Name: 大鼠模型在腹腹疝修补术中的应用研究 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 47 s
Description: 学习大鼠腹壁疝修补模型，评估猪小肠黏膜下层等生物材料的适用性与生物相容性。该方法为外科生物材料研究提供了可靠的动物实验平台。

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作者谨此感谢 Valerie Schroeder 在本研究技术方面提供的帮助。本模型开发相关工作由 Cook Biotech, Inc.（美国印第安纳州西拉法叶）资助。

本方案中动物的使用已获得圣母大学机构动物护理和使用委员会的批准，遵循所有监管要求和指南，并在获得国际实验动物评估和认可委员会（AAALAC）认证的设施中进行。
1. 动物选择
<ol>
	<li>从信誉良好的供应商或繁殖机构获取无病原体的Sprague Dawley大鼠。 
	注意：通常，实验动物设施的兽医或管理人员可为研究者推荐合适的来源。体重约250 g的大鼠适用于本实验操作。</li>
	<li>手术前一天，对拟使用动物进行检查，以确保其临床健康。具体包括称量动物体重并评估其体况；观察是否存在呼吸异常、开放性伤口或肿块，以及动物的一般活动水平。将任何异常情况记录于手术记录中，并将此类观察结果视为可能的排除标准。</li>
</ol>
2. 动物无菌手术的麻醉与准备
<ol>
	<li>为镇痛，于术前2小时，对大鼠皮下注射1.1–1.2 mg/kg的缓释丁丙诺啡。&#160;手术前&#160;双眼涂抹眼用软膏，并皮下注射2 mL温热的无菌生理盐水。</li>
	<li>用氯胺酮盐酸盐（90 mg/kg）和赛拉嗪（10 mg/kg）经腹腔注射麻醉大鼠。每只眼睛涂抹少量眼用润滑剂，以防止角膜干燥。当动物呼吸稳定，且对用力夹捏脚趾无反应时，表明其已达到适合手术的麻醉水平。可通过观察呼吸深而规律、眼睛颜色正常来进一步确认麻醉深度达到可接受水平与 苍白，可能提示心脑血管灌注不足。</li>
	<li>使用商用剪毛器将腹部腹侧从耻骨至胸骨以及腹侧两侧边缘区域的毛发剪除。用湿润的纸巾擦拭该区域，去除剪下的毛发。</li>
	<li>用碘伏消毒剂擦拭剃毛区域，随后用70%乙醇擦拭。铺置手术巾，使切口区域形成隔离窗口，避免潜在污染。</li>
	<li>穿戴无菌手术衣、口罩和头帽。用肥皂彻底清洗并刷洗手部，然后戴上无菌外科手套。</li>
</ol>
3. 腹部腹侧疝的创建与修复
<ol>
	<li>手术前，通过高压灭菌器对手术器械进行灭菌。</li>
	<li>使用手术刀沿腹正中线做一条长约 3 - 4 cm 的纵向切口，直至腹壁肌肉层。用镊子轻轻提起腹壁，在白线处制造一个小开口。为保护下方内脏，将镊子穿过该开口进入腹腔，作为保护性引导，随后切开肌层，形成一个约 2 cm × 2 cm 的全层缺损，切口位于白线切口两端的中线两侧各约 1 cm 处。</li>
	<li>将预先裁剪好的 2 cm × 2 cm 机械桥接材料（本例中为 4 层 SIS）（图 1）覆盖于缺损处。 
	注意：也可采用“底层覆盖法”（underlay approach），即将材料片置于腹腔内，从内部覆盖缺损区域。</li>
	<li>使用 4-0 丝线或尼龙线，以单纯间断缝合方式将桥接材料的四个角固定于腹壁肌肉上。 
	注意：使用不可吸收缝线可在后续取材时便于识别植入材料，区别于可吸收缝线材料。</li>
	<li>在材料每一边缘等距添加三个额外缝合点以加固固定。检查整个周缘，确保无明显间隙存在，以防内脏通过腹壁突出；若发现此类间隙，应追加缝合以进一步固定边缘。</li>
	<li>使用 4-0 可吸收缝线以单纯间断缝合方式闭合皮下组织。皮肤可用外科缝钉闭合，但也可使用单纯间断缝合方式进行缝合。</li>
	<li>动物未恢复足够意识并能自主维持胸卧位之前，不得无人看管；接受手术的动物在完全从麻醉中恢复之前，不得放回与其他动物共同饲养的环境中。在此期间，应将动物置于温暖区域，以防低体温。</li>
	<li>对接受该手术的动物每日进行检查，确保其完全恢复且伤口正常愈合。术后 7 - 10 天使用拆钉器拆除皮肤缝钉。</li>
</ol>
4. 植入材料的收获
<ol>
	<li>根据研究需求，在预定时间（通常为手术后21至28天）通过二氧化碳过量处死动物，二氧化碳注入速率控制在10%至30%的腔室填充速率。</li>
	<li>使用标准解剖工具切开皮肤和腹壁，暴露植入物区域。 
	注意：若使用不可吸收缝线固定植入物，则可通过原始缝线识别材料（图2）。</li>
	<li>观察任何大体病理学变化，包括不良反应（例如，伤口裂开、脓肿、血清肿、血肿）以及与下方内脏组织粘连的范围和牢固程度。</li>
	<li>通过切割包含植入物的较大范围组织来取出植入部位样本，并将样本置于固定液（如10%中性缓冲福尔马林）中，以备后续组织学检查与表征处理。</li>
</ol>

