Name: 无标记技术的单细胞分泌物的时空成像 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-23T16:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: 学习利用无标记纳米等离子体传感技术对单细胞分泌物进行高时空分辨率成像的方法。该技术通过金纳米传感器实时监测蛋白质分泌动态，为研究细胞间通讯和旁分泌信号通路提供有力工具。

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作者无任何利益冲突需要披露。

1. 纳米结构制备
<ol>
	<li>选择直径为25 mm、厚度约为170 µm（No. 1.5）的玻璃盖玻片作为纳米加工的基底。</li>
	<li>将盖玻片浸入piranha溶液（浓硫酸与过氧化氢体积比为3:1）中至少6小时。用大量超纯18.2 MΩ去离子蒸馏水（DDW）清洗经piranha溶液处理的盖玻片。 
	警告：Piranha酸与有机物接触会发生剧烈反应，操作时必须格外小心。</li>
	<li>通过电子束蒸发在盖玻片上沉积10 nm厚的铬薄膜，以避免在纳米结构的图形化和成像过程中产生电荷效应。</li>
	<li>以2,000 rpm转速旋涂双层抗蚀剂的第一层——乳酸乙酯甲基丙烯酸甲酯（MMA_EL6）共聚物，持续45秒，随后在150 °C下烘烤；再以3,000 rpm转速旋涂第二层聚甲基丙烯酸甲酯（950PMMA_A2），持续45秒，随后在180 °C下烘烤。</li>
	<li>使用电子束光刻（EBL）在25 kV条件下对双层抗蚀剂进行图形化，曝光剂量为300 µC/cm2。在异丙醇（IPA）/甲基异丁基酮（MIBK）溶液（体积比2:1）中显影，然后用IPA冲洗。</li>
	<li>使用电子束蒸发仪在基底上沉积Ti（5 nm）/Au（80 nm）薄膜。</li>
	<li>在完成金膜沉积后，将基底浸泡于丙酮中4小时，以剥离共聚物双层抗蚀剂。</li>
	<li>使用扫描电子显微镜（SEM）检查基底，确认纳米结构的形貌与尺寸；在室温下使用CR-7刻蚀液湿法刻蚀60秒，去除基底上残留的铬层，随后用DDW冲洗。</li>
	<li>设计中心间距为33 µm的阵列布局，以便在阵列之间留出用于细胞成像的空间。使用电子束光刻机以300 nm节距在每个阵列中制备20 × 20的纳米结构图案。每块芯片包含300个阵列，纳米结构典型尺寸为高度80±2.5 nm，直径70±2.5 nm。</li>
	<li>使用原子力显微镜（AFM）检查部分阵列，以验证其尺寸与均匀性。</li>
	<li>使用紫外固化环氧树脂将支撑环（通常为硅材料）固定在盖玻片背面。</li>
</ol>
2. 芯片清洗与自组装单分子层的施加
<ol>
	<li>清洗和再生芯片时，先在相同条件下对腔室进行5分钟的清洁，然后在300 mTorr、含5%氢气和95%氩气的混合气体中，以40 W功率进行45秒的等离子体灰化处理。</li>
	<li>等离子体灰化后立即对金纳米结构进行功能化处理：将芯片浸入由两种组分组成的乙醇硫醇溶液中，其中SH-(CH2)8-EG3-OH（SPO）与含氨基或羧基官能团的组分按3:1比例混合，后者为SH-(CH2)11-EG3-NH2（SPN）或SH-(CH2)11-EG3-COOH（SPC）。</li>
	<li>将芯片置于硫醇溶液中过夜&#160;以形成自组装单分子层（SAM）。</li>
