2016年1月29日
本方案描述了如何使用定量实时 PCR(QRT-PCR)检测小鼠肺组织中代表转移灶的肿瘤细胞特异性 mRNA。
本实验的总体目标是检测肺部肿瘤细胞中特定 mRNA 的含量,以此作为分析转移的方法。该技术的主要优势在于其能够对转移程度进行定量测量。进行肺部肿瘤解剖时,根据实验方案使用致死剂量的异氟烷处死小鼠后,将小鼠仰卧置于泡沫板上,四肢展开,并用解剖针将其固定在板上。
使用乙醇喷洒小鼠后,用镊子夹住动物腹部中央的下部区域,用剪刀沿皮肤向上剪至颈部,注意不要刺破小鼠的腹膜腔。接着,夹住动物尾端的腹膜,开始向上剪至颈部基部。小心沿肋骨两侧剪开,注意不要切断可能引起胸腔出血的血管。
通过切开膈肌及肋骨笼的上部,在左右两侧去除肋骨。然后用镊子夹住小鼠的气管并向前牵拉,使用解剖剪剪断气管,再将肺组织从小鼠体内取出。用 PBS 轻柔冲洗肺组织。
随后,根据文本方案对肺组织进行大体评估,如果需要立即分析肺组织,则进行RNA提取。从组织中提取RNA时,首先使用文本方案中列出的方法之一对组织进行匀浆。准备RNA提取试剂盒中的裂解缓冲液,并在每毫升裂解缓冲液中加入20 µL的肿瘤巯基乙醇。
每30克组织用300微升裂解缓冲液重悬,使用超声破碎仪(设置为30%振幅)对组织进行10秒超声处理。在590微升TE缓冲液中加入10微升蛋白酶K,并将600微升该缓冲液加入300微升已超声处理的组织中。室温孵育10分钟。
接下来,以大于或等于13,000 ×g的离心力离心10分钟,以去除杂质。然后将上清液转移至新的离心管中。每900 µL上清液中加入450 µL乙醇,以沉淀RNA。
然后将700微升裂解液与乙醇的混合物转移至RNA柱中。在不低于13,000 × g的条件下离心一分钟,使RNA结合到柱上。随后弃去液体废液,将剩余的上清液加入柱中,再次离心。
接下来,向柱子的上部加入 350 µL 洗涤缓冲液一,将样品离心 30 秒。弃去液体废液,并将柱子放回收集管中。每份样品按如下方法配制 DNase:将 5 单位的 DNase 一酶与 5 µL 10X DNase 缓冲液以及 40 µL 无 DNase 和 RNase 的水混合。
向每个柱中加入 50 µL DNase 混合液,在室温下孵育 15 分钟。然后向柱中加入 350 µL 洗涤缓冲液一,离心样品 30 秒。弃去废液后,加入 600 µL 洗涤缓冲液二,再离心 30 秒。
加入250微升洗涤缓冲液二之前,弃去液体,然后离心两分钟。将柱子转移至新的收集管中,向柱子中加入50至100微升无RNase和DNase的水。孵育一分钟后,离心一分钟。
将收集的洗脱液重新通过层析柱,以提高RNA得率。如需立即使用,请将样品置于冰上。如需后续使用,则在干冰或液氮中速冻,并于-80摄氏度保存,直至使用。
使用分光光度计定量 RNA。然后,在无 RNase 和 DNase 的无菌 PCR 管或板中,使用 0.5 至 2 微克总 RNA,按照本表所示配制第一链合成反应体系。混匀后,轻轻离心,并使用此处所示程序设置标准 PCR 仪。
当反应完成后,使用无菌、无核酸酶的水将反应产物稀释至所需体积。为进行实时 PCR,使用阳性对照 cDNA(如人 HER2)通过配制 cDNA 的 1 至 4 倍系列稀释液,为每对引物建立包含五个标准点的标准曲线。接着,计算总样本数量,应包括标准曲线样本和实验样本。
然后,在无 RNase 和 DNase 的无菌离心管中,为每个目标实验基因以及内参基因(如 gapdh)配制相应的主混合液。准备一块检测板,每份标准品或实验样品均加入一微升 C DNase。每个引物探针至少分配一份 C DNA 样品至一个孔中。
每孔每对引物探针加入 19 微升预混液。该生物发光实验表明,经 ACT1(靶向缝隙连接蛋白 Connexin 43)处理的小鼠肺组织未显示荧光素酶活性,提示组织中无肿瘤细胞存在。然而,肺组织 H&E 切片分析显示存在微转移灶,而这些病灶未被荧光素酶成像检测到,提示荧光素酶成像的灵敏度不足以检测少量肿瘤细胞。
图中显示了使用特异性针对 HER2 的探针进行 qRT-PCR 实验的结果,用于检测最初移植到小鼠乳腺脂肪垫的细胞所来源的人 HER2 阳性 JIMT1 肿瘤细胞在肺组织中的存在情况。尽管在任何肺组织表面均未观察到明显的转移灶,但在 11 个样本中的 2 个样本中,qRT-PCR 检测到了转移。在本图中,通过标准曲线分析确定了相对于小鼠肺组织 gapdh 归一化后的相对 HER2 水平,并以细胞数量系列进行校准。
结果表明,使用 HER2 探针的 qRT-PCR 能够灵敏地检测低至 10 个细胞中的 HER2 水平。最后,该回归分析显示了每份肺组织样本中的相对细胞数量,包括阳性和阴性对照。一旦掌握,该技术若操作得当,可在 6 至 8 小时内完成。
在进行该实验操作时,重要的是要注意采取预防措施,以在RNA提取和逆转录反应过程中保持RNA的完整性。观看本视频后,您应能够充分掌握如何通过定量实时PCR在整块肺组织中检测转移灶。
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本方案描述了如何使用定量实时 PCR(QRT-PCR)检测小鼠肺组织中代表转移灶的肿瘤细胞特异性 mRNA。该方法旨在定量肺组织中肿瘤细胞的特异性 mRNA,从而对转移程度进行定量评估。
转移负荷的定量评估在肿瘤药物研发中仍是一项关键挑战,目前的方法通常缺乏检测远端器官中低丰度肿瘤细胞的灵敏度。这种基于定量逆转录聚合酶链式反应(QRT-PCR)的方法能够实现对肺组织中肿瘤细胞存在的mRNA水平精确定量,为乳腺肿瘤模型中的靶点验证提供了一种机制性风险降低工具。该方法通过提供可扩展的定量读数,支持在临床前评估中建立预测信心,并为早期发现阶段的研发管线提供“推进/终止”决策依据。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物优化,再到临床前药效测试的整个发现流程,尤其适用于转移潜能作为关键风险因素或治疗效应生物标志物的研究。