Name: 检测皮质片段在细菌孢子萌发 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 35 s
Description: 学习使用比色法检测艰难梭菌孢子萌发过程中的皮质片段和还原糖。该方法利用标准实验室试剂定量分析孢子萌发动态，为微生物学研究提供可靠的实验方案。

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本项目由美国国家过敏与传染病研究所资助，资助编号为5R01AI116895。本内容仅由作者负责，不一定代表美国国家过敏与传染病研究所或美国国立卫生研究院的官方观点。

1. 样品制备&#160;
<ol>
	<li>将 C. difficile 芽孢在 65 °C 下热激活 30 分钟，然后置于冰上保存。 
	注意：C. difficile 芽孢的制备与纯化可参照先前描述的方法7,9,10进行。</li>
	<li>配制萌发溶液，体积为 X + 1 ml&#160;，其中 X 为实验过程中需采集的样品数量。 
	注意：萌发溶液的组成取决于所研究的细菌芽孢种类。在检测 C. difficile 芽孢萌发时，我们使用含有 10 mM Tris（pH 7.5）、150 mM NaCl、100 mM 甘氨酸和 10 mM 牛磺胆酸的去离子水溶液。</li>
	<li>开始实验前，取 1.0 ml 不含芽孢的萌发溶液作为检测皮层片段的空白对照。</li>
	<li>将芽孢加入萌发溶液中，使 OD600 达到约 3.0，并迅速涡旋混匀。 
	注意：在进行 B. subtilis 芽孢萌发研究时，我们使用的芽孢 OD600 值与 C. difficile 相同。 
	注意：该浓度的芽孢适用于监测 C. difficile 芽孢萌发过程中皮层片段的释放。本实验中芽孢的用量应根据不同的细菌或菌株通过实验确定。</li>
	<li>加入芽孢后立即取 1.2 ml 样品，在室温下以 14,000 × g 离心 1 分钟。此为零时间点样品。</li>
	<li>将离心后样品的 1.0 ml 上清液转移至新管中，用于后续皮层片段分析。 
	注意：若需监测 DPA，应另取 100 μl 样品，采用基于铽荧光的检测方法测定溶液中 DPA 的含量9,18,19。</li>
	<li>将收集的样品在 -80 °C 下冷冻保存。</li>
	<li>以固定时间间隔重复步骤 1.4 和 1.5，直至完成所有时间点的取样。 
	注意：由于离心和取样所需时间限制，实验过程中无法实现间隔小于 2 分钟的时间点采集，因此我们的取样间隔为每 2 分钟一次，持续 14 分钟。</li>
	<li>作为还原糖检测与定量的阳性对照，设置以下浓度的 N-乙酰葡萄糖胺（nmol）：0、12.5、25、50、100、250、500 和 5,000。这些样品应与皮层片段样品同时制备，并一同检测，以确保标准曲线与萌发芽孢产生的数据具有相关性。</li>
	<li>所有时间点样品收集完毕后，对样品进行冻干处理。 
	注意：我们使用 2 ml 螺口管对样品进行冻干。</li>
</ol>
2. 测量皮层片段
<ol>
	<li>将冻干样品重悬于 120 µl 含 1% 苯酚和 0.5% β-巯基乙醇的 3 N HCl 溶液中。</li>
	<li>将重悬后的样品转移至 2 ml 螺口管中。 
	注意：为确保实验可重复性，请确保所有冻干样品均完全重悬并转移。</li>
	<li>在 95 °C 循环水浴中孵育样品 4 小时。</li>
	<li>孵育结束后，将样品置于冰上冷却至低温。</li>
	<li>用 120 µl 的 3 M NaOH 中和样品。</li>
	<li>向每个样品中加入 80 µl 饱和碳酸氢钠溶液和 80 µl 5% 乙酸酐溶液，涡旋混匀。</li>
	<li>在室温下孵育样品 10 分钟。</li>
	<li>将样品重新放入 95 °C 水浴中，精确孵育 3 分钟。 
	注意：此步骤对时间敏感，孵育时间过长可能影响后续信号的生成。</li>
	<li>从水浴中取出样品，立即置于冰上冷却。</li>
	<li>向每支试管中加入 400 µl 6.54% K2B4O7·4H2O 溶液，涡旋混匀。</li>
	<li>在 95 °C 循环水浴中孵育样品，精确持续 7 分钟。 
	注意：此步骤对时间敏感，孵育时间过长可能影响后续信号的生成。</li>
	<li>取出样品，置于冰上放置 5 分钟。</li>
</ol>
3. 显色试剂
<ol>
	<li>在样品置于冰上时（步骤 2.12），配制显色试剂。将 0.320 g 的 p-二甲基氨基苯甲醛（DMAB；Ehrlich 试剂）溶于 1.9 ml 冰醋酸中。 
	注意：该试剂对时间、温度和光敏感，不应提前配制。</li>
	<li>待 DMAB 完全溶解后，加入 100 µl 10 N HCl 并涡旋混匀。</li>
	<li>加入 5 ml 冰醋酸并涡旋混匀。</li>
</ol>
4. 比色反应
<ol>
	<li>将每份冷却的大脑皮层样品各取 100 µl 转移至新的 1.5 ml 微量离心管中。</li>
	<li>向每份样品中加入 700 µl 新鲜配制的显色液。</li>
	<li>立即将样品放入 37 °C 水浴中，准确孵育 20 分钟。</li>
	<li>将每份样品中的 200 µl 转移至透明的 96 孔板中。</li>
	<li>使用酶标仪在 585 nm 波长下定量检测样品。样品初始颜色为黄色，阳性反应会变为紫色。皮层组织越多，紫色越深。</li>
</ol>

