Name: 斜脊髓切片用于神经前根刺激的制备 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 10 s
Description: 学习制备小鼠斜脊髓切片技术，用于腹根刺激和运动神经元识别。该方法适用于P2至P11小鼠，通过灌注低钠ACSF、精确解剖和振动切片，实现可靠的神经生理学研究。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者感谢Marin Manuel和Olivia Goldman-Szwajkajzer在拍摄照片过程中提供的帮助。作者还感谢Arjun Masukar和Tobias Bock对稿件的校对。本研究获得以下机构的经费支持：法国国家科研署（HYPER-MND，ANR-2010-BLAN-1429-01）、美国国立卫生研究院神经疾病与中风研究所（NIH-NINDS，R01NS077863）、Thierry Latran基金会（OHEX项目）、法国肌病协会（资助编号16026）以及Target ALS，特此致谢。Felix Leroy曾获得 &#34;合同制博士生&#34; 来自巴黎高等师范学校（Cachan）。

实验遵循欧洲指令（86/609/CEE 和 2010-63-UE）以及法国法律法规，并已获得巴黎笛卡尔大学伦理委员会的批准。
1. 脊髓切片制备
<ol>
	<li>每日或提前一天配制以下溶液。若需过夜保存，用95% O₂2 和5% CO2 并保存在密闭瓶中，冷藏。
	<ol>
		<li>制备低钠溶液 + 人工脑脊液（ACSF）： 3 mM KCl，1 mM NaH2PO4，230 mM 蔗糖，26 mM NaHCO₃3，0.8 mM CaCl2，8 mM MgCl2，25 mM 葡萄糖，0.4 mM 抗坏血酸，1 mM Na-犬尿酸，2 mM Na-丙酮酸。用 95% O₂2 和5% CO2 （pH 7.4）。由于Na-犬尿酸钠常难以溶解，务必购买材料表中列出的产品。</li>
		<li>制备K-葡萄糖酸盐溶液： 130 mM K-葡萄糖酸盐，15 mM KCl，0.05 mM EGTA，20 mM HEPES，25 mM 葡萄糖，1 mM Na-犬尿酸盐，2 mM Na-丙酮酸盐，用KOH调节pH至7.4。</li>
		<li>制备人工脑脊液（ACSF）： 130 mM NaCl，2.5 mM KCl，2 mM CaCl₂2，1 mM MgCl2，1 mM NaH2PO4，26 mM NaHCO₃3，25 mM 葡萄糖，0.4 mM 抗坏血酸，2 mM Na-丙酮酸盐。用 95% O₂2 和5% CO₂2 (pH 7.4)</li>
		<li>在开始解剖之前，将2%琼脂溶解于80 ml K-葡萄糖酸盐溶液中，并保持温热 60 °C.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>心脏内灌注
	<ol>
		<li>对出生后2至11天（P2至P11）的雌性和雄性小鼠进行此制备。</li>
		<li>通过腹腔注射 0.1 ml 25 mM 戊巴比妥钠（50 mg/kg）对小鼠进行麻醉。</li>
		<li>使用针或胶带将小鼠仰卧固定在装有硅胶的大培养皿上。后续解剖操作均使用体视显微镜进行。</li>
		<li>握住胸骨尖端，提起胸部，用精细剪刀剪断膈肌。随后剪开两侧肋骨，打开胸腔，以暴露心脏。</li>
		<li>在用27G针头穿刺左心室之前，先剪开右心房。</li>
		<li>用冰冻的低钠溶液灌注+ ACSF。30 秒后，低 Na+ 应观察到ACSF从心房流出。低钠含量可防止细胞产生动作电位，并减少解剖过程中的细胞死亡。</li>
		<li>在解剖显微镜下持续将针头保留在心脏内，直至血液排尽后肝脏变为黄色。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>脊髓解剖
	<ol>
		<li>将动物处死并取俯卧位。</li>
		<li>快速去除背部的皮肤（图1A1）。在肩部做两个切口，并沿胸腔向下切开（图1A2然后尽可能在尾部区域的低位切断脊索，以将带有肋骨起始段的脊椎骨与动物下半部分分离。再次翻转动物体位，去除仍附着在肋骨上的内脏组织。</li>
		<li>将脊柱转移至另一个较小的、盛有硅胶的培养皿中，并使用4枚昆虫针将脊柱固定为背侧朝上（图1A).</li>
		<li>持续用通入碳合气的ACSF灌注动物（约 4 °C) 进行背侧椎板切除术时，从头端暴露脊髓（图1B）。操作时，将精细剪刀的尖端插入骨骼与脊髓之间，从头端开始逐段剪除骨骼，注意远离白质。使用镊子将已剪开的骨片向两侧交替拨开，以避免接触脊髓组织。图1B1).</li>
		<li>使用最小的弹簧剪刀和镊子，提起硬脊膜，夹住硬脊膜的游离部分，在其两侧进行剪切，以避免剪刀损伤脊髓。沿头尾轴方向剪开。 
		注意：硬脑膜是一种半透明的连续性膜；在此年龄段，软脑膜过于脆弱，在解剖和切片过程中易发生破损图1B2).</li>
		<li>去除硬脑膜后，使用钝头的玻璃或塑料尖端轻轻将脊髓向左侧推动，使其位于半切脊柱所形成的沟槽左侧，然后从头侧开始，在背根和腹根进入脊髓处远端数毫米处（至少几毫米），切断右侧的腹根和背根， 图1B2).</li>
		<li>在左侧重复上述操作，始终从头侧向尾侧进行。若为左利手，则先从左侧开始，再移至右侧。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>琼脂包埋
	<ol>
		<li>将脊髓从脊柱中抽出。使用更细的昆虫针将脊髓固定，背面向上，并小心去除仍附着在其上的任何膜组织。图1C1).</li>
		<li>清洁后，修剪两端（图1C2）。将一枚弯曲的昆虫针插入脊索的前部以操纵脊索，并记录其方向（图中箭头所示 图1C2然后将脊髓转移至冰浴的K-葡萄糖酸盐溶液中。  
		注意：该溶液模拟脑脊液的细胞内成分，可在运动神经元被切断后防止细胞因渗透压休克而死亡26.</li>
		<li>当脊髓置于细胞内溶液中后，将装有琼脂的烧杯从干浴器中取出，并置于冰水混合物中冷却。</li>
		<li>持续搅拌的同时测量温度。当温度达到 38 °C 将脊髓浸入，用昆虫针固定并使其头端朝下放置。确保脊髓尽可能保持平直，远离器壁，尾端略微向上。图1D1).</li>
		<li>将烧杯放入冰水混合物中，以使琼脂尽快凝固。确保烧杯保持原位，且导线尽可能保持平直（图1D1).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>切片
	<ol>
		<li>凝固后，以琼脂块底部与脊髓组织呈特定角度的方式切割含脊髓的琼脂块 35° 脊髓腰段的角度（箭头所示） 图1D2）。背侧应朝上，远离基部（图1D2). 
		注意：此步骤是实验中的关键环节，用于维持运动神经元池与它们发出的腹根之间的连续性。</li>
		<li>使用氰基丙烯酸酯胶水将组织块粘附于振动切片机的样品腔内。将其浸入K-葡萄糖酸盐溶液中，并加入冰冻的K-葡萄糖酸盐溶液冰浆以保持浴液低温（低于 2 °C).</li>
		<li>切取 350 - 400 µm 腰段较厚的组织切片（可通过其弯曲度和较大直径识别）。在正确方向定位后（见1.4.1节），使用刀片从背侧向腹侧表面切割，并连续向头侧推进切片。通常可获得4–5个符合要求的切片，其腹根延伸长度达2 mm或以上。采用以下参数： 10° 角度、70 Hz 振动频率和 10 mm/min 切片速度。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>孵育