<ol><li>Poussier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+available+prosthetic+material+for+abdominal+wall+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Visc.+Surg%22%5BJournal%5D)">A review of available prosthetic material for abdominal wall repair.</a> J. Visc. Surg. 150 (1), 52-59 (2013).</li>
<li>Hjort, H., Mathisen, T., Alves, A., Clermont, G., Boutrand, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-year+results+from+a+preclinical+implantation+study+of+a+long-term+resorbable+surgical+mesh+with+time-dependent+mechanical+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Hernia%22%5BJournal%5D)">Three-year results from a preclinical implantation study of a long-term resorbable surgical mesh with time-dependent mechanical characteristics.</a> Hernia. 16 (2), 191-197 (2012).</li>
<li>Ko, R., Kazacos, E. A., Snyder, S., Ernst, D. M. J., Lantz, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tensile+strength+comparison+of+small+intestinal+submucosa+body+wall+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Tensile strength comparison of small intestinal submucosa body wall repair.</a> J. Surg. Res. 135 (1), 9-17 (2006).</li>
<li>Garcia-Moreno, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparing+the+host+tissue+response+and+peritoneal+behavior+of+composite+meshes+used+for+ventral+hernia+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Comparing the host tissue response and peritoneal behavior of composite meshes used for ventral hernia repair.</a> J. Surg. Res. 193 (1), 470-482 (2015).</li>
<li>Soiderer, E. E., Lantz, G. C., Kazacos, E. A., Hodde, J. P., Wiegand, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphologic+study+of+three+collagen+materials+for+body+wall+repair%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Morphologic study of three collagen materials for body wall repair.</a> J. Surg. Res. 118 (2), 161-175 (2004).</li>
<li>Liu, Z., Tang, R., Zhou, Z., Song, Z., Wang, H., Gu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+two+porcine-derived+materials+for+repairing+abdominal+wall+defect+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+One%22%5BJournal%5D)">Comparison of two porcine-derived materials for repairing abdominal wall defect in rats.</a> PLOS One. 6 (5), e20520(2011).</li>
<li>Zhang, J., Wang, G. Y., Xiao, Y. P., Fan, L. Y., Wang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biomechanical+behavior+and+host+response+to+porcine-derived+small+intestine+submucosa%2C+pericardium+and+dermal+matrix+acellular+grafts+in+a+rat+abdominal+defect+model%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The biomechanical behavior and host response to porcine-derived small intestine submucosa, pericardium and dermal matrix acellular grafts in a rat abdominal defect model.</a> Biomaterials. 32 (29), 7086-7095 (2011).</li>
<li>Ma, J., Sahoo, S., Baker, A. R., Derwin, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+muscle+regeneration+with+a+dermis%2Fsmall+intestinal+submucosa+scaffold+in+a+rat+full-thickness+abdominal+wall+defect+model%5BTitle%5D)+AND+%22J.Biomed.Mater.Res.Part+B%22%5BJournal%5D)">Investigating muscle regeneration with a dermis/small intestinal submucosa scaffold in a rat full-thickness abdominal wall defect model.</a> J.Biomed.Mater.Res.Part B. 103 (2), 355-364 (2015).</li>