<ol><li>Al-Hinai, M. A., Jones, S. W., Papoutsakis, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Clostridium+sporulation+programs%3A+diversity+and+preservation+of+endospore+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol+Mol+Biol+Rev%22%5BJournal%5D)">The Clostridium sporulation programs: diversity and preservation of endospore differentiation.</a> Microbiol Mol Biol Rev. 79, 19-37 (2015).</li>
<li>Setlow, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germination+of+spores+of+Bacillus+species%3A+what+we+know+and+do+not+know%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Germination of spores of Bacillus species: what we know and do not know.</a> J Bacteriol. 196, 1297-1305 (2014).</li>
<li>Tan, I. S., Ramamurthi, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spore+formation+in+Bacillus+subtilis%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol+Rep%22%5BJournal%5D)">Spore formation in Bacillus subtilis.</a> Environ Microbiol Rep. 6, 212-225 (2014).</li>
<li>Fimlaid, K. A., Shen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diverse+mechanisms+regulate+sporulation+sigma+factor+activity+in+the+Firmicutes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Diverse mechanisms regulate sporulation sigma factor activity in the Firmicutes.</a> Curr Opin Microbiol. 24, 88-95 (2015).</li>
<li>Popham, D. L., Helin, J., Costello, C. E., Setlow, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+peptidoglycan+structure+of+Bacillus+subtilis+endospores%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Analysis of the peptidoglycan structure of Bacillus subtilis endospores.</a> J Bacteriol. 178, 6451-6458 (1996).</li>
<li>Atrih, A., Zollner, P., Allmaier, G., Foster, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+analysis+of+Bacillus+subtilis+168+endospore+peptidoglycan+and+its+role+during+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Structural analysis of Bacillus subtilis 168 endospore peptidoglycan and its role during differentiation.</a> J Bacteriol. 178, 6173-6183 (1996).</li>
<li>Sorg, J. A., Sonenshein, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bile+salts+and+glycine+as+cogerminants+for+Clostridium+difficile+spores%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Bile salts and glycine as cogerminants for Clostridium difficile spores.</a> J. Bacteriol. 190, 2505-2512 (2008).</li>
<li>Paredes-Sabja, D., Shen, A., Sorg, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clostridium+difficile+spore+biology%3A+sporulation%2C+germination%2C+and+spore+structural+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Clostridium difficile spore biology: sporulation, germination, and spore structural proteins.</a> Trends Microbiol. 22 (7), (2014).</li>
<li>Francis, M. B., Allen, C. A., Sorg, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spore+cortex+hydrolysis+precedes+DPA+release+during+Clostridium+difficile+spore+germination%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Spore cortex hydrolysis precedes DPA release during Clostridium difficile spore germination.</a> J Bacteriol. 197 (14), (2015).</li>
<li>Francis, M. B., Allen, C. A., Shrestha, R., Sorg, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bile+acid+recognition+by+the+Clostridium+difficile+Germinant+Receptor%2C+CspC%2C+is+important+for+establishing+infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Bile acid recognition by the Clostridium difficile Germinant Receptor, CspC, is important for establishing infection.</a> PLoS Pathog. 9, e1003356(2013).</li>
<li>Moir, A., Smith, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Genetics+of+bacterial+spore+germination%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The Genetics of bacterial spore germination.</a> Annu. Rev. Microbiol. 44, 531-553 (1990).</li>
<li>Zhang, P., Kong, L., Wang, G., Setlow, P., Li, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+of+Raman+tweezers+and+quantitative+differential+interference+contrast+microscopy+for+measurement+of+dynamics+and+heterogeneity+during+the+germination+of+individual+bacterial+spores%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+biomedical+optics%22%5BJournal%5D)">Combination of Raman tweezers and quantitative differential interference contrast microscopy for measurement of dynamics and heterogeneity during the germination of individual bacterial spores.</a> Journal of biomedical optics. 15, 056010(2010).</li>
<li>Ghuysen, J. -M., Tipper, D. J., Strominger, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymes+that+degrade+bacterial+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Enzymes that degrade bacterial cell walls.</a> Methods Enzymol. 8, 685-699 (1966).</li>
<li>Park, J. T., Johnson, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+submicrodetermination+of+glucose%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">A submicrodetermination of glucose.</a> J Biol Chem. 181, 149-151 (1949).</li>