	<ol>
		<li>将切片转移至ACSF中 34 °C约30分钟后，将切片冷却至室温，开始记录实验。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="解剖过程与组织制备，一系列实验图像，生物学研究。" src="/files/ftp_upload/54525/54525fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 
图1. 解剖过程 
A1：去除背部皮肤以暴露脊柱。 A2：切断肩部和肋骨以分离脊柱。 B1：将脊柱固定在盛有硅胶的培养皿中（背侧朝上，尾侧朝左）。 B2：脊髓暴露并完成解剖后的状态。 C1：脊髓已分离（头侧朝左）。 C2：脊髓准备包埋（腹侧朝上，头侧朝左）。注意头侧使用了较细的昆虫针。 D1：脊髓置于琼脂烧杯中（头侧朝下，腹侧朝向底部）。 D2：含有包埋脊髓的琼脂块切面。注意脊髓与块基底部形成约35°角，以及腰膨大部位（箭头所示）。比例尺为1 cm。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54525/54525fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
2. 将切片放入孵育腔
注意：腹根的大小存在可变性。
<ol>
	<li>预先准备一盒不同规格的移液管，其尖端直径范围为 40 至 170 µm。为制备吸附电极移液管，需准备多根具有长锥度的移液管。使用金刚石刀在不同位置进行切割，然后在解剖显微镜下用镊子轻敲尖端使其断裂。</li>
	<li>将记录用的灌流室从记录显微镜上取下，并置于解剖显微镜下。</li>
	<li>选择一个包含足够长度（2 mm 或更长）腹根的脑片，以便将其安装在吸附刺激电极上。将脑片调整至适当方向，使腹根朝上（图 2A），然后精细地切除腹根周围的琼脂，同时保留脑片其余部分周围的琼脂（图 2B）。 
	注意：由于琼脂比脑片组织更坚硬，这样可使脑片固定线的线丝落在琼脂上而非脑片本身，从而避免固定装置损伤组织。确保脑片固定线的线丝位于运动神经元群上方（如 图 2C 中红色所示）。</li>
	<li>将灌流室重新安装到显微镜上，并以 1 - 2 ml/min 的流速在室温（RT）下持续用人工脑脊液（ACSF）灌流记录室。使用一支充满 ACSF 并连接注射器的玻璃移液管，吸附其中一根腹根（图 2C 中箭头所示）。为了实现对腹根的有效刺激，移液管尖端必须与腹根紧密贴合。刺激电极的一极应置于刺激电极内，另一极则置于浴液中（或连接至膜片钳电极的参比电极）。</li>
	<li>对目标细胞类型进行膜片钳记录，并按照先前所述方法记录腹根刺激所产生的效应10。
	<ol>
		<li>此处使用放大器进行数据采集。全细胞记录信号在 3 kHz 条件下滤波，以 10 kHz 进行数字化采样，并在电流钳模式下补偿桥式电阻。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="组织学染料渗透，显示染色技术的组织横截面显微图像。" src="/files/ftp_upload/54525/54525fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 
图 2. 腹根制备 
A：腰段脊髓切片包埋于琼脂中，腹根朝上。B：腰段脊髓切片，腹根已从琼脂中游离出来。C：腰段脊髓切片，刺激电极紧密地放置在腹根周围（箭头所示）。注意在chrna2-Cre小鼠28与报告基因小鼠R26Tom 17杂交后代中表达红色荧光的Renshaw细胞的位置。比例尺为1 mm。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54525/54525fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

<ol><li>Brooks, C. M., Downman, C. B., Eccles, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((After-potentials+and+excitability+of+spinal+motoneurones+following+antidromic+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">After-potentials and excitability of spinal motoneurones following antidromic activation.</a> J Neurophysiol. 13 (1), 9-38 (1950).</li>
<li>Bories, C., Amendola, J., Lamotte d'Incamps, B., Durand, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+electrophysiological+abnormalities+in+lumbar+motoneurons+in+a+transgenic+mouse+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Early electrophysiological abnormalities in lumbar motoneurons in a transgenic mouse model of amyotrophic lateral sclerosis.</a> Eur J Neurosci. 25 (2), 451-459 (2007).</li>
<li>Takahashi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+currents+in+visually+identified+motoneurones+of+neonatal+rat+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Membrane currents in visually identified motoneurones of neonatal rat spinal cord.</a> J Physiol. 423, 27-46 (1990).</li>
<li>Hori, N., Tan, Y., Strominger, N. L., Carpenter, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+activity+of+rat+spinal+cord+motoneurons+in+slices%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Intracellular activity of rat spinal cord motoneurons in slices.</a> J Neurosci Methods. 112 (2), 185-191 (2001).</li>
