Name: 根尖切除小鼠模型来研究早期哺乳动物心脏再生 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 8 s
Description: 学习根尖切除技术用于研究早期哺乳动物心脏再生机制。该视频演示了新生小鼠心脏手术的标准化操作流程，为心血管再生医学研究提供可靠的实验方法。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者们&#160;感谢美国国立心肺血液研究所（NHLBI）的James Hawkins博士、Zu-Xi Yu博士和Xuan Qu博士在小鼠手术以及石蜡切片的制备与染色方面提供的帮助。作者为&#160;感谢 NIH 学者编辑委员会提供的编辑协助。

所有小鼠实验均经美国国立卫生研究院（NIH）动物护理与使用项目批准，方案编号为 H0083R3。&#160;NHLBI 动物实验伦理委员会批准了该方案，无需使用镇痛剂。
1. 新生小鼠的低温麻醉
<ol>
	<li>手术前将海绵和外科器械在高压灭菌器中灭菌。准备好所有外科手术材料，并在手术前15–20分钟开启干热灭菌器。&#160;提前升温至 240°C 至 270°C。</li>
	<li>将所有C57BL/6品系乳鼠（出生后第1天）从哺乳母鼠处转移至装有新鲜垫料和筑巢材料的清洁小鼠笼中。一旦乳鼠被带入手术室，应立即进行顶端手术，以尽量缩短其与母鼠分离的时间，并降低母鼠食仔的风险。</li>
	<li>将海绵置于冰床上，然后将一只幼崽放在海绵上约3分钟&#160;以实现低温麻醉。通过观察呼吸暂停和运动不能，并夹捏后肢足部来确认麻醉效果。需频繁检查新生幼崽的状态，因为麻醉时间过短会导致幼崽未达到运动不能和呼吸暂停状态，而麻醉时间过长则可能降低其存活率12.</li>
</ol>
2. 开胸术
<ol>
	<li>将幼鼠从冰床上转移至手术台面区域，使用胶带将其四肢和尾巴固定，呈仰卧位。</li>
	<li>使用碘伏对胸部进行消毒，并用70%酒精棉片轻轻清洁。</li>
	<li>使用Vannas弹簧剪在胸腔第四肋间区域做横向皮肤切口，随后钝性分离第四肋间肌，以暴露心脏。 
	注意：手术过程中尽量减少出血可提高存活率。</li>
</ol>
3. 心室心尖的外科截除
<ol>
	<li>用手轻轻按压腹部，使心脏尖端外露。使用无菌棉签吸除手术区域周围的血液，以获得清晰的视野。对于假手术对照组的新生小鼠，直接进入第4步（缝合与小鼠恢复）。</li>
	<li>在放大灯下，使用虹膜剪小心地分段切除左心室（LV），直至暴露左心室腔。注意尽量减少切除的左心室组织量。通常需切除约15%，以充分暴露左心室腔。</li>
	<li>确保在暴露左心室腔后，心脏重新回纳至胸腔内。</li>
</ol>
4. 小鼠缝合与恢复
<ol>
	<li>使用无菌的Proline 6-0缝合线将肋骨和肌肉缝合在一起，以封闭胸腔，然后使用皮肤胶仔细闭合皮肤切口。</li>
	<li>将新生仔鼠置于加热灯下保暖约3 min&#160;以促进恢复，然后使用70%酒精消毒垫清除血液和胶水残留，再将其放回同窝仔鼠中。尽量在10 min&#160;内完成整个手术过程，因为缩短与母鼠分离的时间可提高心尖切除术后仔鼠的存活率。</li>
	<li>每次手术后，将手术器械与热珠灭菌器中的珠子接触约20 sec&#160;以实现彻底灭菌。每次手术前需确保手术器械冷却至室温。</li>
	<li>完成一窝仔鼠的所有手术后，将仔鼠与其母鼠的垫料和排泄物混合，再放回母鼠巢穴中。 
	注意：通常ICR/CD-1小鼠比C57BL/6小鼠更适合作为养母，但即使遗传背景相同，不同哺乳期母鼠的哺育本能也存在差异。若为降低母鼠食仔导致的死亡率而需更换哺乳母鼠，可先将P0仔鼠转移至养母，然后在P1阶段进行心尖切除术。每窝仔鼠仅应接受假手术或心尖切除术中的一种操作，因为混合假手术和手术仔鼠可能会降低手术组仔鼠的存活率6。</li>
</ol>
5. 术后分析
<ol>
	<li>术后一天观察仔鼠，确保假手术组与手术组之间无明显差异，并统计仔鼠数量以计算存活率。若手术操作得当，假手术组和手术组的存活率应相近，且均应高于60%。</li>
	<li>心脏的分离与固定。
	<ol>
		<li>术后第1天和第2天通过断头法处死仔鼠，术后第21天采用CO2麻醉后行颈椎脱位确认死亡，随后用70%酒精清洁胸部。</li>
		<li>切开胸部正中皮肤和肌肉，打开胸腔。</li>
		<li>完整取出胸腔内的整个心脏，将每份样本的全心置于5 ml 4%多聚甲醛中，室温下过夜固定。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>次日将样本转移至70%乙醇中，样本可在石蜡包埋前保存最多一周。</li>
	<li>对整个心室进行5 µm厚的石蜡切片，并进行标准苏木精-伊红（H&amp;#38;E）染色和Masson三色染色，以评估再生反应5, 7。其中，H&amp;#38;E染色用于观察心肌组织的替代情况，Masson三色染色用于评估纤维化反应5。</li>
	<li>使用切片扫描仪手动选择感兴趣区域，并为每份样本设置至少三个焦点。根据制造商说明，采用默认参数在40×放大倍数下对染色切片进行成像与分析。</li>
</ol>