	<li>用乙醇冲洗芯片，并用氮气吹干。</li>
	<li>如有需要，可将功能化后的芯片在4 °C下保存最多2周。</li>
	<li>使用前，根据所选配体的类型，采用相应的化学方法使SPN或SPC组分与配体发生反应（见下文）。 
	注意：芯片可反复再生和重新功能化数十次。同一芯片的使用周期可从6个月到一年以上。在经过多次等离子体灰化再生并继之以生物功能化后，同一阵列上测得的光谱具有良好的可重复性。29</li>
</ol>
3. 表面功能化与动力学表征
注意：使用商业 SPR 仪器中的功能化芯片来表征配体与分析物之间的动力学速率常数，并研究自组装单分子膜（SAM）对非特异性结合的抗性。存在多种流速和微流控设计，可实现高效的表面功能化。由于我们使用的是商用 SPR 仪器，因此采用了其推荐的流速标准。需要指出的是，这些流速在所有 SPR 仪器中均属典型值，因此并不具有限制性。尽管 SPR 仪器并非必需，因为所有功能化步骤均可直接在局域表面等离子体共振（LSPR）芯片上完成，但 SPR 仪器确实减轻了我们的工作负担，因其为多通道检测仪器，而我们的 LSPR 微流控装置则不具备此功能。
<ol>
	<li>按照第2节所述方法，将商用裸金芯片用自组装单分子层（SAM）进行功能化修饰。</li>
	<li>若使用基于SPC的SAM，需用133 mM的1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺（EDC）与33 mM的 N在 DDW 中孵育 10 分钟。</li>
	<li>将活化的羧基与目标抗体/配体在 pH 6 的磷酸盐缓冲液中以 30 µl/min 的流速反应 300 秒。配体的缓冲液通常选用 pH 6 的磷酸盐缓冲液，但可根据具体分子进行调整。</li>
	<li>配体偶联后，以30 µl/min的流速在磷酸盐缓冲液（PBS）中注入0.1 M乙醇胺，作为失活步骤，持续300秒。乙醇胺有助于减少非特异性结合。</li>
	<li>以100 µl/min的流速引入一系列浓度的目标分析物，并使用动力学分析软件计算动力学速率常数。</li>
	<li>如果非特异性结合问题显著，可提高SPO与SPC或SPN的比例。</li>
</ol>
4. LSPR 通用设置
<ol>
	<li>显微镜设置：
	<ol>
		<li>使用100 W卤素灯对样品进行科勒照明。在光路中使用长通滤光片（通常截止波长为593 nm），以消除不引起共振位移的波长（图2）。</li>
		<li>进行局域表面等离子体共振成像（LSPRi）数据采集时，使用配备40倍油浸物镜（1.4 NA）和热电冷却的16位CCD相机的倒置显微镜。</li>
		<li>在显微镜输出端口安装分光镜，以同时获取图像和光谱数据。</li>
		<li>将温控显微镜载物台设定为37 °C，并平衡4小时。</li>
		<li>在显微镜上集成额外的培养装置，以将CO2浓度和湿度分别调节至5%和95%。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>芯片准备与安装：
	<ol>
		<li>根据表面等离子体共振（SPR）实验确定的最佳双组分自组装单分子膜（SAM）比例，对LSPR芯片进行功能化修饰。</li>
		<li>将芯片装入定制的微流控夹具中，具体步骤如下：将芯片置于铝制底板上，用硅胶垫圈和透明塑料顶板夹紧芯片，并用4个螺丝固定组件。</li>