<li>Arai, Y., Mentis, G. Z., Wu, J. Y., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventrolateral+origin+of+each+cycle+of+rhythmic+activity+generated+by+the+spinal+cord+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Ventrolateral origin of each cycle of rhythmic activity generated by the spinal cord of the chick embryo.</a> PLoS One. 2 (5), e417(2007).</li>
<li>Cullheim, S., Lipsenthal, L., Burke, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+monosynaptic+contacts+between+type-identified+alpha-motoneurons+in+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Direct monosynaptic contacts between type-identified alpha-motoneurons in the cat.</a> Brain Res. 308 (1), 196-199 (1984).</li>
<li>Cullheim, S., Kellerth, J. O., Conradi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+direct+synaptic+interconnections+between+cat+spinal+alpha-motoneurons+via+the+recurrent+axon+collaterals%3A+a+morphological+study+using+intracellular+injection+of+horseradish+peroxidase%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Evidence for direct synaptic interconnections between cat spinal alpha-motoneurons via the recurrent axon collaterals: a morphological study using intracellular injection of horseradish peroxidase.</a> Brain Res. 132 (1), 1-10 (1977).</li>
<li>Gogan, P., Gueritaud, J. P., Horcholle-Bossavit, G., Tyc-Dumont, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+excitatory+interactions+between+spinal+motoneurones+of+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Direct excitatory interactions between spinal motoneurones of the cat.</a> J Physiol. 272 (3), 755-767 (1977).</li>
<li>Ichinose, T., Miyata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recurrent+excitation+of+motoneurons+in+the+isolated+spinal+cord+of+newborn+rats+detected+by+whole-cell+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Recurrent excitation of motoneurons in the isolated spinal cord of newborn rats detected by whole-cell recording.</a> Neurosci Res. 31 (3), 179-187 (1998).</li>
<li>Lamotte d'Incamps, B., Ascher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Four+excitatory+postsynaptic+ionotropic+receptors+coactivated+at+the+motoneuron-Renshaw+cell+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Four excitatory postsynaptic ionotropic receptors coactivated at the motoneuron-Renshaw cell synapse.</a> J Neurosci. 28 (52), 14121-14131 (2008).</li>
<li>Renshaw, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+effects+of+centripetal+impulses+in+axons+of+spinal+ventral+roots%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Central effects of centripetal impulses in axons of spinal ventral roots.</a> J Neurophysiol. 9, 191-204 (1946).</li>
<li>Renshaw, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+nerve+impulses+in+the+gray+matter+as+a+mechanism+in+central+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Fed+Proc%22%5BJournal%5D)">Interaction of nerve impulses in the gray matter as a mechanism in central inhibition.</a> Fed Proc. 5 (1 Pt 2), 86(1946).</li>
<li>Renshaw, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+on+interaction+of+nerve+impulses+in+the+gray+matter+and+on+the+nature+of+central+inhibition%29%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Observations on interaction of nerve impulses in the gray matter and on the nature of central inhibition).</a> Am J Physiol. 146, 443-448 (1946).</li>
