域（λ &#60; 388 nm）。我们证明，新方案可用于创建细胞外基质蛋白和活细胞的微米级图案 离体 和 原位. TiO2 具有生物相容性、化学稳定性和光学透明性，这些特性使其易于引入细胞培养实验中。本方案提供了一种基于材料科学的方法，用于在细胞培养环境中对细胞培养支架进行改性。

<table><tbody><tr><td>玻璃盖玻片</td><td>Warner Instruments</td><td>CS-15R15</td><td>直径 15 mm，#1.5 厚度</td></tr><tr><td>金刚石刻划笔</td><td>Ogura Jewel Industry</td><td>D-Point Pen</td><td></td></tr><tr><td>射频溅射系统</td><td>ANELVA</td><td>SPC350</td><td></td></tr><tr><td>TiO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; 溅射靶材</td><td>Kojundo Chemical Lab</td><td>Titanium (IV) oxide, target</td><td>纯度 99.9%</td></tr><tr><td>等离子体反应器</td><td>Yamato</td><td>PR301</td><td></td></tr><tr><td>正十八烷基三氯硅烷（OTS）</td><td>Aldrich</td><td>104817</td><td></td></tr><tr><td>甲苯</td><td>Wako</td><td>204-01866</td><td></td></tr><tr><td>组织培养皿（35&amp;#160;mm）</td><td>Greiner</td><td>627160</td><td></td></tr><tr><td>组织培养皿（60&amp;#160;mm）</td><td>BD Falcon</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>IV型胶原蛋白</td><td>Nitta Gelatin</td><td>Cellmatrix Type IV</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>杜尔贝科改良伊格尔培养基（DMEM）</td><td>Gibco</td><td>11885-084</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>Gibco</td><td>12483-020</td><td>使用前需热灭活并通过 0.22&amp;#160;&amp;#956;m 滤膜过滤</td></tr><tr><td>马血清</td><td>Gibco</td><td>26050-088</td><td>使用前通过 0.22&amp;#160;&amp;#956;m 滤膜过滤</td></tr><tr><td>青霉素-链霉素（100倍浓缩液）</td><td>Nacalai tesque</td><td>26253-84</td><td></td></tr><tr><td>7S 神经生长因子（NGF）</td><td>Alomone Labs</td><td>N-130</td><td></td></tr><tr><td>牛血清白蛋白（BSA）</td><td>Sigma</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Dojindo</td><td>N001</td><td>0.5 M 储存液</td></tr><tr><td>TiO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; 纳米颗粒</td><td>Tayca</td><td>TKD-701</td><td></td></tr></tbody></table>

使用 tio2 光催化在水相环境中对蛋白质和细胞进行光图案化

Photopatterning Proteins and Cells in Aqueous Environment Using TiO2 Photocatalysis

吸附在二氧化钛（TiO₂）表面的有机污染物2) 可在紫外光（UV）照射下通过光催化作用分解。本文介绍了一种采用 TiO₂ 的新型实验方案2 利用光催化局部改变基底表面的细胞亲和性。本实验中，使用一层薄的 TiO2 薄膜通过溅射镀膜法涂覆在玻璃盖玻片上，且TiO2 表面随后用源自十八烷基三氯硅烷（OTS）的有机硅烷单层进行修饰，该修饰可抑制细胞黏附。将样品浸入细胞培养基中，并对八角形区域照射聚焦紫外光。当将神经细胞系PC12细胞接种至样品表面时，细胞仅黏附于紫外光照射区域。我们进一步证明，该表面修饰方法也可实现 原位, 即即使细胞正在基质上生长，该方法也能实现适当的表面修饰，但需要在紫外照射时培养基中含有细胞外基质蛋白胶原蛋白。本文介绍的技术有望用于多种细胞类型的图案化，以构建共培养系统，或在培养过程中任意操控细胞。