		<li>对于典型的基于SPC的硫醇应用，滴加300 µl去离子水中含133 mM EDC和33 mM NHS的1:1混合溶液，以活化SPC硫醇组分中的羧基基团。</li>
		<li>等待10 min&#160;，然后手动用10 mM PBS冲洗表面。</li>
		<li>通过滴加300 µl配体溶液，将活化的羧基与目标配体（通常为抗体或抗体片段）偶联。</li>
		<li>等待30 min，然后手动用10 mM PBS冲洗。</li>
		<li>在芯片上滴加300 µl含0.1 M乙醇胺的PBS溶液，以最大限度减少非特异性结合。静置10 min。</li>
		<li>用含0.005% Tween 20的PBS（PBS-T20）洗涤乙醇胺。</li>
		<li>在芯片上方放置一块石英片，以减少因弯月面变化引起的数据波动。</li>
		<li>在将芯片安装到显微镜上时，始终保持芯片被PBS-T20缓冲液润湿。</li>
		<li>将LSPR芯片组件牢固地放入加热载物台的样品架中，并连接微流控管路。</li>
		<li>将微流控管路连接至组件，并通入缓冲液（或细胞实验中的无血清培养基），直至达到稳态。</li>
		<li>使组件和显微镜至少平衡2小时。</li>
		<li>使用操纵杆调整芯片位置，使中央阵列与用于光谱分析的光纤对齐。光谱数据通过光谱仪和光谱分析软件采集。</li>
		<li>在整个实验过程中，使用软件自动对焦、蔡司Definite Focus或等效自动对焦装置，保持阵列始终处于焦点位置。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. 9E10 杂交瘤细胞分泌抗 c-myc 的 LSPR 成像
注意：本研究使用的杂交瘤细胞系可组成型表达抗c-myc抗体，因此无需化学诱导剂
<ol>
	<li>用 c-myc 肽对纳米结构进行功能化修饰。该肽与 9E10 杂交瘤细胞克隆分泌的抗 c-myc 抗体的 KD 值为 1.77 nM。</li>
	<li>在含有 10% 胎牛血清（FBS）和 1% 抗生素的完全培养基中，将杂交瘤细胞接种于 T75 培养瓶中，在 37 °C、5% CO2 条件下培养。维持细胞密度为 4 ×105 个细胞/ml。</li>
	<li>进行细胞分泌研究时，通过离心收集 T75 培养瓶中的细胞，用无血清 RPMI-1640 培养基（SFM）洗涤两次以去除已分泌的抗体，并将细胞密度调整至 4 ×106 个细胞/ml。</li>
	<li>收集细胞并在接种至 LSPR 芯片前检测细胞活力。</li>
	<li>使用微量移液器将 50 µl 细胞悬液手动加样至 LSPR 芯片表面。数分钟后，有 25 至 50 个细胞黏附于 LSPR 芯片表面。</li>
	<li>利用微流控灌注系统，用新鲜的 SFM 洗去未黏附的悬浮细胞。</li>
	<li>选择与细胞距离较近（在 10 μm 范围内）但未与细胞重叠的 LSPR 阵列进行成像。</li>
	<li>为确保检测信号特异性来源于分泌的抗 c-myc 抗体，需分别引入含有或不含抗体的细胞培养基，以及在溶液中加入过量 c-myc 肽以饱和结合位点、阻断抗体结合能力的抗体样本进行对照实验。</li>
	<li>每次实验结束后，使用饱和浓度的抗 c-myc 抗体溶液（250 nM）对传感器进行校准。该步骤有助于标准化传感器响应，并根据每次实验的生物功能化情况确定结合位点的占有率。</li>
	<li>使用图像配准软件校正 X 和 Y 方向的漂移。</li>
</ol>

