2016年8月29日
本文介绍了一种新型的人源化小鼠肝脏模型,该模型通过将未成熟且具有扩增能力的人类肝干细胞移植到白蛋白-毒素受体介导的细胞敲除(TRECK)/SCID小鼠体内而建立。
本手术干细胞移植程序的总体目标是利用可进行细胞增殖、成熟和分化的未成熟人肝干细胞前体细胞,建立一种具有人肝脏功能的新型嵌合小鼠模型,以实现药物代谢能力的获得。该方法提供了一种强有力的工具,可创建支持人供体肝干细胞前体细胞增殖、分化并重建受损小鼠受体肝脏的微环境。该技术的主要优势在于,所扩增的细胞能够成熟,并且肝脏几乎能够完全重建。
首先,通过将1毫升含苯酚的0.85%氯化钠溶液加入1毫克白喉毒素(DT)中,配制浓度为1毫克/毫升的白喉毒素或DT储备液。将Albtrek scid小鼠置于仰卧位,于腹中线左侧或右侧、膝盖弯曲处下方,以45度角插入针头,进行腹腔注射。使用胰岛素注射器,按每20克体重小鼠注射100微升新鲜配制的0.3微克/毫升DT溶液。在注射DT后48小时,将小鼠放入固定器中,并将其尾巴置于30°C水浴中加热约10分钟,以扩张血管。
然后从尾尖向内2厘米处,使用锋利的手术刀片在尾部做一个1毫米的切口,用毛细管收集血液。将含有血液的微量毛细管以1500 × g离心5分钟,通过分离上清液与细胞沉淀来收集血清。取50 µL血清1:20稀释液,用移液器将其加到GOT ASTP3载玻片上。
然后使用多功能全自动干化学分析仪,根据制造商的说明书,测定反应产物在650纳米处的吸光度。利用细胞分选仪,从人原代胎肝细胞中分选表达CDCP1、CD90和CD66细胞抗原的人肝干细胞,获得CDCP1阳性、CD90阳性、CD66阴性的亚群。将细胞接种于IV型胶原包被的培养皿中,在37摄氏度下孵育。
当细胞融合度达到80%至90%时,使用PBS洗涤细胞一次。随后加入0.05%胰蛋白酶-EDTA,并在室温下孵育。在显微镜下观察到细胞开始漂浮或自由流动时,加入8毫升含10%胎牛血清(FBS)的DMEM/F12培养基以终止酶消化反应。
使用10毫升血清移液管,在将细胞转移至15毫升锥形管前缓慢悬浮细胞。在4摄氏度条件下,以100 × g离心5分钟。加入10毫升含10% FBS的DMEM/F12培养基,小心重悬细胞沉淀,并使用细胞计数仪测定细胞数量。
将细胞分装,每份含1 × 10⁶个细胞,溶于50 µL PBS中,每只小鼠一份,置于冰上保存直至移植。按照文本方案麻醉小鼠后,轻捏后肢足垫以检查反射。然后在眼睛上涂抹兽用眼膏,防止干燥。
使用电动剪刀剃除手术区域的毛发,并用70%乙醇和聚维酮碘进行消毒。在左侧肋缘下方的左 flank 区做一厘米长的皮肤切口,随后切开左侧腹壁,再切开腹膜。
接下来,小心地暴露脾脏。然后以5度角将一支100微升微量注射器(配32号、1/2英寸针头)插入脾脏,深度约为脾脏厚度的一半,从器官一端至另一端直接注入50微升PBS缓冲液中含1×10⁶个人肝干细胞的细胞悬液,随后拔出针头。为防止注射后细胞外漏,用手指轻轻按压注射部位持续2分钟。
将脾脏放回小鼠体内,使用常规连续缝合方式缝合肌肉和皮肤以关闭切口。立即将小鼠侧卧置于已预热至37摄氏度的笼盒中。避免笼盒垫料与手术部位接触,并按照文本方案所述进行动物监测。