图2A展示了溅射沉积的TiO2薄膜的横截面扫描电子显微镜（SEM）图像。根据观察，该薄膜的厚度约为150 nm。值得注意的是所沉积TiO2薄膜的平整性。进一步通过原子力显微镜（AFM）分析表明，表面的均方根（rms）粗糙度为0.2 nm（图2B）。
当TiO2表面经OTS修饰后浸入含血清的培养基中时，血清白蛋白会吸附到OTS表面，从而抑制后续的蛋白质吸附和细胞黏附18,20。随后，当对表面照射聚焦紫外光时，TiO2表面会产生活性氧（ROS）21，这些活性氧会分解TiO2表面的OTS自组装单分子层（SAM），并将其连同吸附的白蛋白一起从表面去除。这一过程使受照射区域变为亲水性，并允许蛋白质吸附。ROS可能同时直接作用于白蛋白，但由于OTS SAM位于白蛋白与TiO2之间，因此OTS的分解应为主要反应。在本实验方案中，照射过程中在培养基中添加了细...

我们描述了一种在水相环境中改性支架表面细胞亲和力的方案。该方法利用二氧化钛的光催化作用，分解光照区域的有机薄膜。我们证明，该方法可用于在体外（ex situ）和原位（in situ）构建支架蛋白的微区结构。