<ol><li>Lin, Z., Pu, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+for+cardiac+regeneration+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Strategies for cardiac regeneration and repair.</a> Sci Transl Med. 6, 231-239 (2014).</li>
<li>Xin, M., Olson, E. N., Bassel-Duby, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mending+broken+hearts%3A+cardiac+development+as+a+basis+for+adult+heart+regeneration+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mending broken hearts: cardiac development as a basis for adult heart regeneration and repair.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 14, 529-541 (2013).</li>
<li>Mahmoud, A. I., Porrello, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Turning+back+the+cardiac+regenerative+clock%3A+lessons+from+the+neonate%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cardiovasc+Med%22%5BJournal%5D)">Turning back the cardiac regenerative clock: lessons from the neonate.</a> Trends Cardiovasc Med. 22, 128-133 (2012).</li>
<li>Porrello, E. R., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+neonatal+blueprint+for+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">A neonatal blueprint for cardiac regeneration.</a> Stem Cell Res. 13, 556-570 (2014).</li>
<li>Porrello, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+regenerative+potential+of+the+neonatal+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart.</a> Science. 331, 1078-1080 (2011).</li>
<li>Mahmoud, A. I., Porrello, E. R., Kimura, W., Olson, E. N., Sadek, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+models+for+cardiac+regeneration+in+neonatal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Surgical models for cardiac regeneration in neonatal mice.</a> Nat Protoc. 9, 305-311 (2014).</li>
<li>Allen, T. C. Armed Forces Institute of Pathology. Hematoxylin and eosin. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAllen%2C+TC+%22Laboratory+methods+in+Histotechnology%22">Laboratory methods in Histotechnology</a>. Prophet, E. B., Mills, B., Arrington, J. B., Sobin, L. H. , American Registry of Pathology. Washington DC. 53-58 (1992).</li>
<li>Andersen, D. C., Ganesalingam, S., Jensen, C. H., Sheikh, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Do+neonatal+mouse+hearts+regenerate+following+heart+apex+resection%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">Do neonatal mouse hearts regenerate following heart apex resection?</a> Stem cell reports. 2, 406-413 (2014).</li>
<li>Kotlikoff, M. I., Hesse, M., Fleischmann, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comment+on+%27Do+neonatal+mouse+hearts+regenerate+following+heart+apex+resection%3F%27%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">Comment on 'Do neonatal mouse hearts regenerate following heart apex resection?'.</a> Stem cell reports. 3, 2(2014).</li>
<li>Sadek, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-investigator+letter+on+reproducibility+of+neonatal+heart+regeneration+following+apical+resection%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">Multi-investigator letter on reproducibility of neonatal heart regeneration following apical resection.</a> Stem cell reports. 3, 1(2014).</li>
<li>Andersen, D. C., Jensen, C. H., Sheikh, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+to+Sadek+et+al.+and+Kotlikoff+et+al%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">Response to Sadek et al. and Kotlikoff et al.</a> Stem cell reports. 3, 3-4 (2014).</li>
<li>Phifer, C. B., Terry, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+hypothermia+for+general+anesthesia+in+preweanling+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Use of hypothermia for general anesthesia in preweanling rodents.</a> Physiol Behav. 38, 887-890 (1986).</li>
<li>Laflamme, M. A., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerating+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Regenerating the heart.</a> Nat Biotechnol. 23, 845-856 (2005).</li>
<li>Laflamme, M. A., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Heart regeneration.</a> Nature. , 326-335 (2011).</li>
<li>Jesty, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-kit%2B+precursors+support+postinfarction+myogenesis+in+the+neonatal%2C+but+not+adult%2C+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">c-kit+ precursors support postinfarction myogenesis in the neonatal, but not adult, heart.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 13380-13385 (2012).</li>
<li>Gonzalez-Rosa, J. M., Martin, V., Peralta, M., Torres, M., Mercader, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+scar+formation+and+regression+during+heart+regeneration+after+cryoinjury+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Extensive scar formation and regression during heart regeneration after cryoinjury in zebrafish.</a> Development. 138, 1663-1674 (2011).</li>
</ol>

