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时间推移视频显微镜对EYFP-Parkin的聚集性评估作为蜂窝Mitophagy一个标记
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Time-Lapse Video Microscopy for Assessment of EYFP-Parkin Aggregation as a Marker for Cellular Mitophagy

时间推移视频显微镜对EYFP-Parkin的聚集性评估作为蜂窝Mitophagy一个标记

Full Text
7,579 Views
09:29 min
May 4, 2016

DOI: 10.3791/53657-v

Gabriele Di Sante1, Mathew C. Casimiro1, Timothy G. Pestell2, Richard G. Pestell1,2,3

1Department of Cancer Biology,Thomas Jefferson University, SKCC, 2Department of Medical Oncology,Thomas Jefferson University, SKCC, 3Kazan Federal University

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

在本文中,我们详细描述了一种延时视频显微镜方法,用于测量 EYFP-Parkin 在选择性去除受损线粒体过程中的时间募集。这种 EYFP-Parkin 依赖性去除受损线粒体的动态过程可用作不同实验条件下细胞健康的指标。

这种延时视频显微镜的总体目标是追踪线粒体自噬过程中 Parkin 介导的受损线粒体的选择性去除。这种方法可以帮助回答分子代谢领域的关键问题,例如线粒体自噬如何影响持久的病理状况。这项技术的主要优点是它提供了一个非常强大的工具,用于跟踪标记蛋白质在其分子过程中的动力学。

这种方法可以提供对线粒体生命周期的见解。它也可以应用于其他系统,例如原代细胞培养、胚胎学研究和预测优先级。本研究中使用的永生化小鼠胚胎成纤维细胞在 37 摄氏度的 10 厘米组织培养板上,在含有 5% 二氧化碳的潮湿气氛中在 10 厘米的组织培养板上生长。

当细胞达到 80% 汇合时,通过无菌抽吸丢弃培养基,并加入 10 毫升无菌 PBS。去除 PBS,加入 1 毫升 0.25% 胰蛋白酶 EDTA。将板在 37 摄氏度下孵育 2 到 3 分钟,直到细胞分离。

加入 4 mL 完全 DMEM 培养基,然后重新悬浮细胞。取出 10 微升细胞悬液,用血细胞计数器计数。将 10 到 6 个细胞接种到 10 厘米的组织培养皿中,并孵育 24 小时。

第二天,用 PBS 洗涤细胞一次,然后通过胰蛋白酶消化分离细胞,如前所述。加入 4 mL 完全 DMEM 培养基,重悬细胞,并将细胞悬液转移至 15 mL 试管中。在 250 克和 4 摄氏度下离心细胞 5 分钟。

弃去上清液,将沉淀重新悬浮在一毫升无菌 PBS 中。再次旋转单元格。第二次旋转后弃去上清液。

将 100 微升用于电穿孔的溶液混合物添加到细胞沉淀中,然后通过移液轻轻重新悬浮沉淀。然后向细胞悬液中加入 2 μg EYFP Parkin 表达质粒和 1 μg DsRed2 Mito 表达质粒。使用一次性巴斯德移液器将溶液转移到无菌比色皿中。

使用预设程序对细胞进行电穿孔。电穿孔后,立即向细胞中加入 500 μL 新鲜的预热完全 DMEM 培养基,并将细胞接种在 6 厘米处。实时成像级组织培养板。

将细胞置于 37 摄氏度、含 5% 二氧化碳的潮湿环境中孵育 24 小时。在开始此过程之前,将显微镜室的温度设置为 37 摄氏度。接下来,通过混合以下不含苯酚的 DMEM 制备特定的活成像培养基,补充有 10% FBS、每升 2 毫摩尔的 L-谷氨酰胺、每毫升 100 单位的青霉素和 100 毫克/毫升链霉素。

在水浴中将培养基预热至 37 摄氏度。通过无菌抽吸丢弃电细胞的培养基,并加入一毫升预热的活成像培养基。将板在 30 摄氏度下孵育 37 分钟。

在确认显微镜的腔室处于 37 摄氏度的稳定温度后。将 5% 的二氧化碳流入腔室。小心地,不要大的移动或振荡,将带有电穿孔单元的板放入显微镜的腔室中。

使用软件界面,设置显微镜以检测来自 EYFP Parkin 和 DsRed2 Mito 表达载体编码的融合蛋白的荧光信号。打开延时视频显微镜软件。在上方菜单中,为 EYFP Parkin 选择 FITC,为 DsRed2 Mito 选择 Rhodamine。

选择 20 倍的放大倍率。使用软件界面,寻找表达两种共转染载体的单个细胞并配准位置。对于每个实验条件,至少对 10 个细胞执行此作。

选择菜单 Apps,然后单击 Multi Dimensional Acquisition。在 Multi Dimensional Acquisition 窗口中,选择所需的参数,例如采集次数、每次采集之间的时间间隔以及记录的单元格的位置。单击 Acquire,开始对两种荧光信号进行基础采集。

每 5 分钟收集一次图像,总间隔为 15 分钟。在进行图像采集时,准备预热的实时成像培养基,其中含有羰基氰化物 4 三氟氧基甲氧基苯腙或 FCCP,其浓度是最终工作浓度的两倍。中断采集过程,将 1 毫升预热的含 FCCP 的实时成像培养基轻轻加入显微镜腔室内的板中。

添加 FCCP 后,在重新开始图像采集之前重新聚焦显微镜非常重要。如前所述重新启动采集过程,并使用记录的位置收集总共三个小时的图像。图像采集完成后,保存所有采集的图像以供以后分析。

此处显示的是 FCCP 给药前成纤维细胞中 EYFP-Parkin 和 DsRED2-Mito 荧光信号的延时图像。白色框表示右侧各个面板的放大区域。在基础时间点,以绿色显示的 EYFP-Parkin 在整个细胞中均匀扩散。

线

粒体网络(以红色显示)似乎相互关联良好,如白色箭头所示。FCCP 给药后,在 5 分钟时观察到由于膜去极化引起的线粒体分级。然而,EYFP-Parkin 仍然均匀地扩散在整个细胞质中。

在 FCCP 给药后 55 分钟,EYFP-Parkin 被募集到受损的线粒体膜上以触发线粒体自噬过程。FCCP 给药后 EYFP-Parkin 向线粒体膜的运动显示在这部具有代表性的延时电影中。一旦掌握,如果执行得当,这项技术可以在两个小时内完成。

开发后,这项技术为自噬实验线粒体回收领域的研究人员铺平了道路。允许细胞研究线粒体自噬过程作为细胞中的线粒体质量控制。

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