<li>Greca, F. H., Souza-Filho, Z. A., Giovanni, A., Rubin, M. R., Kuenzer, R. F., Reese, F. B., Araujo, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+porosity+on+the+integration+histology+of+two+polypropylene+meshes+for+the+treatment+of+abdominal+wall+defects+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Hernia%22%5BJournal%5D)">The influence of porosity on the integration histology of two polypropylene meshes for the treatment of abdominal wall defects in dogs.</a> Hernia. 12 (1), 45-49 (2008).</li>
<li>Hiles, M., Record-Ritchie, R. D., Altizer, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+biologic+grafts+effective+for+hernia+repair%3F+A+systematic+review+of+the+literature%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Innov%22%5BJournal%5D)">Are biologic grafts effective for hernia repair? A systematic review of the literature.</a> Surg. Innov. 16 (1), 26-37 (2009).</li>
<li>Helton, W. S., Fisichella, P. M., Berger, R., Horgan, S., Espat, N. J., Abcarian, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-term+outcomes+with+small+intestinal+submucosa+for+ventral+abdominal+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Surg%22%5BJournal%5D)">Short-term outcomes with small intestinal submucosa for ventral abdominal hernia.</a> Arch. Surg. 140 (6), 560-562 (2005).</li>
<li>Franklin, M. E., Trevino, J. M., Portillo, G., Vela, I., Glass, J. L., Gonzalez, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+porcine+small+intestinal+submucosa+as+a+prosthetic+material+for+laparascopic+hernia+repair+in+infected+and+potentially+contaminated+fields%3A+long-term+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Endosc%22%5BJournal%5D)">The use of porcine small intestinal submucosa as a prosthetic material for laparascopic hernia repair in infected and potentially contaminated fields: long-term follow-up.</a> Surg. Endosc. 22 (9), 1941-1946 (2008).</li>
<li>Clarke, K. M., Lantz, G. C., Salisbury, S. K., Badylak, S. F., Hiles, M. C., Voytik, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestine+submucosa+and+polypropylene+mesh+for+abdominal+wall+repair+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Intestine submucosa and polypropylene mesh for abdominal wall repair in dogs.</a> J. Surg. Res. 60 (1), 107-114 (1996).</li>
<li>Sarikava, A., Record, R., Wu, C. C., Tullius, B., Badylak, S. F., Ladisch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antimicrobial+activity+associated+with+extracellular+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Antimicrobial activity associated with extracellular matrices.</a> Tissue Eng. 8 (1), 63-71 (2002).</li>
<li>Serra, R., Grande, R., Butrico, L., Rossi, A., Settimio, U. F., Caroleo, B., Amato, B., Gallelli, L., de Franciscis, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+wound+infections%3A+the+role+of+Pseudomonas+aeruginosa+and+Staphylococcus+aureus%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Anti.+Infect.+Ther%22%5BJournal%5D)">Chronic wound infections: the role of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus.</a> Expert Rev. Anti. Infect. Ther. 13 (5), 605-613 (2015).</li>
</ol>

