2016年2月25日
本文介绍了一种改良的相对简便的方法,利用荧光染料二氨基荧光素-2 二乙酸酯(DAF-2DA)和二氢乙啶(DHE),对肥胖小鼠模型新鲜分离的完整主动脉进行内皮表面(en face)同时检测和可视化细胞内一氧化氮(NO)与超氧阴离子(O2.−)。
本实验的总体目标是利用荧光染料 DAF-2DA 和 DHE,在 freshly isolated intact mouse aortas(新鲜分离的完整小鼠主动脉)中同时检测细胞内一氧化氮和超氧阴离子。该方法可协助实验室研究人员在心血管生理学领域(如内皮功能障碍和eNOS解偶联)开展相关研究。该技术的主要优势在于,能够在离体条件下对完整血管中的一氧化氮和超氧阴离子进行简单、精确的直接检测与同步可视化。
本实验方案中,构建一个可加热至 37 摄氏度并用来自二氧化碳气罐的 95% 氧气和 5% 二氧化碳混合气体进行通气的器官浴系统。首先,配制足量的新鲜克雷布斯-林格碳酸氢盐缓冲液,用于浸泡目标组织。例如,一次实验中主动脉需要 200 毫升缓冲液。
开启器官浴槽系统,并将温度调节至37摄氏度。用克雷布斯-林格碳酸氢盐缓冲液清洗浴槽后,向每个浴槽中加入5毫升克雷布斯-林格碳酸氢盐缓冲液,并打开气体供应,用95%氧气和5%二氧化碳混合气体通气30分钟。保持浴槽加盖。
同时,准备一瓶经通气的冰冻克雷布斯-林格碳酸氢盐缓冲液。切除胸主动脉后,立即将整个组织浸入盛有冰冻克雷布斯-林格缓冲液的培养皿中。在解剖显微镜下,去除心脏和主动脉弓,同时保持胸主动脉节段处于缓冲液中。
然后,使用手术剪和镊子将主动脉从附着的血管周围组织中分离出来。接着,用镊子夹住组织边缘,利用注射器注入冰冻的 Krebs-Ringer 缓冲液,轻轻冲洗血管腔内的血液。必须彻底冲洗掉血管腔内的血凝块,因为它们可能产生人为信号,干扰荧光信号;但同时应控制冲洗力度,避免损伤内皮层。
现在,将清洗后的主动脉环切成三毫米长的节段。准备好清洗后的主动脉环后,对其进行染色。用镊子仅夹住主动脉环的外膜侧,避免夹紧血管,将清洗后的主动脉节段转移至已准备好的器官浴槽中。
将动脉在缓冲液中平衡30分钟。半小时后,向器官浴槽中加入乙酰胆碱,使其终浓度为1微摩尔,并在乙酰胆碱中孵育动脉10分钟。同时,在1.5毫升微量离心管中,用预热的克列布斯缓冲液配制1毫升染色液。
然后用锡箔纸包裹试管,以尽量减少光照,并将其置于 37 °C 环境中。乙酰胆碱刺激后,将主动脉环从器官浴槽转移至染色液试管中,在避光且通气的条件下孵育 30 分钟。自此步骤之后的所有操作均应尽量避免光照。
接下来,将主动脉环转移至盛有 Krebs 缓冲液的新离心管中,孵育 1 分钟。此洗涤步骤重复进行三次。然后,在室温下用 4% 多聚甲醛溶液固定主动脉环 30 分钟。
固定步骤完成后,将环状组织转移至DAPI溶液中,在室温下孵育三分钟以进行复染。随后,用PBS洗涤主动脉环三次,每次一分钟。在移动环状组织时,务必注意内皮组织的脆弱性。
在显微镜下,将主动脉环置于载玻片上,用显微外科剪刀沿纵轴剪开。然后,在保持主动脉湿润的同时,去除其表面多余的液体。使用两把显微外科镊子将卷曲的主动脉展平,使其内皮面朝下紧贴载玻片表面。
在此过程中,不要来回移动主动脉。此步骤非常关键,但操作难度较大,建议在正式实验前充分练习。
然后,将封片剂滴加到主动脉上。盖上盖玻片,并用指甲油封固。在避光条件下空气干燥后,使用共聚焦显微镜对切片进行成像。
使用200赫兹的扫描速度、1024 × 1024像素的分辨率以及0.25微米的z轴步进厚度。观察DAF-2DA时,使用氩离子激光器,激发荧光设为488纳米,发射光检测设为515纳米。观察DHE时,激发荧光设为514纳米,检测波长设为605纳米。
在使用10倍物镜聚焦后,将物镜调整至40倍放大倍数。接着,以DAPI染色的细胞核作为解剖标志,通过调节控制面板上的z轴位置,确定内皮层的范围。随后,从管腔边界处的内皮层开始,扫描穿过整个内皮层的厚度,并记录图像。
对每个样本至少扫描三个不同的视野。通过给予高脂饮食喂养14周,使年轻的C57黑6小鼠变得肥胖。对照组则喂食正常饲料。
14 周后,检测了它们的胸主动脉。染色前,组织在 1 纳摩尔的 eNOS 抑制剂 L-NAME 中孵育一小时。绿色显示的 DAF-2T 信号是由一氧化氮将无荧光的 DAF-2 转化而来。
因此,染色表明细胞中存在一氧化氮。类似地,当二氢乙啶(DHE)被超氧阴离子氧化时,会发出红色荧光信号。因此,红色越明显的样本,其细胞内的超氧阴离子含量越高。
对共聚焦荧光图像进行定量分析显示,饲喂高脂饮食的小鼠主动脉内皮层中一氧化氮生成减少,而L-NAME敏感性超氧阴离子生成增加。这些数据支持肥胖可导致eNOS解偶联的观点。观看本视频后,您应能够充分理解如何检测一氧化氮和超氧阴离子,以及如何在完整血管中使用荧光染料。
一旦掌握,该技术若操作得当,可在六小时内完成。在进行该操作过程中,重要的是始终注意保持内皮层在整个操作过程中的完整性,并且在固定步骤之前,务必始终将血管浸没于克雷布斯-林格缓冲液中,以维持内皮细胞的活性。
结合该操作流程,还可进行其他检测,例如分析血管的血管运动反应,以回答更多问题,如内皮细胞在调节血管张力中的生理功能。
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本文介绍了一种利用荧光染料DAF-2DA和DHE对新鲜分离的完整小鼠主动脉中一氧化氮(NO)和超氧阴离子(O2−)进行同时检测与可视化观察的详细实验方案。该方法用于研究内皮功能及其功能障碍,特别是在肥胖诱导的血管改变背景下,为血管氧化状态的离体分析提供了一种简便而精确的技术途径。
在完整动脉内皮中同时进行一氧化氮和超氧阴离子的正面检测,满足了早期心血管研究中对血管氧化状态进行直接、定量评估的关键需求。该技术可提高血管功能障碍模型中靶点验证和机制去风险的预测可信度,支持心血管代谢药物发现中的风险调整型项目决策。该方法具有良好的可重复性和特异性,能够实现可靠的跨研究比较,并确保从发现到临床前验证阶段的转化连续性。
这种基于荧光的检测方法可融入从发现到临床前研究的连续过程中,在血管研究中连接早期机制性研究与转化生物标志物的开发。