<li>Thompson, J. S., Shockman, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modification+of+the+Park+and+Johnson+reducing+sugar+determination+suitable+for+the+assay+of+insoluble+materials%3A+its+application+to+bacterial+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">A modification of the Park and Johnson reducing sugar determination suitable for the assay of insoluble materials: its application to bacterial cell walls.</a> Anal Biochem. 22, 260-268 (1968).</li>
<li>Paredes-Sabja, D., Setlow, P., Sarker, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SleC+is+essential+for+cortex+peptidoglycan+hydrolysis+during+germination+of+spores+of+the+pathogenic+bacterium+Clostridium+perfringens%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">SleC is essential for cortex peptidoglycan hydrolysis during germination of spores of the pathogenic bacterium Clostridium perfringens.</a> J Bacteriol. 191, 2711-2720 (2009).</li>
<li>Paredes-Sabja, D., Sarker, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+the+cortex-lytic+enzyme+SleC+from+non-food-borne+Clostridium+perfringens+on+the+germination+properties+of+SleC-lacking+spores+of+a+food+poisoning+isolate%5BTitle%5D)+AND+%22Can+J+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Effect of the cortex-lytic enzyme SleC from non-food-borne Clostridium perfringens on the germination properties of SleC-lacking spores of a food poisoning isolate.</a> Can J Microbiol. 56, 952-958 (2010).</li>
<li>Hindle, A. A., Hall, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dipicolinic+acid+%28DPA%29+assay+revisited+and+appraised+for+spore+detection%5BTitle%5D)+AND+%22The+Analyst%22%5BJournal%5D)">Dipicolinic acid (DPA) assay revisited and appraised for spore detection.</a> The Analyst. 124, 1599-1604 (1999).</li>
<li>Kort, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+heat+resistance+of+bacterial+spores+from+food+product+isolates+by+fluorescence+monitoring+of+dipicolinic+acid+release%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Assessment of heat resistance of bacterial spores from food product isolates by fluorescence monitoring of dipicolinic acid release.</a> Appl Environ Microbiol. 71, 3556-3564 (2005).</li>
<li>Elson, L. A., Morgan, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+colorimetric+method+for+the+determination+of+glucosamine+and+chondrosamine%5BTitle%5D)+AND+%22The+Biochemical+journal%22%5BJournal%5D)">A colorimetric method for the determination of glucosamine and chondrosamine.</a> The Biochemical journal. 27, 1824-1828 (1933).</li>
<li>Ramirez, N., Abel-Santos, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirements+for+germination+of+Clostridium+sordellii+spores+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Requirements for germination of Clostridium sordellii spores in vitro.</a> J. Bacteriol. 192, 418-425 (2010).</li>
<li>Akoachere, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indentification+of+an+in+vivo+inhibitor+of+Bacillus+anthracis+spore+germination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Indentification of an in vivo inhibitor of Bacillus anthracis spore germination.</a> J. Biol. Chem. 282, 12112-12118 (2007).</li>
<li>Duncan, C. L., Strong, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+medium+for+sporulation+of+Clostridium+perfringens%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Improved medium for sporulation of Clostridium perfringens.</a> Appl Microbiol. 16, 82-89 (1968).</li>
<li>Heffron, J. D., Lambert, E. A., Sherry, N., Popham, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contributions+of+four+cortex+lytic+enzymes+to+germination+of+Bacillus+anthracis+spores%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Contributions of four cortex lytic enzymes to germination of Bacillus anthracis spores.</a> J Bacteriol. 192, 763-770 (2010).</li>
<li>Meador-Parton, J., Popham, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+analysis+of+Bacillus+subtilis+spore+peptidoglycan+during+sporulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Structural analysis of Bacillus subtilis spore peptidoglycan during sporulation.</a> J Bacteriol. 182, 4491-4499 (2000).</li>
<li>Lambert, E. A., Popham, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Bacillus+anthracis+SleL+%28YaaH%29+protein+is+an+N-acetylglucosaminidase+involved+in+spore+cortex+depolymerization%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">The Bacillus anthracis SleL (YaaH) protein is an N-acetylglucosaminidase involved in spore cortex depolymerization.</a> J Bacteriol. 190, 7601-7607 (2008).</li>
<li>Wang, S., Shen, A., Setlow, P., Li, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+Dynamic+Germination+of+Individual+Clostridium+difficile+Spores+Using+Raman+Spectroscopy+and+Differential+Interference+Contrast+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Characterization of the Dynamic Germination of Individual Clostridium difficile Spores Using Raman Spectroscopy and Differential Interference Contrast Microscopy.</a> J Bacteriol. 197, 2361-2373 (2015).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