其中一位作者（CJ）受雇于 Cook Biotech, Inc.，该公司是医用级 SIS 的制造商。

用于腹壁疝修补的材料备受关注，尤其是那些既能提供初始机械支撑桥接作用，又能够整合入宿主组织的材料。在这方面，已有多种材料被研究，包括小肠黏膜下层（SIS）、猪源脱细胞真皮基质和猪心包膜。6,7 这些材料代表了相应组织的细胞外基质，可作为细胞迁移和增殖的支架，从而促进组织整合。
评估疝修补材料需要一种易于操作且具有完整愈合能力的动物模型。大鼠腹壁疝模型便于在评估修补材料的研究中进行操作。 体内已证明该模型可用于对植入性疝修补材料的宿主反应进行比较组织学评估。6 这对于在修复机制中会整合入宿主组织的生物材料（如SIS）而言尤为重要。
大鼠腹下腹疝修补模型可轻松实现高度可重复的操作。无菌操作技术对于成功至关重要，因为手术区域的污染可能改变愈合反应，从而影响实验结果的解读。15 本方案旨在为具有动物手术经验...

腹壁疝是一种常见的临床问题，可能由先天性缺陷、外伤或涉及腹壁的手术切口愈合失败引起。修复通常需要使用植入物来加强腹壁，与仅用缝线关闭腹壁的患者相比，使用植入物治疗的患者复发率较低。1
外科疝修补术通常需要使用植入材料对缺损进行机械性桥接。在这方面，合成材料和天然材料均已被用于疝修补。许多合成材料通常为不可吸收材料，包括聚丙烯、聚对苯二甲酸乙二醇酯（聚酯）和膨体聚四氟乙烯，而其他一些合成植入物则将一种不可吸收材料与可吸收聚合物（如聚甘醇酸）结合使用。1 相比之下，天然材料植入物通常来源于动物或人类尸体组织。用于疝修补的天然材料通常富含胶原蛋白，可作为宿主组织长入和整合的支架。
开发和优化用于腹壁疝修补的新材料需要合适的动物模型来评估候选材料。已有研究在多种物种中开展，包括绵羊2、猪3、兔4、大鼠5,6,7,8和狗9&#160;。使用大鼠进行此类研究的优势在于，该模型易于操作，且存在多种近交品系，可有效控制遗传变异。此外，与上述其他物种相比，大鼠整体体表面积较小，适合评估尚处于实验阶段、数量有限的材料&#160;。同时，使用大鼠所产生的成本较低，有助于相对高效地筛选可用于腹壁疝修补的候选材料&#160;。通常在评估材料时需考虑的因素包括：外科医生操作的便利性、材料强度、与宿主组织的整合能力、生物相容性以及抗感染能力。
例如，猪小肠黏膜下层（SIS）是一种天然生物材料，已被用于多种组织修复适应证，包括腹壁、腹股沟和膈疝的修复。10,11,12 SIS 可迅速整合入宿主组织，且通常具有抗感染能力，因此在污染区域中具有特殊的应用价值。13,14&#160; 在大鼠模型中，SIS 表现出良好的操作性、通过&#160;单轴拉伸断裂试验测定的优良抗张强度，以及在胶原沉积和新生血管形成方面促进组织长入的能力。6,7
在评估候选修复材料时，精确地通过手术桥接缺损是有效建模的关键特征。动物必须达到充分的麻醉状态，并严格遵循无菌操作技术。此外，需精确创建一个标准尺寸的腹壁缺损，并以能够将修复材料牢固固定于缺损边缘的方式进行桥接。8 本方案提供了一种标准手术方法，以大鼠为例，使用SIS作为桥接材料，进行腹壁腹侧疝的制备与修复。

<table><tbody><tr><td>异氟烷（Isoflo）</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>17579</td><td>气体麻醉剂</td></tr><tr><td>Optixcare 眼部润滑剂</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>OPX4240</td><td>眼部润滑剂</td></tr><tr><td>Oster 电推剪</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>6092</td><td>毛发修剪器</td></tr><tr><td>聚维酮碘外科 scrub</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>1618</td><td>碘伏类消毒剂</td></tr><tr><td>无菌手术刀片</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>329</td><td>#10 手术刀</td></tr><tr><td>9&quot; x 12&quot; 一次性手术洞巾</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>SP-RPS</td><td>手术洞巾</td></tr><tr><td>4-0 尼龙缝线</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>SUT 812</td><td>缝合材料</td></tr><tr><td>4-0 可吸收缝线</td><td>Henry Schine Animal Health</td><td>29242</td><td>合成可吸收缝线</td></tr><tr><td>9 mm 自动夹及施夹器</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>ACS KIT</td><td>用于皮肤切口闭合的外科缝合钉</td></tr><tr><td>Torbugesic/镇痛剂</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>12084</td><td>术后镇痛用酒石酸布托啡诺</td></tr><tr><td>小肠黏膜下层（SIS）</td><td>Cook Biotech, Inc.</td><td></td><td>用于桥接实验性腹壁缺损的植入材料</td></tr><tr><td>大鼠</td><td>Harlan, Inc.</td><td>Sprague Dawley</td><td>用于疝模型的实验动物</td></tr></tbody></table>