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<li>Bramswig, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soluble+Carcinoembryonic+Antigen+Activates+Endothelial+Cells+and+Tumor+Angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Soluble Carcinoembryonic Antigen Activates Endothelial Cells and Tumor Angiogenesis.</a> Cancer Research. 73, 6584-6596 (2013).</li>
</ol>

感谢 George Anderson 提供的有益评论和讨论。本工作由海军研究实验室纳米科学研究所和国家研究委员会研究协会奖支持。

本研究中描述的LSPR成像技术相较于检测细胞分泌物的传统方法具有诸多优势。首先，本技术的时间分辨率为秒级，而商业化的替代方法——一种名为EliSpot的免疫夹心法，其典型时间分辨率通常为2至3天7,32。因此，我们能够解析蛋白质分泌速率的突发性变化，如图6所示。其次，芯片上分布的阵列使得分泌信号可在空间和时间上被追踪，从而实现与基于扩散的细胞分泌模型进行更严格的比较。此外，像图6中所示的对照阵列可用于扣除图像中通常由仪器因素（如焦距漂移）引起的全局性变化。第三，本技术无需对细胞进行任何修饰。若需要，实验可结合常用的标记物（如荧光蛋白），但若担心此类标记可能对细胞活力或稳态产生负面影响，则本方法无需标记的特性使其无需使用这些标记物。第四，通过使用光谱数据，我们已证明可计算出表面结合配体的分数占有率的定量信息。
制备金属纳米颗粒的方法中，存在多种可替代电子束光刻（EBL）的技术。然而，我们发现EBL在优化纳米结构和阵列尺寸方面具有显著的灵活性，能够更好地适应所研究的光学系统和细胞特性。此外，芯片可通过等离子体灰化法轻松再生，这一点也至关重要。通过这种方式，一块典型的芯片可重复使用数十次。生物功能化步骤的具体细节需根据特定应用进行调整。本文所述方案采用相对较小的c-myc肽配体对表面进行共轭修饰。对于抗体等较大配体，通常需要更大的间距，因此需要更高的SPO与SPN/SPC比例。无论如何，在活细胞实验中，形成完整的自组装单分子膜（SAM）层对于防止非特异性结合至关重要。总体而言，分子量较大的分析物更易于通过局域表面等离子体共振（LSPR）检测到。因此，在单细胞层面应用时，该技术可能不适用于检测如细胞因子等小分子蛋白质的分泌。
目前的实验装置已用于研究单个非贴壁细胞。存在大量分泌型信号蛋白和囊泡，本研究所报告的结果可直接适用于这些分子。例如癌胚抗原（CEA），数十年来一直被用作癌症的诊断标志物。已知结肠癌细胞以每细胞每小时数千个分子的速率分泌CEA，其分子量为180 kDa，超过IgG抗体的分子量。目前认为CEA参与自分泌和旁分泌信号通路，但这些分泌过程的空间-时间特性从未被测量过。我们的技术可直接解答这些信号相关问题。本研究的一个延伸方向是测量单个细胞CEA分泌的空间-时间特性33。未来的工作还将聚焦于将LSPRi技术与贴壁细胞的二维和三维细胞培养体系相结合。通过整合能够并行检测多种分泌蛋白的多重阵列，该技术有望为研究细胞分泌物及其对邻近细胞的影响打开一扇新的窗口。

细胞间的通讯对于调控细胞内外多种生理活动至关重要。多种蛋白质和囊泡可被分泌出来，进而触发复杂的细胞过程，如分化、伤口愈合、免疫反应、迁移和增殖。1-5 细胞间信号通路的功能障碍已发现与多种疾病相关，包括癌症、动脉粥样硬化和糖尿病等。
理想的细胞分泌检测方法应能够在不干扰相关信号通路的前提下，对目标分泌蛋白进行时空上的动态定位。通过这种方法，可以推断出分泌物浓度分布与受体细胞响应之间的因果关系。然而，目前常用的许多基于荧光的技术并未达到这些标准。虽然荧光融合蛋白可用于在细胞内标记分析物，但可能干扰分泌途径；若被分泌至胞外，则会在细胞周围产生弥散的荧光信号，难以定量。基于荧光免疫夹心法的检测是目前检测细胞分泌物最常用的技术，但通常需要对单个细胞进行分离6-11。此外，检测过程中引入的感应抗体通常会中断或终止实验，且抗体标记分子的尺寸较大（IgG为150 kDa），可能阻碍下游信号传导。
由于这些障碍，最好采用无标记技术来成像蛋白质分泌；而在现有的无标记技术中，表面等离子体共振（SPR）和局域表面等离子体共振（LSPR）传感器是极佳的选择12-17。这些传感器已广泛用于蛋白质、外泌体及其他生物标志物的分析物结合研究18-24。对于LSPR而言，等离子体纳米结构可通过光刻技术图案化于玻璃盖玻片上，并利用可见光通过标准的宽场显微镜配置进行激发。由于其纳米级的尺寸，玻璃基底的大部分区域仍可用于明场和荧光显微镜等常规成像技术，因此这些探针非常适合与活细胞显微镜结合使用25-28。我们已利用功能化的金等离子体纳米结构，实现了对杂交瘤细胞抗体分泌的实时测量，其时间分辨率为225毫秒，空间分辨率为10 µm。基本芯片结构如图1所示28。显微镜的输出光路被分为两部分：一部分通往用于成像的CCD相机，另一部分通过光纤耦合至光谱仪，用于定量测定特定纳米结构阵列的占据分数（图2）。
本文所述方案介绍了在利用标准明场显微镜实时监测细胞反应的同时，对单个细胞分泌物进行实时测量的实验设计。该多学科方法包括纳米结构的制备、对纳米结构进行功能化以实现分析物的高亲和力结合、利用商用表面等离子体共振（SPR）仪器优化表面以最大限度减少非特异性结合并表征动力学速率常数、将细胞系整合到基底上，以及对图像和光谱数据进行分析。我们预期该技术将成为实现细胞分泌物时空图谱绘制及其与受体细胞之间因果关系研究的关键使能技术。