本文的出版费用由Fine Science Tools向侯健博士捐赠资助。

心脏再生在治疗和预防心力衰竭方面展现出巨大潜力1, 2。动物模型对于理解心脏再生机制至关重要，不可或缺3-6。许多两栖动物和鱼类在心脏受损后能够再生心肌组织，这为研究人类心血管疾病提供了重要线索13, 14。然而从进化角度看，小鼠模型与人类之间的心脏病理生理过程应更为保守。哺乳动物模型中心脏再生的研究是一个相对较新但迅速发展的领域，为心力衰竭的治疗提供了新的方向3-6。
近期，心尖切除和心肌梗死两种手术方法已被确立用于研究新生小鼠的心脏再生6。尽管心尖切除提供了相对简便且直接的心肌细胞丢失和/或损伤模型，但与心肌梗死相比，其主要局限在于由于术后高死亡率，该手术无法在出生后第7天（P7）之后实施6。然而，有多种方法可降低该手术的死亡率。对于P7幼鼠的心尖手术，可通过将幼鼠冷却至16°C以实现最佳低温麻醉效果。通常，无菌条件和熟练的手术操作对于成功实施心尖切除手术至关重要。为提高存活率，手术应尽可能快速而轻柔地进行，且采用微创操作可减少出血。此外，ICR/...

人类寿命的延长导致了多种与衰老和生活方式相关的疾病，包括作为主要死亡原因的心力衰竭。然而，由于无法替代丢失或功能失调的心肌细胞，目前的治疗方法只能暂时改善心脏功能1, 2。因此，有必要发现并开发用于心脏再生与修复的创新策略。成年哺乳动物心脏的再生能力有限。来自低等脊椎动物（如有尾两栖类和硬骨鱼类）的研究为理解心脏再生背后的分子和细胞机制提供了前所未有的见解3, 4。最近，新生小鼠心脏再生模型的建立可能有助于识别和表征在人类心脏再生过程中更为进化保守的病理生理事件5。
心尖切除是指手术切除左心室心尖部分。由于该操作在较年长的小鼠中具有很高的致死率，此操作仅限于出生后1至7天（P1至P7）的小鼠6。新生小鼠在心尖切除后的心脏再生过程预期如下：（I）迅速且有效地形成血肿以封闭心尖，防止失血；（II）心肌细胞再生并恢复收缩功能5, 7。近期研究对该模型的重要性和效率引发了争议8-11。因此，清晰且详细地呈现心尖切除操作显得尤为重要。为此，本实验方案基于先前的方案6，以视频形式生动而具体地描述了我进行心尖切除的操作过程。
阐明心脏再生的分子机制对于治疗以心肌细胞丢失和/或损伤为特征的心脏疾病（如心力衰竭1, 2）具有重要意义。鉴于心尖切除术在心脏再生研究中已取得当前进展并展现出良好前景，本研究有望推动该技术在心脏再生研究中的应用与发展。