使用大鼠模型研究腹壁腹侧疝修复

Use of a Rat Model to Study Ventral Abdominal Hernia Repair

腹壁疝是一种相对常见的临床病症，有时需要进行疝修补术（手术修复）。腹壁疝的修复通常需要植入一种材料，以在腹壁缺损处起到机械桥接的作用。生物材料（如猪小肠黏膜下层组织，SIS）不仅可作为细胞向植入物内生长的支架，还能自然地整合入宿主组织中。此类修复材料的研发得益于动物模型的应用，这些模型能够方便地建立实验性腹壁缺损，并可重复、可靠地进行修复操作。本文所述方法介绍了在大鼠模型中建立并修复腹壁疝的手术技术。在此模型中，使用SIS修复实验性腹壁疝后，植入物可在28天内迅速整合入宿主组织。组织学上，植入材料与宿主组织的整合表现为显著的纤维血管化反应。未来对大鼠腹壁疝模型的进一步优化和应用可能涉及糖尿病和/或肥胖动物，以更贴近人类常见的合并症情况。

植入后28天，SIS通常表现出良好的宿主组织整合（图2）。大多数情况下仍可见残留的SIS，但通常需要仔细探查组织才能识别出植入材料。组织学分析证实了大体病理学观察结果，显示组织整合良好，主要为纤维血管组织，仅见极少量残留SIS（图3）。这些结果表明大鼠腹壁疝模型具有良好的应用价值。大鼠易于获取和饲养，术后通常恢复较快。宿主组织向植入生物材料中的长入表明该材料具有良好的生物相容性，并证明SIS可作为组织生长和修复的支架。即使组织整合程度较高，仍可通过用于将材料固定于腹壁的缝线清晰识别出植入部位。因此，可对疝修补材料进行一致且相对快速的评估。
<img alt="使用镊子夹取用于纯化的纳米颗粒滤纸。实验装置，材料科学研究。" src="/files/ftp_upload/53587/53587fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-...

本文描述了腹壁腹侧缺损（疝）的构建与修复方法。该模型可用于研究使用植入材料等修复策略。本文以猪小肠黏膜下层修复实验性疝为例进行了介绍。

腹壁疝是一种相对常见的临床病症，有时需要进行疝修补术（手术修复）。腹壁疝的修复……

该腹壁疝修补模型的总体目标是促进对潜在疝修补生物材料的评估。该方法有助于解答外科生物材料领域中关于候选材料在腹壁疝修补中的适用性和生物相容性的关键问题。该技术的主要优势在于采用大鼠模型，从而能够对可能供应有限的疝修补材料进行评估。通过夹捏足趾确认一只健康的成年250克大鼠已达到适当的麻醉深度后，向动物眼部涂抹润滑剂，并皮下注射无菌生理盐水。使用剪毛器剃除从耻骨至胸骨以及腹部侧面边缘区域的腹侧腹部毛发。用湿润的纸巾擦拭剃毛区域以清除剪下的毛发，然后用碘仿消毒剂和70%乙醇擦拭暴露的皮肤进行消毒。在穿戴适当的个人防护装备后，用肥皂彻底清洗双手，并戴上一副无菌外科手套。接着，对动物进行铺巾，然后使用手术刀沿腹中线向下做一条长约3至4厘米的纵向切口，直至腹壁肌肉层。使用镊子轻轻提起腹壁，通过腹白线制造一个小切口。然后，为保护下方内脏器官，将另一把镊子通过切口插入腹腔，制造一个约 2×2 厘米的全层缺损，切口位于腹白线切口两端中线两侧各约 1 厘米处。接下来，将预先裁剪好的 2×2 厘米植入材料覆盖于缺损处。由于腹壁在切开后会向侧方回缩，因此确定大致的解剖边界至关重要，以确保在组织壁上形成的缺损与植入物的大小相匹配。使用4-0尼龙缝线，采用间断单纯缝合方式，将补片材料的四个角缝合至腹壁。在材料的每一边缘再用三针等距分布的附加缝线固定。然后检查整个环形边缘，确保不存在明显间隙。任何未固定的植入物边缘都可能形成腹腔脏器潜在疝出的开口。因此，必须确保所有边缘均已牢固固定于腹壁。当植入物固定稳妥后，使用外科缝合钉闭合皮肤。术后7至10天，拆除皮肤缝合钉。术后21至28天，处死大鼠。切开皮肤和腹壁以暴露植入物区域。注意任何肉眼可见的病理学变化，包括不良反应以及与下方内脏器官粘连的程度和牢固性。随后，采集包含植入物的较大范围组织样本，并将植入部位样本置于适当的固定液中，以备后续所需的下游处理程序，特别是用于组织病理学检查时。植入后28天，小肠黏膜下层（SIS）通常已良好地整合入宿主组织。大多数情况下仍可见少量残留的SIS，但通常需要对组织进行细致探查才能识别出植入材料。组织学分析进一步证实了大体病理学观察结果，显示组织整合良好，主要为纤维血管组织，残留SIS极少，从而证明了大鼠腹壁疝模型的应用价值。一旦掌握，若操作得当，该技术可在30分钟内完成。在实施该手术过程中，重要的是须牢记为实验动物提供充分的术后镇痛。在实施安乐死后获取植入物，还可采用其他方法（如机械强度测试）进一步回答其他问题，例如，修复的腹壁缺损是否具备足够的强度？观看本视频后，您应充分了解如何在大鼠身上手术创建腹侧腹壁疝。