<table><tbody><tr><td>25&amp;#160;mm 直径玻璃盖玻片</td><td>Bioscience Tools&amp;nbsp;</td><td>CSHP-No1.5-25</td><td>&amp;nbsp;170&amp;plusmn;5 &amp;micro;m 为最佳厚度</td></tr><tr><td>聚甲基丙烯酸甲酯</td><td>Microchem</td><td>PMMA 950 A4</td><td></td></tr><tr><td>乳酸乙酯甲基丙烯酸甲酯</td><td>Microchem</td><td>MMA EL6</td><td></td></tr><tr><td>电子束蒸发仪</td><td>Temescal</td><td>FC-2000</td><td></td></tr><tr><td>电子束光刻系统</td><td>Raith</td><td>Series 150</td><td></td></tr><tr><td>乙醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459836</td><td></td></tr><tr><td>丙酮</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320110</td><td></td></tr><tr><td>CR-7 铬蚀刻剂</td><td>Cyantek</td><td>CR-7</td><td></td></tr><tr><td>扫描电子显微镜</td><td>Zeiss</td><td>Ultra 55</td><td></td></tr><tr><td>原子力显微镜</td><td>Veeco</td><td>Nanoscope III</td><td></td></tr><tr><td>等离子体灰化系统</td><td>Technics</td><td>Series 85 RIE</td><td></td></tr><tr><td>SH-(CH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;8&lt;/sub&gt;-EG&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;-OH (SPO)</td><td>Prochimia</td><td>TH 001-m8.n3-0.2</td><td></td></tr><tr><td>SH-(CH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;11&lt;/sub&gt;-EG&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;-COOH (SPC)</td><td>Prochimia</td><td>TH 003m11n3-0.1</td><td></td></tr><tr><td>SH-(CH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;11&lt;/sub&gt;-EG&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;-NH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; (SPN)</td><td>Prochimia</td><td>TH 002-m11.n3-0.2</td><td></td></tr><tr><td>表面等离子体共振系统</td><td>Biorad</td><td>XPR36</td><td></td></tr><tr><td>裸金芯片</td><td>Biorad</td><td>GLC 芯片</td><td>经等离子体灰化以去除单分子层</td></tr><tr><td>1-乙基-3-(3-二甲氨基丙基)碳二亚胺</td><td>Thermo</td><td>22980</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;N&lt;/em&gt;-羟基琥珀酰亚胺 (NHS)</td><td>Thermo</td><td>24510</td><td></td></tr><tr><td>戊胺-生物素&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Thermo</td><td>21345</td><td></td></tr><tr><td>乙醇胺</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9508</td><td></td></tr><tr><td>中性亲和素</td><td>Thermo</td><td>31000</td><td></td></tr><tr><td>磷酸盐缓冲液</td><td>Thermo</td><td>28374</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2287</td><td></td></tr><tr><td>倒置显微镜</td><td>Zeiss</td><td>Axio Observer</td><td>显微镜配备 40X 油浸物镜；CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; 及湿度培养系统（Pecon GmbH）</td></tr><tr><td>CCD 相机</td><td>Hamamatsu</td><td>Orca R2</td><td>热电制冷（16 位）</td></tr><tr><td>光谱仪</td><td>Ocean Optics</td><td>QE65Pro</td><td></td></tr><tr><td>Spectrasuite</td><td>Ocean Optics</td><td>version1.4</td><td></td></tr><tr><td>c-myc 肽 HyNic 标签</td><td>Solulink</td><td>SP-E003</td><td></td></tr><tr><td>单克隆抗 c-myc 抗体</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M4439</td><td></td></tr><tr><td>杂交瘤细胞系</td><td>ATCC</td><td>CRL-1729</td><td></td></tr><tr><td>抗生素-抗真菌溶液（100&amp;times;）</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5955</td><td></td></tr><tr><td>无血清 RPMI 1640 培养基&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>&amp;nbsp;11835-030&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>ATCC</td><td>30-2020</td><td></td></tr><tr><td>罗丹明 DHPE</td><td>Life Technologies</td><td>L-1392</td><td></td></tr></tbody></table>