在受到刺激后，处于萌发过程中的孢子会失去其抗性特性，且此过程无需大分子合成。当孢子萌发被触发时，孢子核心会释放吡啶二羧酸（DPA），并吸收水分以进行交换2。由于休眠孢子含有大量的DPA，孢子核心处于强烈的渗透压之下，而特化的肽聚糖结构——皮层——则通过充当限制膨胀的屏障，帮助防止核心吸水膨胀2。
上述方法利用 Ehrlich 试剂（一种黄色溶液）检测还原糖的存在，通过可测量的紫红色变化进行判断。在皮质水解过程中，N-乙酰葡糖胺（NAG）和 N-乙酰胞壁酸（NAM）糖被释放出来（释放形式取决于水解酶的作用程度，可能以二糖或多糖形式存在）。盐酸（步骤 2.1）水解糖苷键后，生成具有游离还原端的单糖7。用等量氢氧化钠中和酸（步骤 2.5）后，NAG 和 NAM 单糖周围的羟基被乙酸酐酰化（步骤 2.6）13。随后，通过加热样品使未反应的乙酸酐转化为乙酸（步骤 2.8）。根据 Morgan 和 Elson 的假设20，末端醛基可自发转化为烯醇式结构。在碱性条件下（步骤 2.10），...

芽孢是细菌的一种代谢休眠形态，使细菌能够在不利环境中长期存活。在许多产孢细菌中，芽孢形成通常由营养缺乏诱导，但该过程也可能受到pH变化、氧气暴露或其他应激因素的调控1。处于代谢休眠状态的芽孢对紫外线辐射、干燥、高温和冷冻具有很强的抗性2。目前关于芽孢形成过程的大部分知识来源于模式生物Bacillus subtilis的研究。芽孢形成始于DNA复制和轴丝结构的形成3,4。随后形成不对称隔膜，将细胞分裂为两个大小不等的区室。较大的区室（母细胞）将较小的区室（前孢子）完全包裹。母细胞与前孢子协同调控基因表达，促使芽孢成熟，最终母细胞裂解，将休眠芽孢释放到周围环境中1。
孢子的结构和组成在多种细菌物种中是保守的。孢子核心的含水量低于营养细胞，并富含吡啶二羧酸（DPA）1,2。在孢子形成过程中，DPA被泵入孢子核心，同时置换出水分。核心外围为内层孢子膜，在大多数产孢细菌中，识别可触发萌发（萌发剂）的小分子的受体就位于此膜上2。紧邻孢子内膜外侧是一层细胞壁肽聚糖。在细胞壁肽聚糖外侧，包围着一层特化的肽聚糖结构（皮层），其组成成分与细胞壁肽聚糖大部分相同［交替的N-乙酰葡萄糖胺（NAG）和N-乙酰胞壁酸（NAM）］。然而，皮层中约50%的NAM残基已被转化为胞壁酸-δ-内酯5,6。在孢子萌发过程中，这些胞壁酸-δ-内酯残基可被孢子皮层裂解酶（SCLEs）识别，从而使得皮层被降解（此过程对完成萌发至关重要），而细胞壁则不受影响。皮层外侧依次为外膜和多层外壳蛋白2。
控制萌发过程对形成孢子的细菌至关重要。当萌发受体与其相应的萌发剂相互作用时，萌发过程即被启动。2在许多形成芽孢的细菌中，这些萌发剂是氨基酸、糖类、核苷酸、离子或它们的组合。2. C. difficile 孢子萌发由特定胆汁酸的组合启动，[例如，牛磺胆酸（TA）] 和氨基酸（例如，甘氨酸）7-10尽管存在差异 C. difficile 萌发途径以及其他产孢细菌中研究的途径，例如 枯草芽孢杆菌， 所有情况的共同之处在于必须降解芽孢皮层，以允许营养细胞从萌发的芽孢中生长出来2,8皮层降解可通过SCLEs CwlJ/SleB（如在 枯草芽孢杆菌（B. subtilis） 或 SleC（在许多梭菌中存在）。皮层的水解作用减轻了对细胞壁和孢子的限制，从而允许核心充分再水合，这是重新激活细胞代谢所需多种蛋白质的必要步骤。 2.
当孢子萌发时，休眠的孢子会从相位明亮状态转变为相位暗淡状态，这一过程可通过在600 nm处的光密度（OD）变化来测量11。先前有报道称，OD的大部分变化是由于孢子释放了吡啶二羧酸（DPA）所致12。在我们最近的研究中，旨在比较C. difficile孢子萌发的时间进程，并监测DPA和皮层片段的释放情况9。在本研究中，关键是要在萌发孢子刚开始释放皮层片段时就对其进行监测。
此处使用的比色测定法基于Ghuysen建立的检测具有还原末端糖类的方法 等.13. 由于已有其他研究者描述了还原糖的检测方案14 或已修改了这些方案15，关于这一主题的文献可能令人困惑。本文中，我们详细描述了一种比色法检测萌发过程中释放的还原糖的分步方法 C. difficile 孢子。尽管本研究使用 C. difficile 孢子，该方案可检测其他产孢细菌的孢子萌发过程中释放的还原糖9,16,17.