<table><tbody><tr><td>1.5 毫米带剪刀的 Olsen-Hegar 持针器</td><td>Fine Science Tools</td><td>12002-12</td><td></td></tr><tr><td>2 毫米切割刃 Vannas 弹簧剪</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-03</td><td>虹膜切除剪</td></tr><tr><td>热珠灭菌器</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td></td></tr><tr><td>直齿虹膜镊，直头</td><td>Fine Science Tools</td><td>11064-07</td><td></td></tr><tr><td>弯齿虹膜镊，弯头</td><td>Fine Science Tools</td><td>11065-07</td><td></td></tr><tr><td>Shea 剪刀 - 弯头/钝头-钝头/12 厘米</td><td>Fine Science Tools</td><td>14105-12</td><td></td></tr><tr><td>圆柄缝合打结镊，直头</td><td>Fine Science Tools</td><td>18025-12</td><td></td></tr><tr><td>圆柄 Vannas 弹簧剪</td><td>Fine Science Tools</td><td>15400-12</td><td></td></tr><tr><td>精细止血钳</td><td>Fine Science Tools</td><td>13007-12</td><td></td></tr><tr><td>放大照明灯</td><td>Luxolamp Corp</td><td>IM120&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>加热灯</td><td>Brandt Equipment llc</td><td>51152/3</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Prolene 缝线</td><td>Ethicon</td><td>8889H</td><td></td></tr><tr><td>皮肤胶-Vetbond 组织粘合剂&amp;nbsp;</td><td>3M&amp;nbsp;</td><td>1469</td><td></td></tr><tr><td>无菌棉签</td><td>Dynarex</td><td>4305</td><td></td></tr><tr><td>WEBCOL 酒精消毒垫</td><td>Covidien</td><td>6818</td><td>中号 2 层，每盒 200 片，含 70% 异丙醇</td></tr><tr><td>Curity 多用途海绵</td><td>Covidien</td><td>9024</td><td>无纺布 4 层，4&quot;×4&quot;（10.2 厘米&amp;times;10.2 厘米）</td></tr><tr><td>台面保护垫</td><td>KIMTECH SCIENCE</td><td>7546</td><td>18&quot; × 19.5&quot;（45.72 厘米 × 49.53 厘米）× 50 片</td></tr><tr><td>0.9% 氯化钠溶液，250 毫升</td><td>Hospira Inc.</td><td>NDC 0409-6138-22</td><td></td></tr><tr><td>碘伏消毒液棉签</td><td>Purdue Products L.P.</td><td>NDC 67618-153-03</td><td></td></tr><tr><td>高压灭菌器</td><td>TOMY Digital Biology</td><td>SX-700</td><td>高压蒸汽灭菌器</td></tr><tr><td>切片扫描仪</td><td>HAMAMATSU</td><td>NanoZoomer 2.0-RS</td><td></td></tr></tbody></table>