use-of-a-rat-model-to-study-ventral-abdominal-hernia-repair

Research

科研

JoVE Journal

Bioengineering

生物工程

大鼠模型在腹腹疝修补术中的应用研究

通过将子宫组织自体移植至肠系膜动脉级联，对小鼠和大鼠进行子宫内膜异位症手术诱导的描述。...

通过子宫组织自体移植建立手术诱导型子宫内膜异位症小鼠模型

本文介绍了一种用于刺激大鼠肠系膜血管生成的简单模型。该模型可在相对较短的时间内显著促进毛细血管出芽、增加血管面积和血管密度，且所用组织可实现整个微血管网络的正面对观察，观察精度可达单细胞水平。...

大鼠肠系膜外翻：研究血管生成过程中细胞动态变化的模型

通过将主动脉移植物与腹主动脉进行端侧吻合，可在大鼠体内构建显微外科侧壁动脉瘤。本文提供了详细的分步操作说明，并探讨了解剖学与外科技术细节，以成功建立实验性囊状动脉瘤。...

赫尔辛基大鼠显微外科侧壁动脉瘤模型

在大鼠原位肝移植中，肝上腔静脉（SHVC）的重建仍是一个困难的步骤。本文介绍了一种利用新型磁性吻合技术进行大鼠SHVC重建的逐步操作方案。...

一种采用新型磁性吻合技术进行肝上腔静脉重建的原位肝移植大鼠模型

术后吻合口漏或吻合失败是导致术后发病率和死亡率升高的主要原因。我们建立结肠吻合的手术方法是一种可靠且可重复的研究吻合口愈合机制的方法。...

小鼠结肠吻合术的建立

盆腔器官脱垂影响着全球数百万女性，但一些常见的外科手术干预措施的失败率高达40%。由于缺乏标准的动物模型来研究这一疾病，相关进展受到阻碍。我们提出以下方案，作为子宫骶韧带悬吊术及体内拉伸力学测试的模型。...

子宫骶韧带悬吊大鼠模型的建立

本方案中，首先在Wistar大鼠中建立尿道狭窄模型，随后采用颊黏膜移植物进行尿道重建。通过逆行尿道造影和激光多普勒血流评估，验证了尿道重建效果（狭窄形成后）及移植物的植入情况。...

大鼠模型中尿道狭窄诱导及颊黏膜移植物尿道成形术

本论文介绍了一种在大鼠模型中通过腹正中切口行锐性双极切除术进行5/6肾切除的标准化操作方案，旨在通过精确的方法学手段减少肾实质，从而诱导肾功能不全状态，并最大限度降低技术误差风险。...

通过中线剖腹术采用锐性双极切除法在大鼠中进行5/6肾切除术

宫腔粘连（IUAs）是子宫内膜损伤最常见的病理后果，严重损害生殖功能。创伤和感染被广泛认为是宫腔粘连形成的关键危险因素。我们通过结合两种关键的损伤方法——机械性刮宫和脂多糖诱导感染，成功建立了一种可重复的大鼠宫腔粘连模型。...

通过双重损伤建立大鼠宫腔粘连模型：刮宫与感染

本文描述了一种大鼠皮肤伤口模型，可在组织修复的不同阶段，在生理或病理条件下评估各种治疗剂的效果。此外，还详细介绍了通过手动平面测量法监测组织修复过程中伤口收缩率的实验方案。...

一种大鼠外科皮肤伤口模型：用于伤口愈合研究与生物材料评估的方法

学习大鼠腹壁疝修补模型，评估猪小肠黏膜下层等生物材料的适用性与生物相容性。该方法为外科生物材料研究提供了可靠的动物实验平台。

使用大鼠模型研究腹壁腹侧疝修复

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