移植后4至6周,按照文本方案处死小鼠,用手术剪同时剪开皮肤和筋膜,打开腹腔。以手术剪作为撑开器,沿腹白线分离腹膜上方的结缔组织,打开腹膜腔。用镊子提起胸骨。
然后刺破膈肌,并沿胸骨两侧向上剪至颈肩带。切断肝脏胸腔侧的下腔静脉,将食管从肝脏前方拉出。移除膈肌,然后以其作为手柄,开始将肝脏从腹腔中拉出。
下腔静脉会将肝脏固定在原位,因此需切断下腔静脉,注意避免过早分离右侧肾上腺。在肝叶交界处将各肝叶彼此分离,并按照试剂盒说明书中的方案将其包埋于OCT中。
将含有肝组织的OCT置于冷冻切片机的金属网格中并进行冷冻。在冷冻切片机中,于-18 °C下切取5 µm厚的组织切片,并将其贴附于室温载玻片上。将样品储存于-80 °C环境中。
最后,根据已报道的方法制备用于苏木精-伊红(H&E)染色的切片,并根据文本方案进行ELISA操作。如这些H&E染色切片所示,DT处理的小鼠表现出肝组织结构紊乱,并伴有血清AST活性升高所提示的充血改善。在移植后六周,由人肝干细胞衍生的细胞通过替代小鼠原有的肝细胞,重建了肝脏结构。
移植后第4天,肉眼可见小的人类肝细胞簇均匀分布于肝脏周围。至第45天,这些细胞簇已增殖形成较大的细胞团。如图所示,通过人源细胞核以及细胞角蛋白8/18抗体染色,于移植后6周首次证实小鼠肝脏中存在人类肝细胞。
人ALB阳性且CK19阴性的肝细胞类似于功能性肝细胞,而同时表达人ALB和CK19的细胞则表现出向肝细胞和胆管细胞分化的双潜能特性。在人源化肝脏中,可见围绕肝小叶分布的多个圆形细胞簇,其具有清晰的人源细胞核并表达CK8/18,表明人肝干细胞具有克隆形成能力。最终,移植后一个月内肝脏细胞的重殖水平达到约90%,并在重殖的小鼠肝脏中检测到人白蛋白的分泌。
一旦掌握,若操作得当,手术细胞移植可在10分钟内完成。进行该操作时,需注意肝损伤应局限于柔软的肝脏组织。为防止细胞泄漏,应避免发生细胞移植外漏。
结合该操作,还可采用其他方法,例如利用人源细胞进行体外直接重编程的基因转染,以探索人源细胞与本研究模型的融合。该技术建立后,为肝病学领域的研究人员提供了探索人源药物代谢、药物相互作用、肝毒性以及肝炎病毒的类人肝脏模型。观看本视频后,您应能够充分掌握如何分离与扩增肝干细胞、诱导肝损伤,以及通过脾脏移植细胞以构建具有人源肝功能的嵌合小鼠模型。
请务必注意,白喉毒素可以被控制,但在进行此操作时,应始终采取重要预防措施,例如避免心脏和肝脏发生坏死。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本研究介绍了一种利用白蛋白-毒素受体介导的细胞敲除(TRECK)/SCID小鼠构建的新型人源化小鼠肝脏模型。该模型通过移植未成熟且具有扩增能力的人肝干细胞建立,可在嵌合环境中实现人类肝脏功能。
利用人类肝干细胞生成人源化小鼠肝脏,解决了研究人类特异性肝脏生物学的临床前模型中的一个关键空白。这种嵌合模型能够实现功能性人肝细胞的移植,支持对药物代谢、药物相互作用以及肝毒性进行更具转化相关性的研究。该模型为肝脏疾病相关发现项目中的靶点验证和先导化合物筛选提供了一个可扩展的平台,有助于降低研发风险。
该方法通过在靶点验证后支持人类肝脏生物学研究、通过代谢谱分析助力先导化合物优化,并利用人源化组织读数为临床前安全性评估提供依据,从而融入药物发现的全过程。