用于研究早期哺乳动物心脏再生的顶端切除小鼠模型

Apical Resection Mouse Model to Study Early Mammalian Heart Regeneration

由于生活方式的剧烈变化，心血管疾病困扰着全世界。心脏再生在修复和恢复因损伤和疾病而丧失的心肌细胞方面具有巨大前景。与某些低等脊椎动物强大的心脏再生能力不同，成年哺乳动物的心脏通常表现出极有限的心脏再生与修复能力。然而，近期研究发现，在出生后第1至第7天（P1至P7）期间，新生小鼠心脏在心尖切除术（即手术性心室尖端截除并暴露左心室心尖）后仍保留显著的再生潜力，这一发现引发了广泛的科学关注。对此发现的一个主要争议可能源于在尝试重复或拓展这一重要发现时所采用的多种不同的手术相关操作流程。本说明动态呈现了小鼠模型中心尖切除术的材料与方法。该啮齿类动物存活手术的关键步骤包括低温麻醉、开胸术、心室心尖的手术切除、缝合以及小鼠的术后恢复。所述方法可拓展心尖切除小鼠模型在心血管研究中的应用。

小鼠仔鼠在心尖切除术后1天、2天和21天被实施安乐死，取其心脏进行苏木精-伊红（H&amp;E）染色和马松三色染色。马松三色染色中的蓝色区域表示心外膜细胞外基质的沉积5。成功实施心尖切除术后，左心室在术后1天即形成有效血凝块以封闭创面，如图1A所示。随后可观察到血凝块逐渐被吸收并出现早期心脏纤维化，之后由心肌组织逐步替代，至术后21天完成心肌的完全再生（图1B和C）。形态学分析显示，在手术后21天，切除组与假手术组心脏之间无明显差异（图1C和D）。
<img alt="组织学分析，心脏组织，H&amp;E染色，Masson三色染色，术后不同时间点比较。" src="/files/ftp_upload/53488/53488fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1"> 
图1. 典型的H&amp;E染色和Masson三色染色结果。 新生小鼠心脏在心尖切...

本研究展示了一种心尖切除的逐步视频实验方案。心尖切除是近期哺乳动物心脏再生研究中备受关注的一种外科手术方法。本研究可能推动心尖切除作为心脏再生机制研究中的标准方法得以广泛应用。

心血管疾病因生活方式的剧烈变化而困扰着全球。心脏再生在修复和恢复受损心肌功能方面具有巨大潜力……

本实验的总体目标是利用新生小鼠心尖切除术来研究早期哺乳动物心脏再生。该研究有助于回答心脏再生领域的一些关键科学问题，例如介导早期哺乳动物心脏再生的分子与细胞机制是什么。该技术的主要优势在于，心尖切除小鼠模型为研究早期哺乳动物心脏再生提供了一种相对简便且直接的方法。开始操作前，将所有出生第一天的 C57 黑色六系幼鼠从哺乳母鼠身边转移到一个带有新鲜垫料和筑巢材料的清洁小鼠笼中。然后依次将每只新生幼鼠从冰床上转移到手术区域，并将其四肢和尾巴固定于仰卧位。用聚维酮碘消毒胸部，随后用 70% 酒精消毒棉片轻轻擦拭清洁。现在，沿胸腔第四肋间内侧区域做一转移性皮肤切口。使用弹簧剪在心脏心尖处进行切开。为暴露心脏，先用弹簧剪在心脏心尖处做切口，随后钝性分离肋间内肌。使用无菌的6-0缝线将肋骨和肌肉层一起缝合。使用皮肤粘合剂仔细闭合皮肤切口，并将新生幼鼠置于加热灯下恢复约三分钟。然后使用70%酒精消毒垫清理幼鼠身上残留的血液和粘合剂痕迹，并将其放回同窝幼仔中。所有手术完成后，在将新生幼崽放回母鼠巢穴前，将其与母鼠的垫料和排泄物混合。术后第1天，统计假手术组和手术组幼崽的数量，以确定每组的存活率。在术后适当的时间点，依次对每只动物用70%乙醇清洁胸部，切开胸部正中皮肤和肌肉。将整个心脏从胸腔中取出，并在室温下用 5 毫升 4% 多聚甲醛固定组织过夜。次日，将样品转移至 70% 乙醇中保存，时间不超过一周，然后进行石蜡包埋。对整个心室获取 5 µm 厚的石蜡切片后，分别采用苏木精-伊红及 Masson 三色染色法对样品进行染色，以观察切除心脏中的心肌替代情况及纤维化反应。使用切片扫描仪，手动获取每个样本至少三个焦点区域。然后根据制造商的说明，使用扫描仪的默认参数，在40倍放大倍数下分析样本图像。成功进行心尖切除后，在心尖切除后一天内，会有效形成血凝块以封闭左心室。随后可观察到血凝块逐渐被吸收以及早期心脏纤维化的现象，并逐渐被心肌组织所替代，直至术后21天心肌完全再生。事实上，术后三周时，通过形态学分析已无法观察到切除组与假手术组心脏之间的差异。在实施该操作时，必须注意保持无菌条件。 通过此操作，还可进行其他检测，如标记和线性测量，以回答有关心肌细胞增殖和心尖切除的更多问题。观看本视频后，您应能够很好地掌握如何在新生小鼠中进行心尖切除操作。