一种用于单细胞分泌物时空成像的无标记技术

A Label-free Technique for the Spatio-temporal Imaging of Single Cell Secretions

细胞间通讯是复杂系统的重要组成部分，有助于维持基本的细胞活动。因此，此类信号传导功能异常可导致多种疾病。为了理解细胞间的信号传递，必须在不干扰局部环境的情况下，研究细胞分泌分子的空间和时间特性。目前已开发出多种检测方法用于研究蛋白质分泌，但这些方法通常依赖荧光探针，会干扰相关信号通路。为克服这一局限性，需要一种无需标记的检测技术。
本文介绍了一种无标记局域表面等离激元共振成像（LSPRi）技术的制备与应用，该技术能够检测单个细胞分泌的蛋白质。等离激元纳米结构通过光刻工艺加工在标准玻璃盖玻片上，可利用商用光学显微镜的可见光激发。纳米结构仅覆盖盖玻片的一小部分区域，因此该技术非常适合与荧光成像和明场成像等常规技术联用。
本方案采用多学科交叉的方法，包括传感器的纳米制造及后续生物功能化、配体与分析物结合动力学的表征、芯片与活细胞的整合，以及对测量信号的分析。总体而言，该技术为无标记检测细胞分泌物并将其与邻近细胞的响应相关联提供了一种通用的方法。

在典型的活细胞分泌研究中，会同时进行多种模式的数据采集。图3展示了LSPRi图像与透射光照明图像的叠加，其中LSPRi图像突出显示了方形阵列，而透射光图像则突出了左下方的细胞。通常数据采集持续3小时，随后引入分析物的饱和溶液，用于下文所述的归一化计算。通过自动切换滤光片组，还可将荧光成像整合到数据采集流程中。图4中，用荧光膜染料罗丹明DHPE染色的细胞显示出类似片状伪足的突起（箭头所示）。如果此类突起与阵列发生重叠，则可能导致蛋白分泌的假阳性信号。采用多种成像模式有助于识别此类情况。
图5显示了在向c-myc功能化的阵列引入市售的抗c-myc抗体饱和溶液（400 nM）前后所获得的光谱数据。本实验中未使用细胞。光谱图显示出红移现象以及信号强度的增加。两条曲线下的面积差异导致在CCD相机的LSPRi模式下阵列图像强度的增强。已开发出一种非线性最小二乘法数据分析方法，用于从光谱数据推断表面结合配体的占有率。30,31
实验结束时，饱和强度值（即， 分数占有率 ≈ 1）用于通过以下公式计算每个阵列的标准化响应：
其中，t 时刻的归一化强度、实验开始时的初始强度、最终饱和强度以及 t 时刻芯片测得的强度分别如上所述。
两个阵列的归一化值如图6所示。其中一个阵列位于待研究细胞10 µm范围内，另一个作为对照的阵列则距离细胞130 µm。靠近细胞的阵列其归一化响应出现突然升高，而对照阵列的响应则保持平稳，这表明存在局部的分泌抗体爆发事件。
<img alt="纳米颗粒表面相互作用示意图；等离激元传感器分析，光学激发研究。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1"> 
图1. 传感器设计。一幅展示典型活细胞分泌实验几何结构的示意图。 细胞（蓝色球状体）被放置在局域表面等离激元共振（LSPR）芯片上，该芯片包含阵列化的生物功能化金纳米结构。在放大视图中，感兴趣的细胞分泌物（本例中为呈Y形分子的抗体）在结合到功能化纳米结构表面时被检测。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="包含三维纳米结构分析插图的光谱学装置示意图；包括分束器。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig2.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 2"> 
图 2. 光学装置。 来自卤素灯的照明光首先通过一个长通滤光片（LP）进行过滤。光被线性偏振（P1），并通过一个40X/1.4 NA的物镜照射样品。散射光由同一物镜收集，并通过一个正交偏振器（P2）。在收集的光路中插入一个50/50分束器（BS），以实现光谱和成像的同步分析。右上角：九个独立纳米结构的原子力显微镜图像，纳米结构之间的间距为300 nm。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="静态平衡，显微镜图像；带有颗粒的网格图案，用于研究的光学分析装置。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig3.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图3"> 
图3. 活细胞局域表面等离子体共振成像研究。 一幅透射光与局域表面等离子体共振成像（LSPRi）的融合图像，显示一个杂交瘤细胞（左下方）周围分布着12个阵列。此图为对比度增强图像。比例尺为10 µm。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="星系团中宇宙喷流的天文等离子体喷流辐射示意图。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig4.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 4"> 
图 4. 活细胞荧光研究。 使用罗丹明 DHPE（一种膜染料）染色的单个杂交瘤细胞的荧光伪彩图像。在荧光成像模式下，阵列通常不可见，但在此图像中，右下角可见一个黑色方块，为邻近的阵列。可以看出细胞与阵列是分离的，但细胞向外延伸出触手状突起（可能是丝状伪足或片状伪足）（箭头所示）。比例尺为 10 µm。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="荧光发射光谱图比较不同浓度下的强度与波长关系。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig5.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 5"> 
图 5. 光谱模式。 从经 c-myc 功能化的阵列在加入 400 nM 抗 c-myc 抗体溶液前后所获得的光谱。本研究中未使用细胞。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig5large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="随时间变化的归一化响应曲线；靠近细胞的红色曲线与黑色对照阵列。" src="/files/ftp_upload/53120/53120fig6.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图6"> 
图6. 单细胞分泌。 位于单个细胞附近15 µm处的检测阵列与位于130 µm远处的阵列（对照）的响应。比例尺为10 µm。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53120/53120fig6large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