<li>Pambo-Pambo, A., Durand, J., Gueritaud, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+excitability+changes+in+lumbar+motoneurons+of+transgenic+SOD1G85R+and+SOD1G%2893A-Low%29+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Early excitability changes in lumbar motoneurons of transgenic SOD1G85R and SOD1G(93A-Low) mice.</a> J Neurophysiol. 102 (6), 3627-3642 (2009).</li>
<li>Quinlan, K. A., Schuster, J. E., Fu, R., Siddique, T., Heckman, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+postnatal+maturation+of+electrical+properties+in+spinal+motoneurons+in+a+mouse+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Altered postnatal maturation of electrical properties in spinal motoneurons in a mouse model of amyotrophic lateral sclerosis.</a> J Physiol. 589 (Pt 9), 2245-2260 (2011).</li>
<li>Martin, E., Cazenave, W., Cattaert, D., Branchereau, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+alteration+of+motoneuronal+morphology+induces+hyperexcitability+in+the+mouse+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">Embryonic alteration of motoneuronal morphology induces hyperexcitability in the mouse model of amyotrophic lateral sclerosis.</a> Neurobiol Dis. 54, 116-126 (2013).</li>
<li>Hadzipasic, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+degeneration+of+a+physiological+subtype+of+spinal+motor+neuron+in+mice+with+SOD1-linked+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Selective degeneration of a physiological subtype of spinal motor neuron in mice with SOD1-linked ALS.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (47), 16883-16888 (2014).</li>
<li>Wichterle, H., Lieberam, I., Porter, J. A., Jessell, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+differentiation+of+embryonic+stem+cells+into+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons.</a> Cell. 110 (3), 385-397 (2002).</li>
<li>Tallini, Y. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BAC+transgenic+mice+express+enhanced+green+fluorescent+protein+in+central+and+peripheral+cholinergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">BAC transgenic mice express enhanced green fluorescent protein in central and peripheral cholinergic neurons.</a> Physiol Genomics. 27 (3), 391-397 (2006).</li>
<li>Manuel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+kinetics%2C+high-frequency+oscillations%2C+and+subprimary+firing+range+in+adult+mouse+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Fast kinetics, high-frequency oscillations, and subprimary firing range in adult mouse spinal motoneurons.</a> J Neurosci. 29 (36), 11246-11256 (2009).</li>
<li>Obeidat, A. Z., Nardelli, P., Powers, R. K., Cope, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+motoneuron+firing+by+recurrent+inhibition+in+the+adult+rat+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Modulation of motoneuron firing by recurrent inhibition in the adult rat in vivo.</a> J Neurophysiol. 112 (9), 2302-2315 (2014).</li>
<li>Leroy, F., Lamotte d'Incamps, B., Imhoff-Manuel, R. D., Zytnicki, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+intrinsic+hyperexcitability+does+not+contribute+to+motoneuron+degeneration+in+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Early intrinsic hyperexcitability does not contribute to motoneuron degeneration in amyotrophic lateral sclerosis.</a> Elife. 3, (2014).</li>
