2016年9月20日
一种用于酶筛选的高通量检测方法被描述。该多重即用型检测试剂盒包含预先选定的 C显色 P聚合物 H水凝胶(CPH)基质与复杂 我不溶性 C显色 B生物质(ICB)底物。靶向酶为多糖降解酶 内-酶和蛋白酶。
该显色检测方法的总体目标是以高通量形式,针对一系列不同的显色底物筛选多种酶。该方法有助于回答酶发现领域中的关键问题,例如寻找能够降解生物质的新酶活性。该技术的主要优势在于,显色底物具有四种不同的颜色,使该技术具备高通量、极高可靠性和成本效益的特点。
首先,通过向每个孔中加入 200 微升活化溶液来激活 96 孔滤膜分析试剂盒板。在室温下静置孵育 10 分钟,不进行振荡。使用离心机和任何标准的 96 孔收集板进行后续操作。
为了离心去除现有的活化溶液,向显色聚合物水凝胶(CPH)底物中加入100微升无菌水,并通过抽真空或离心去除稳定剂。重复洗涤两次。为准备酶反应,向检测试剂盒板的每个孔中加入150微升100 mM醋酸钠缓冲液(pH 4.5)以及5微升三种不同浓度的内切纤维素酶溶液。
将产品板置于检测试剂盒板下方,以收集振荡过程中反应板可能产生的泄漏液体。然后将检测试剂盒板置于水平摇床中,在室温下以100 rpm转速孵育30分钟。为获得可靠的数据,孵育期间必须对反应混合物进行振荡。
将检测试剂盒板置于产品板下方,放入离心机中,在 2,700 × g 条件下离心 10 分钟,以将反应产物转移至产品板的各孔中。离心结束后,目视检查产品板,确认每孔中的液体体积是否大致相同。
使用酶标仪,在630 nm波长下测定收集板中不同绿色CPH底物的吸光度。根据文本方案分析并绘制数据。若要使用红色不溶性显色生物质或ICB-小麦秸秆进行显色测定,首先向测定板的每个孔中加入200微升活化溶液。
然后,将酶标板在室温下静置孵育10分钟。用100微升无菌水洗涤孔三次,以去除稳定剂。随后,每孔加入150微升100 mM乙酸钠缓冲液(pH 4.5)和5微升不同浓度的内切木聚糖酶溶液(10单位/毫升)。
将产物板置于底物板下方,以收集振荡过程中底物板可能产生的泄漏液体。在室温下以100 rpm的转速孵育反应2小时。孵育结束后,将含有下方产物板的检测试剂盒板放入离心机中,以2,700 × g离心10分钟,使反应产物转移至产物板的各孔中。
检查每个孔中的液体体积是否大致相同。然后,使用酶标仪在517 nm处测定红色ICB-小麦秸秆收集板的吸光度。根据文本方案进行数据分析。
图中展示了不同酶浓度下CPH-阿拉伯木聚糖对木聚糖酶的剂量反应示例,其中可直观观察到酶浓度降低的情况。采用更详细的分光光度法定量方法,以吸光度对酶浓度作图。信号强度与酶活性相对应。
在此酶筛选实验示例中,一种内切纤维素酶在三种不同浓度下针对多种CPH底物进行了测试。如图所示,该酶对CPH-葡聚糖、CPH-木聚糖和CPH-木葡聚糖表现出除纤维素酶活性外的额外活性,而对CPH-半乳甘露聚糖仅表现出较低活性。在相同条件下,使用市售的酶作为阳性对照对相同的CPH底物进行了消化处理。
本实验结果表明,所有底物的降解程度均随酶浓度的增加而升高。在本实验中,共包含5种ICB底物和19种CPH底物,用于分析彩绒革菌(Phanerochaete chrysosporium)在三种不同pH条件下分泌的酶。P. chrysosporium 的酶可降解多种葡聚糖、淀粉和木聚糖。
半纤维素阿拉伯聚糖和果胶半乳聚糖以及RGI的信号可能较弱。所产酶在酸性条件下的活性高于中性或弱碱性条件。一旦掌握,若操作得当,该技术可在一小时之内完成。
在进行该实验操作时,重要的是要记住在孵育过程中混匀反应体系。该技术在开发完成后,将为高通量筛选领域的研究人员探索生物技术中新的酶活性提供有效途径。观看本视频后,您应能够充分掌握如何使用该筛选试剂盒。
本文介绍了一种利用多重底物进行酶筛选的高通量显色检测方法。该检测试剂盒包含显色聚合物水凝胶(CPH)和不溶性显色生物质(ICB)底物,用于检测多糖降解内切酶和蛋白酶。
高通量酶筛选在底物可获得性和检测可扩展性方面面临瓶颈,限制了对生物燃料、纺织和食品工业应用至关重要的碳水化合物活性酶(CAZymes)进行快速功能表征。本显色检测方法通过在96孔板中实现多重、颜色编码的底物测试,弥补了技术空白,提高了早期酶发现中的预测可靠性,并支持酶工程流程中的决策判断。该方法通过在多种多糖底物上提供定量、可重复的活性读数,增强了从靶点识别到类临床前验证的转化连续性。
该检测适用于从早期发现到先导物鉴定的整个研究流程,可在投入蛋白质工程或发酵放大之前,支持针对碳水化合物降解酶的假设验证、通路解析和生物学风险评估。