使用 TiO2 光催化在水相环境中对蛋白质和细胞进行光图案化

吸附在二氧化钛（TiO2）表面的有机污染物可在紫外光（UV）照射下通过光催化作用降解。本文描述了……

以下实验的总体目标是利用二氧化钛的光催化活性，对细胞培养支架进行表面改性。该过程首先在玻璃盖玻片上沉积一层薄薄的二氧化钛，然后用八甲基环四硅氧烷（Octa dessaline）进行涂层，从而使整个表面具有疏水性。第二步，将基底浸入含有血清白蛋白的细胞培养基中，以封闭表面。白蛋白吸附到表面，使表面不能支持细胞黏附。接着，将样品转移至含有胶原蛋白的水溶液中，并使用聚焦的紫外光照射该表面。这使得胶原蛋白分子选择性地吸附到被紫外光照射的区域，从而使该区域能够支持细胞黏附。该过程可重复进行，以实现多种蛋白质或细胞类型的图案化。本视频中，我们展示了如何通过紫外光照射选择性地修饰 PC 12 细胞的黏附区域。当我们意识到二氧化钛光催化已作为自清洁玻璃窗的商业应用，可在光照下分解表面有机污染物时，便提出了该方法的设想，该实验将由我实验室的一名研究生共同负责。首先使用金刚石刻写笔对盖玻片进行编号，编号方式应有助于确保样本的正确面朝上。然后先用流动的双蒸水冲洗盖玻片进行初步清洁，再将其浸入piranha溶液中10分钟。10分钟后，用双蒸水冲洗盖玻片八次，并在氮气流下吹干。接下来，将二氧化钛靶材装入射频溅射系统中，然后使用聚酰亚胺胶带将洁净的盖玻片固定在样品托上，将样品托放入溅射腔室，并对腔室抽真空，直至压力降至 2.0 × 10⁻⁴ 帕斯卡。随后向腔室内通入氩气，并在保持快门关闭的情况下，将沉积压力设定为 4.0 mTorr。逐步将射频功率升高至 70 瓦。然后打开快门，溅射15分钟，以获得厚度为120至150纳米的薄膜。首先，将玻璃烧杯和镊子放入烘箱中，在120摄氏度下干燥30分钟。接着，将盖玻片放入等离子体反应器中，以100标准毫升/分钟的氧气流速，在200瓦功率下用氧气等离子体处理二氧化钛表面5分钟，以形成更具亲水性的表面。然后取出样品，浸入双蒸水中，以确认表面具有超亲水性，并在氮气流下将表面彻底干燥。接着，将样品、干燥的烧杯和镊子放入充满氮气的手套袋中，配制浓度为一毫摩尔的八氯三氯乙烯甲苯溶液。将样品在室温下浸入该溶液中一小时，以在二氧化钛表面形成自组装单分子层。然后依次用甲苯、丙酮、乙醇对样品进行洗涤，以去除任何相位分子，每种溶剂各处理五分钟。最后用新鲜的重蒸水处理五分钟。随后将样品在新鲜的重蒸水中清洗四次，并在氮气流下干燥样品表面。将包被的盖玻片浸入70%乙醇中5分钟以进行灭菌。随后用无菌的双蒸水冲洗样品两次。接着，将样品放入35毫米培养皿中，并加入2毫升PC 12生长培养基。在37摄氏度、CO2缓冲培养箱中孵育样品至少三小时，期间培养基中的血清白蛋白会吸附到盖玻片表面。等待过程中，设置倒置荧光显微镜：首先打开弧光灯，然后插入紫外滤光立方体，并将物镜旋转至20倍放大倍数。使用紫外强度计测量光强度，并计算达到200焦耳/平方厘米剂量所需的照射时间。接着，使用镜台测微尺，通过调节视场光阑将待照射区域的直径设定为200微米。在3小时孵育后，向覆盖盖玻片的培养基中补充200微升浓度为3.0毫克/毫升的IV型胶原蛋白。然后将35毫米培养皿转移至显微镜载物台上，利用划痕标记将显微镜聚焦到样品表面。用200焦耳/平方厘米的剂量对盖玻片区域进行紫外光照射。随后更换培养基，加入2毫升含神经生长因子（NGF）但不含IV型胶原的新鲜生长培养基，并将样品重新放回培养箱中。在15毫升锥形管中收集培养的NGF诱导分化的PC 12细胞，于150 × g离心4分钟。随后吸除上清液，加入1毫升生长培养基。使用血细胞计数板，通过轻柔吹打将细胞重悬。计数细胞密度，并将 3.0 × 10⁵ 个细胞加入含有经修饰盖玻片的 35 毫米培养皿中。在 XC 两种修饰表面培养一至两天后，将培养皿置于 37 °C、5% CO₂ 培养箱中继续孵育一至两天。使用显微镜确认细胞仅在盖玻片的紫外光照射区域贴壁并生长。然后向培养细胞的培养皿中加入67 µL的IV型胶原蛋白，使胶原蛋白的终浓度为100 µg/mL，并设置显微镜用于表面图案化。将培养皿置于显微镜载物台上，将照射区域定位在当前细胞位置附近。以200 J/cm²的剂量用紫外光照射盖玻片。照射后，更换为不含胶原的培养基，并将样品放回培养箱中，尽量在30分钟内完成单个样品的处理。这是一张溅射沉积二氧化钛薄膜的横截面扫描电子显微镜图像。根据观察，该薄膜的厚度估计约为150纳米。此处还可观察到所沉积的二氧化钛薄膜具有良好的平整性。通过原子力显微镜进一步分析表明，表面的均方根粗糙度仅为 0.2 纳米。IV 型胶原蛋白溶液会优先吸附至经紫外光照射的区域，在该区域，白蛋白已被激光移除。为了展示该方法的多功能性，其他蛋白质（如纤维蛋白）也已采用相同技术实现了图案化。此处细胞生长在盖玻片上经 XC 二重图案化处理的区域，紧邻虚线所界定的区域。该盖玻片最近在原位接受了两次紫外照射，并包被了 IV 型胶原蛋白。在接下来的五天内，细胞增殖并迁移以覆盖新编码的区域。本文介绍的方法可用于在培养条件下任意操控细胞，并有望用于排列多种类型的细胞，构建复杂的共培养系统。

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Research

科研

JoVE Journal

Bioengineering

生物工程

光图案蛋白质和细胞中的水环境中使用二氧化钛<sub&gt; 2</sub&gt;光催化

通过施加还原电位，从玻璃基底上可单独寻址的氧化铟锡（ITO）电极表面脱附了抗污损的聚乙二醇（PEG）硅烷单分子层。对ITO微电极上的PEG-硅烷层进行电化学剥离，可实现空间可控的细胞黏附，细胞排列模式与电极图案高度一致。...