apical-resection-mouse-model-to-study-early-mammalian-heart

Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

根尖切除小鼠模型来研究早期哺乳动物心脏再生

在本视频中，我们演示了手术切除新生小鼠心脏左心室心尖的步骤。...

新生小鼠心尖切除模型：一种通过手术切除心室心尖以研究新生小鼠心脏再生潜能的外科操作方法

心力衰竭是导致住院的首要原因，也是死亡的主要原因之一。通过建立小鼠左前降支冠状动脉永久性结扎模型，用于研究心肌梗死后的心室重构和心脏功能障碍。本文介绍了在小鼠中进行有创血流动力学测量的技术。...

小鼠左前降支冠状动脉永久性结扎：心肌梗死后心室重构与心力衰竭模型

本方案描述了一种通过手术诱导出生后第1天小鼠左心室心肌梗死，以实现心脏再生的高度可重复模型。该方法包括诱导低温麻醉以及结扎左前降支冠状动脉。...

新生小鼠心肌梗死：一种心脏再生模型

心肌细胞在损伤后的增殖是一个动态过程，需要来自非心肌细胞群体的多种细胞外信号协同作用。通过利用谱系示踪、被动透明化（passive...

通过透明化心脏三维成像捕获靶向细胞群体的心肌损伤反应

本方案旨在将三维生物打印贴片移植到模拟心力衰竭的小鼠梗死心外膜上。内容包括麻醉、开胸手术、左前降支冠状动脉永久性结扎以及将生物打印贴片应用于心脏梗死区域的详细操作步骤。...

在小鼠心肌梗死模型中移植三维生物打印补片

介绍了一种在异位腹部小鼠心脏移植模型中进行血路重建的新技术。...

腹部小鼠心脏移植模型中的血液回路重建

我们提供了一种新生小鼠心脏巨噬细胞分离并移植至成年小鼠心脏的实验方案，该方法可能有助于促进心脏修复。...

新生小鼠心脏巨噬细胞移植至成年小鼠

在小鼠心肌梗死部位周围进行超声引导下的细胞递送是一种安全、有效且便捷的细胞移植方法。...

超声引导下诱导多能干细胞来源的心肌细胞在心肌梗死小鼠中的移植

本文介绍了一种从心肌梗死（MI）后小鼠心脏中分离出足量且高活性的非心肌细胞的实验方案。该方法可用于后续的单细胞测序、流式细胞术分析以及原代细胞培养。...

制备心肌梗死后成年小鼠心脏的非心肌细胞悬液用于单细胞RNA测序

Xenopus tropicalis 是再生研究的理想模型，因为其许多器官具有显著的再生能力。本文介绍了一种通过心尖切除法构建 X. tropicalis...

成年个体中的顶端切除模型 Xenopus tropicalis 心脏

学习根尖切除技术用于研究早期哺乳动物心脏再生机制。该视频演示了新生小鼠心脏手术的标准化操作流程，为心血管再生医学研究提供可靠的实验方法。

用于研究早期哺乳动物心脏再生的顶端切除小鼠模型

探索更多视频