<table><tbody><tr><td>2.0 ml 螺口管</td><td>USA scientific</td><td>1420-3700</td><td></td></tr><tr><td>p1000 Eppendorf 移液器</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>p200 Eppendorf 移液器</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>p20 Eppendorf 移液器</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 - 1,250 &amp;#956;l 移液器吸头</td><td>VWR</td><td>89079-486</td><td></td></tr><tr><td>1 - 200 &amp;#956;l 移液器吸头</td><td>VWR</td><td>89079-458</td><td></td></tr><tr><td>N-乙酰-D-葡萄糖胺</td><td>Sigma</td><td>A3286-25G</td><td></td></tr><tr><td>盐酸 - 10 N</td><td>BDH-Aristar</td><td>BDH3032-3.8LP</td><td></td></tr><tr><td>乙酸酐</td><td>Alfa Aesar</td><td>L04295</td><td></td></tr><tr><td>碳酸氢钠</td><td>BDH</td><td>BDH0280-500G</td><td></td></tr><tr><td>四硼酸钾四水合物</td><td>Alfa Aesar</td><td>39435</td><td></td></tr><tr><td>氢氧化钠</td><td>BDH</td><td>BDH8019-500G</td><td></td></tr><tr><td>4-(二甲氨基)苯甲醛</td><td>Sigma</td><td>156477-100G</td><td></td></tr><tr><td>饱和酚</td><td>Fisher</td><td>BP1750-400</td><td></td></tr><tr><td>2-巯基乙醇</td><td>Aldrich</td><td>M6250-100ML</td><td></td></tr><tr><td>SpectraMax M3</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td></td></tr><tr><td>冰乙酸</td><td>BDH</td><td>BDH3098-3.8LP</td><td></td></tr><tr><td>加热循环水浴锅</td><td>VWR Scientific</td><td>Model 1136</td><td></td></tr><tr><td>Microtest 96</td><td>Falcon</td><td>353072</td><td>96 孔透明组织培养板</td></tr><tr><td>培养管</td><td>VWR</td><td>89000-506</td><td></td></tr><tr><td>冷冻干燥机</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>加热金属块</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>涡旋振荡器</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

