2016年12月25日
本协议描述,通过间隙连接通道测量细胞间通讯手术刀装载荧光染料转移技术。间隙连接通讯是一个主要的细胞过程,其中组织稳态维持这种细胞信号中断了不良的健康影响。
总体目标是提供一种简单的检测方法,以测量通过哺乳动物细胞群的间隙连接细胞间通讯,从而满足广泛的体外药理学和毒理学需求。这种方法可以帮助回答毒理学领域的关键问题,例如化合物是否通过调节间隙连接细胞间通讯来影响组织的发育或维持。该技术的主要优点是,它可以简单快速地评估大量细胞中响应毒物和毒素的间隙连接功能。
演示该程序的是我实验室的本科生研究助理 Ajna Uzuni。开始实验时,将 3 次 10 至 5 个 WB-F344 大鼠肝上皮细胞接种到直径为 35 毫米的培养板上,该培养板上含有 Eagle 改良培养基和 5% 胎牛血清。在培养箱中培养细胞,直到它们达到 100% 汇合,并继续对细胞进行实验处理。
为了继续进行剂量反应实验,将 10 μL 和 20 μL 先前制备的 2 毫摩尔菲 100% 乙腈储备液,以及 4 μL、6 μL 和 8 μL 20 毫摩尔菲 100% 乙腈储备液加入三板细胞中,每增加 2 mL 生长培养基储备液。接下来,将 4 μL、6 μL、8 μL、10 μL 和 20 μL 的 100% 乙腈溶液加入到三板细胞中,每增加一体积的乙腈溶液含有 2 mL 生长培养基,作为载体对照。加入乙腈后,孵育板。
为了进行时间响应实验,将 7 微升 20 毫摩尔菲的 100% 乙腈储备液加入到三块细胞板中,每个时间点含有 2 毫升生长培养基。然后,向三板细胞中加入 7 微升 100% 乙腈,每个时间点含有 2 毫升生长培养基,作为载体对照。孵育每个指定时间点的板。
轻轻倒出培养基,丢弃培养基。用 3 mL PBS 冲洗细胞,并在两次冲洗之间倾析或吸出。将溶解在 PBS 中的 1 毫升每毫升 1 毫克荧光素黄染料移液到每个细胞板中。
用食指和拇指捏住手术刀,将染料预加载到细胞中。将手术刀垂直于培养板边缘并距培养板边缘 5 毫米,然后利用重力让手术刀从该垂直角度轻轻滚动至 15 度角。将刀片滚动穿过整个板的三个不同区域的细胞群。
接下来,将细胞与 LY 溶液在室温下孵育 3 分钟。倒出或吸出 LY 并冲洗细胞以去除所有细胞外染料并消除细胞外背景荧光。然后,加入 0.5 毫升 4% 磷酸盐缓冲福尔马林溶液以固定细胞。
使用落射荧光显微镜以 200 倍放大倍率观察固定细胞。对齐所有板,使压痕线平行于水平视野。生成了用递增剂量的菲处理的 WB-F344 大鼠肝上皮细胞的一系列 SL-DT 图像。
荧光素黄荧光染料迁移的减少是由菲剂量增加引起的,表明毒物诱导的间隙连接细胞间通讯 (GJIC) 的抑制作用增加。对从 SL-DT 图像获得的对照分数或 FOC 值进行平均,进行统计分析,然后绘制成图表。按照此程序,可以执行其他方法,例如单个转导蛋白的蛋白质印迹,以回答其他问题。
比如,这些化合物是否激活了细胞穿孔的促有丝分裂事件?
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本方案描述了一种使用刀片加载-荧光染料转移的技术,用于检测通过间隙连接通道的细胞间通讯。该方法提供了一种简单的检测手段,用于评估哺乳动物细胞中的间隙连接性细胞间通讯,这对于理解组织稳态至关重要。
间隙连接细胞间通讯(GJIC)可作为功能性生物标志物,用于评估毒性物质对组织稳态的破坏作用,并评价天然产物的保护效应。刀片划痕-荧光染料转移(SL-DT)技术能够实现对GJIC抑制作用的快速、群体水平评估,有助于在早期发现阶段进行机制性风险排除。该检测方法可根据化合物对器官功能相关细胞通讯通路的影响,提供可靠的预测依据,从而优先筛选候选化合物。
SL-DT 检测作为一种发现阶段的工具,用于提供机制性见解,在先导化合物优化之前用于筛选具有高组织破坏风险的化合物。