细胞间通讯对于调控细胞内外多种生理活动至关重要。本文介绍了一种用于测量单个细胞分泌物时空特性的实验方案。为实现这一目标，采用了一种多学科交叉的方法，将无标记纳米等离子体传感技术与活细胞成像相结合。

细胞间通讯是复杂系统的重要组成部分，有助于维持基本的细胞活动。因此，其功能障碍……

以下实验的总体目标是以前所未有的时间与空间分辨率测量单个细胞的蛋白质分泌。该目标通过在玻璃盖玻片上采用光刻技术制备金等离激元纳米传感器，实现对单细胞分泌物的无标记成像。第二步，将传感器芯片清洗后涂覆自组装单分子层，并进一步修饰具有高亲和力的配体，以特异性结合目标分泌蛋白。接下来，将细胞集成到功能化的传感器芯片上，以在空间和时间上测量其分泌物。结果表明，无需标记即可在空间和时间上对单个细胞的蛋白质分泌进行映射。该方法有助于回答细胞间通讯领域中的关键问题，例如旁分泌和自分泌信号通路如何调控细胞运动性。开始此操作时，通过电子束蒸发法在预先清洗过的盖玻片上沉积一层10纳米的铬薄膜，以避免在纳米结构的图形化和成像过程中产生电荷效应。随后，以2000 RPM的转速旋涂双层抗蚀剂的第一层（由乳酸乙酯和甲基丙烯酸甲酯共聚物组成），持续45秒。然后，在使基底冷却至室温后，将基底在150摄氏度下烘烤。以 3000 RPM 的转速旋涂第二层聚甲基丙烯酸甲酯 45 秒，随后在 150 摄氏度下烘烤基底。使用电子束光刻（EBL）对双层抗蚀剂进行图形化。采用异丙醇（IPA）与甲基异丁基酮（MIBK）按 2:1 的比例混合的显影液进行显影，并用 IPA 漂洗。在室温下使用CR seven刻蚀液湿法刻蚀10秒，从纳米结构的已制备区域去除铬，然后用去离子蒸馏水冲洗。使用电子束蒸发仪在基底上沉积钛金薄膜，随后进行金沉积。通过将基底浸泡在丙酮中四小时，剥离共聚物双层抗蚀剂。接下来，使用扫描电子显微镜检查基底，以确认纳米结构的形状和尺寸。所得到的纳米结构通常以300纳米的节距相互分隔。20乘20的纳米结构阵列中心到中心的间距为30微米。为细胞成像留出充足空间，典型的芯片将包含300个阵列。在室温下使用CR七号蚀刻液通过湿法刻蚀去除基底上残留的铬，持续60秒。然后用去离子蒸馏水冲洗基底。然后使用原子力显微镜检查部分阵列，以验证其尺寸和均匀性。只要遵循适当的清洗程序，该图案化玻璃盖玻片可多次重复使用，用于清洗和再生局域表面等离子体共振（LSPR）芯片。在功率为40瓦、300毫托压力下，使用5%氢气与95%氩气的混合气体进行等离子体灰化处理，持续45秒。在等离子体灰化后立即对金表面和纳米结构进行功能化处理。将芯片浸入由SPO和SPC按3:1比例组成的乙醇硫醇双组分溶液中。将芯片在硫醇溶液中静置过夜以形成自组装单分子层，随后用乙醇冲洗，并用氮气吹干。将LSPR芯片置于自制的微流控夹具中，放置在铝制底座上。