检测细菌芽孢萌发过程中的皮层碎片

Detecting Cortex Fragments During Bacterial Spore Germination

越来越多的研究发现，Clostridium difficile 及其他梭菌属（Clostridia）细菌的内生孢子萌发过程与模式产孢细菌枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis）存在差异。孢子萌发由小分子萌发剂触发，且无需大分子合成。尽管芽孢杆菌属（Bacillus）和梭菌属（Clostridium）物种在孢子萌发机制上存在差异，但两者均需水解类似肽聚糖的皮层结构，从而使孢子核心膨胀并重新水合。重新水合后，代谢活动得以启动，并最终导致营养细胞的萌发生长。在孢子萌发过程中检测水解后的皮层片段可能较为困难，而对先前所描述检测方法的修改也可能令人困惑或难以重复。因此，基于我们近期使用该检测方法的研究报告，本文详细阐述了一种在细菌孢子萌发过程中通过比色法检测皮层片段的逐步操作方案。

表1展示了使用NAG标准品的典型结果。这些数据用于生成标准曲线。表2展示了在添加了100 mM甘氨酸和10 mM TA（促进萌发条件）或仅添加100 mM甘氨酸（非萌发条件）的萌发缓冲液中进行萌发实验的典型结果。在无TA存在时，C. difficile芽孢不萌发，溶液中皮层片段的含量几乎无变化。然而，在同时存在TA和甘氨酸的情况下，C. difficile芽孢发生萌发，并将皮层片段释放到溶液中。这一过程表现为反应样品在585 nm处的光密度（OD585）随时间逐渐升高。本实验中释放的皮层片段总量（nmol）通过类似于图1B的标准曲线计算得出。在该实验中，大多数皮层在萌发剂处理后15分钟内已被水解（或释放），表明在此时间范围内大多数芽孢已完成萌发（图2；与先前发表的研究结果一致7）。
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本文介绍了一种比色法，用于检测细菌芽孢萌发过程中还原糖的存在。