<li>Leroy, F., Lamotte d'Incamps, B., Zytnicki, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potassium+currents+dynamically+set+the+recruitment+and+firing+properties+of+F-type+motoneurons+in+neonatal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Potassium currents dynamically set the recruitment and firing properties of F-type motoneurons in neonatal mice.</a> J Neurophysiol. 114 (3), 1963-1973 (2015).</li>
<li>Lamotte d'Incamps, B., Ascher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subunit+composition+and+kinetics+of+the+Renshaw+cell+heteromeric+nicotinic+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Subunit composition and kinetics of the Renshaw cell heteromeric nicotinic receptors.</a> Biochem Pharmacol. 86 (8), 1114-1121 (2013).</li>
<li>Lamotte d'Incamps, B., Krejci, E., Ascher, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+shaping+the+slow+nicotinic+synaptic+current+at+the+motoneuron-renshaw+cell+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Mechanisms shaping the slow nicotinic synaptic current at the motoneuron-renshaw cell synapse.</a> J Neurosci. 32 (24), 8413-8423 (2012).</li>
<li>Dugue, G. P., Dumoulin, A., Triller, A., Dieudonne, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target-dependent+use+of+co-released+inhibitory+transmitters+at+central+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Target-dependent use of co-released inhibitory transmitters at central synapses.</a> J Neurosci. 25 (28), 6490-6498 (2005).</li>
<li>Mentis, G. Z., Siembab, V. C., Zerda, R., O'Donovan, M. J., Alvarez, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+afferent+synapses+on+developing+and+adult+Renshaw+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Primary afferent synapses on developing and adult Renshaw cells.</a> J Neurosci. 26 (51), 13297-13310 (2006).</li>
<li>Perry, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Firing+properties+of+Renshaw+cells+defined+by+Chrna2+are+modulated+by+hyperpolarizing+and+small+conductance+ion+currents+Ih+and+ISK%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Firing properties of Renshaw cells defined by Chrna2 are modulated by hyperpolarizing and small conductance ion currents Ih and ISK.</a> Eur J Neurosci. 41 (7), 889-900 (2015).</li>
<li>Thurbon, D., Luscher, H. R., Hofstetter, T., Redman, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Passive+electrical+properties+of+ventral+horn+neurons+in+rat+spinal+cord+slices%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Passive electrical properties of ventral horn neurons in rat spinal cord slices.</a> J Neurophysiol. 79 (5), 2485-2502 (1998).</li>
<li>Zengel, J. E., Reid, S. A., Sypert, G. W., Munson, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+electrical+properties+and+prediction+of+motor-unit+type+of+medial+gastrocnemius+motoneurons+in+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Membrane electrical properties and prediction of motor-unit type of medial gastrocnemius motoneurons in the cat.</a> J Neurophysiol. 53 (5), 1323-1344 (1985).</li>