然后使用四颗螺丝将芯片夹在底部部件、硅胶垫圈和透明塑料顶部部件之间，以固定组件。对于典型的基于SPC的硫醇应用，将300微升由133毫摩尔EDC和33毫摩尔NHS按1:1比例混合的去离子蒸馏水溶液滴加到表面，以活化SPC硫醇组分中的羧基。等待10分钟后，用10毫摩尔PBS手动冲洗表面，随后通过滴加300微升配体溶液，将活化的羧基与目标配体进行偶联。等待一小时后，用10毫摩尔的PBS滴液代码冲洗表面，然后在芯片上加入300微升含0.1摩尔乙醇胺的PBS，以最大限度减少非特异性结合。等待10分钟后，用含有0.005%吐温20的PBS或PBST 20冲洗乙醇胺。接着，在芯片上方放置一块石英片，以减少因弯月面变化引起的数据波动。在将芯片安装到显微镜上时，需用 PBST 20 缓冲液保持芯片湿润。将微流控管路连接至组装件，并通入缓冲液直至达到稳态。然后将 LSPR 芯片组件牢固地放入加热载台的样品架中。该方法的光学装置如图所示。来自卤素灯的光首先通过一个593纳米长通滤光片，以消除不参与纳米等离基元响应的波长成分。随后，光被线性偏振，并通过一个40倍、数值孔径为1.4的物镜照射样品，以激发等离基元金纳米结构。通过物镜收集散射光，并使其穿过正交偏振片，以降低玻璃基底产生的背景信号。在收集的光路中插入一个50/50分束器，以实现光谱和成像的同步分析。在让组装件和显微镜平衡至少两小时后，使用操纵杆调整芯片位置，使中央阵列与用于光谱分析的光纤对齐。将杂交DOMA细胞培养并经离心形成沉淀后，收集细胞，并在将其接种到LSPR芯片之前检测细胞活力。随后，使用微量移液器手动将50微升细胞悬液加样至LSPR芯片上。最后，利用微流控灌注系统以新鲜的无血清培养基冲洗去除溶液中残留的细胞，以准备LSPR芯片进行成像。此处展示的是 LSPR 成像图像与透射光照明图像的叠加图，其中 LSPR 成像突出显示了方形阵列，透射光图像则突出显示了左下方的细胞。该细胞经荧光膜染料 rod Domine, DHPE 染色后，显示出类似丝状伪足的突起。若此类突起与阵列发生重叠，则在向 cmic 功能化阵列引入抗 cmic 抗体的饱和溶液前后，可能导致蛋白质分泌光谱数据出现假阳性结果。该方法用于校准阵列。阵列的校准有助于标准化传感器的响应，并根据每次实验的生物功能化特征确定结合分数。采用商用 SPR 仪器，按照 LSPR 芯片所述相同方案，测定解离常数并研究抗非特异性结合能力。此处显示了两个阵列的归一化值。其中一个阵列位于细胞附近10微米范围内，而对照阵列距离细胞130微米。靠近细胞的阵列归一化响应相对于对照阵列平稳响应的突然升高，表明存在局部抗体分泌的爆发。观看本视频后，您应能够充分理解如何以高空间和时间分辨率测量单个细胞的蛋白质分泌。

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