在光学透明的氧化铟锡电极上构建细胞图案

本方案描述了一种与微加工工艺兼容的在SiO2表面进行细胞图案化的技术。通过光刻法将预设的聚对二甲苯-C（parylene-C）图案印制在SiO2晶圆上。在孵育血清（或其他激活溶液）后，细胞特异性地黏附于下方的聚对二甲苯-C区域，并沿其轮廓生长，而在SiO2区域则被排斥。...

在光刻定义的聚对二甲苯-C：SiO 上进行细胞图案化2 底物

本文概述了通过纳米孔模板电沉积法制备分段式和同轴纳米线的步骤。例如，制备了由银（Ag）和氧化锌（ZnO）段组成的分段纳米线，以及由二氧化钛（TiO2）壳层和银（Ag）内核构成的同轴纳米线。这些纳米线被用于光催化产氢实验。...

模板电沉积法制备及光催化活性分段 Ag|ZnO 和同轴 TiO2-Ag 纳米线的应用

本文介绍了一种在CdSe@CdS种子棒状纳米粒子表面通过光化学氧化法生长小尺寸结晶氧化铱纳米粒子的实验方案。...

在CdSe@CdS纳米棒上通过光化学氧化生长二氧化铱纳米颗粒

本文研究了喷墨打印技术在染料敏化太阳能电池制造中的适用性。配制了一种无粘结剂的TiO2纳米颗粒墨水，并将其打印到FTO玻璃基底上。所打印的薄膜被制备成有效面积为0.25...

染料敏化太阳能电池用二氧化钛的数字印刷

本文介绍了一种完全可印刷、无富勒烯、高度空气稳定的体异质结太阳能电池的制备方法，该太阳能电池以钛烷氧化物作为电子受体，并结合电子给体聚合物进行制备。此外，还报道了一种通过调控钛烷氧化物单元的分子体积来控制光活性层形貌的方法。...

基于钛醇盐与半导体聚合物的全可印刷有机–无机体异质结太阳能电池的形貌调控

本项目的主要目标是利用静电纺丝技术制备一种性能更优的染料敏化太阳能电池光阳极。...

用于染料敏化太阳能电池的光催化电极静电纺丝制备

本文介绍了一种基于多金属氧酸盐/聚合物复合膜制备电荷转移发色团的实验方案。...

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本文介绍了在涂覆有TiO2的透明电极上制备溶液加工型银-铋-碘（Ag-Bi-I）三元半导体薄膜的详细方案，及其作为空气中稳定且无铅光电器件的潜在应用。...

溶液法制备“银-铋-碘”三元薄膜用于无铅光伏吸光材料

我们将基于茋的有机染料直接引入钴肟核心，构建了一种用于光催化产氢的光敏剂-催化剂双功能分子2 生产。我们还开发了一种简单的实验装置，用于评估光驱动的H2...

开发用于太阳能驱动产氢的光敏剂-钴肟杂化体系2 在水相有氧条件下的生产

本文展示了一种通用实验方案，用于全面评估光催化剂在环境净化领域的实验室性能，以邻苯二甲酰菁敏化的磷酸银复合材料光催化去除水中抗生素类有机污染物为例。...

一种用于评估光催化剂在环境修复中降解抗生素性能的完整方法

了解利用二氧化钛光催化技术修饰细胞培养支架表面的方法，通过紫外光照射选择性吸附胶原蛋白，创建微结构域以控制细胞黏附。该技术适用于体外和原位环境，可广泛应用于组织工程领域。

使用 TiO₂ 光催化在水相环境中对蛋白质和细胞进行光图案化

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