艰难梭菌及其他梭菌属细菌的内生孢子萌发过程，正被发现与模式产孢菌的……存在差异

本逐步实验方案的总体目标是在细菌芽孢萌发过程中定量检测皮层片段或还原糖的含量。该方法将详细说明在芽孢萌发过程中检测皮层片段或还原糖存在的各个步骤。该技术的主要优势在于大多数实验室均具备成功完成该方案所需的试剂和设备。开始此操作时，将一管艰难梭菌芽孢置于加热块中，在65摄氏度孵育30分钟。孵育结束后，将试管放在冰上。萌发液的配方取决于所研究的细菌芽孢种类。为了检测艰难梭菌芽孢的萌发，我们使用含有10毫摩尔 Tris（pH 7.5）、150毫摩尔氯化钠、100毫摩尔甘氨酸和10毫摩尔牛磺胆酸的去离子水溶液。每个样品准备1毫升萌发溶液，并额外多准备1毫升。在开始检测前，将1毫升萌发溶液转移至微量离心管中，并放置一旁备用。这将作为皮层碎片检测的空白对照。接下来，向萌发溶液中加入孢子，使 OD600 约为 3.0，并短暂涡旋。该浓度的孢子有助于在艰难梭菌孢子萌发过程中适度释放皮层碎片。加入孢子后立即取1.2毫升样品至新的微量离心管中，并放入离心机。然后在室温下以14,000 × g离心一分钟。此为零时间点。离心后，将一毫升上清液转移至新的2毫升螺旋盖管中，并于-80°C冷冻保存。以固定时间间隔重复取样、离心和冷冻的操作，直至每个时间点的样品均被收集完毕。由于离心和取样所需时间，本实验无法实现短于两分钟的时间点，因此样品每两分钟采集一次，共采集14分钟。在制备皮质样品过程中，若需监测吡啶二羧酸，应另取100微升样品并分装至预冷的微量离心管中，置于冰上。同时准备含有以下量的N-乙酰葡萄糖胺的标准曲线样品：0、12.5、25、50、100、250、500和5,000 纳摩尔，溶于萌发溶液中。每个时间点的样品采集完成后，将样品从冷冻环境中取出，并与空白样品及标准曲线样品一同进行冻干处理。然后将所有样品于 -80 °C 保存，直至使用。在检测当天，用 120 µL 含苯酚和β-巯基乙醇的盐酸溶液重悬冻干样品，包括对照品和标准曲线样品。接着，将所有重悬后的样品转移至新的 2 mL 螺口离心管中。然后将它们置于95摄氏度的循环水浴中孵育4小时。孵育结束后，将样品置于冰上直至冷却。随后加入120微升3摩尔的氢氧化钠以中和样品。接下来，向每个样品中加入80 µL饱和碳酸氢钠溶液和80 µL 5%乙酸酐溶液，涡旋混匀。然后在室温下孵育样品10分钟。孵育结束后，将样品重新转移至95 °C水浴中，准确加热3分钟。请注意，此步骤对时间敏感，时间过长可能影响后续信号的产生。将样品从水浴中取出，并在冰上冷却。向每根试管中加入 400 µL 的 6.54% 四硼酸钾四水合物，然后涡旋混匀。将样品放入循环水浴中，在 95 摄氏度下准确孵育七分钟。此步骤对时间敏感。孵育结束后立即取出样品，置于冰上冷却五分钟。在样品置于冰上的同时，配制显色试剂。将 0.320 克二甲基对氨基苯甲醛（DMAB）溶解于 1.9 毫升冰醋酸中。注意该试剂对时间、温度和光线敏感，不应提前配制。待DMAB完全溶解后，加入100 µL 10 N盐酸并涡旋混匀样品。然后加入5 mL冰醋酸，再次涡旋混匀。进行比色反应时，将每份冷却后的皮质样品或对照样品各100 µL转移至新的1.5 mL微量离心管中。向每个样品中加入 700 微升新鲜配制的显色液。立即将样品转移至 37 摄氏度水浴中，并精确孵育 20 分钟。孵育结束后，取每个样品 200 微升转移至透明的 96 孔板中。样品初始应呈黄色，但如果存在还原糖（表明皮质存在），颜色将变为紫色。此处，许多样品未显示出明显的紫色。然而，250、500 和 5,000 纳摩尔的样品在视觉上与零纳摩尔的阴性对照有所不同。使用酶标仪测定585纳米处的吸光度。在585纳米光密度下测得的标准样品信号最符合线性回归。下表显示了使用N-乙酰葡萄糖胺标准品的典型结果。随后利用这些数据生成了此处所示的标准曲线。在促进萌发的条件下进行萌发实验，萌发缓冲液中添加100毫摩尔甘氨酸和10毫摩尔牛磺胆酸；在非萌发条件下，仅添加100毫摩尔甘氨酸。在缺乏牛磺胆酸的情况下，艰难梭菌孢子不会萌发，溶液中皮层碎片的存在量几乎没有变化。然而，在同时存在牛磺胆酸和甘氨酸的情况下，艰难梭菌孢子会萌发并将皮层碎片释放到溶液中。这表现为反应样品在585 nm处的光密度（OD585）随时间逐渐增加。本实验中释放的皮层碎片数量通过标准曲线计算得出。从本实验结果可以看出，在萌发剂处理后15分钟内，大部分皮层已被水解或释放，这表明在此时间段内大多数孢子已经萌发。观看本视频后，您应能够充分理解如何在细菌芽孢萌发过程中检测萌发液中的皮层碎片或还原糖。在进行该实验操作时，需特别注意反应时间，以确保检测反应能够正确进行。

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Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

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