<li>Cooper, S., Sherington, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gower%27s+tract+and+spinal+border+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Gower's tract and spinal border cells.</a> Brain. 63, 123-124 (1940).</li>
<li>Morin, F., Schwartz, H. G., O'Leary, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+study+of+the+spinothalamic+and+related+tracts%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Psychiatr+Neurol+Scand%22%5BJournal%5D)">Experimental study of the spinothalamic and related tracts.</a> Acta Psychiatr Neurol Scand. 26 (3-4), 371-396 (1951).</li>
<li>Sengul, G., Fu, Y., Yu, Y., Paxinos, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+projections+to+the+cerebellum+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Struct+Funct%22%5BJournal%5D)">Spinal cord projections to the cerebellum in the mouse.</a> Brain Struct Funct. 220 (5), 2997-3009 (2015).</li>
<li>Russier, M., Carlier, E., Ankri, N., Fronzaroli, L., Debanne, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A-%2C+T-%2C+and+H-type+currents+shape+intrinsic+firing+of+developing+rat+abducens+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">A-, T-, and H-type currents shape intrinsic firing of developing rat abducens motoneurons.</a> J Physiol. 549 (Pt 1), 21-36 (2003).</li>
<li>Dourado, M., Sargent, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+nicotinic+receptors+underlying+Renshaw+cell+excitation+by+alpha-motor+neurons+in+neonatal+rat+spinal+cord%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Properties of nicotinic receptors underlying Renshaw cell excitation by alpha-motor neurons in neonatal rat spinal cord).</a> J Neurophysiol. 87 (6), 3117-3125 (2002).</li>
<li>Mitra, P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+spinal+cord+slice+preparation+for+recording+from+lumbar+motoneurons+of+the+adult+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">An in vitro spinal cord slice preparation for recording from lumbar motoneurons of the adult mouse.</a> J Neurophysiol. 107 (2), 728-741 (2012).</li>
<li>Rothman, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neurotoxicity+of+excitatory+amino+acids+is+produced+by+passive+chloride+influx%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The neurotoxicity of excitatory amino acids is produced by passive chloride influx.</a> J Neurosci. 5 (6), 1483-1489 (1985).</li>
<li>Olney, J. W., Price, M. T., Samson, L., Labruyere, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+specific+ions+in+glutamate+neurotoxicity%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">The role of specific ions in glutamate neurotoxicity.</a> Neurosci Lett. 65 (1), 65-71 (1986).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

脊髓的斜向切片非常重要，因为它能够在单个椎体节段上可靠且全面地实现对运动神经元池和闰绍细胞的单侧刺激。&#160;且具有特异性的方式。此外，它还允许快速、优雅地&#160;以及对记录到的运动神经元进行非模糊识别。接下来，我们将重点介绍&#160;该方法的优势在于&#160;与其他切片制备方法相比的技术优势，然后我们将重点强调&#160;进行该操作时需避免的最常见错误。
大多数使用横切片的研究基于细胞的内在电学特性进行鉴定 3,14,15,29然而，这些特性在不同运动神经元池之间以及同一池内的不同运动神经元亚型（α、β和γ运动神经元）之间存在显著差异。30）。因此，使用尺寸参数的研究很可能会排除较小的γ-运动神经元。另一方面，Cooper和Sherrington在1940年描述了一类存在于猴和猫腰段脊髓腹外侧灰质中的大型神经细胞，这类细胞具有交叉上行的轴突31,32。此外，该结构还邻近运动神经元&#160;胞体，他们注意到这些细胞在组织学上与运动神经元无异。最近一篇文章证实了这类细胞存在于小鼠中33</sup...

历史上，使用锐利电极进行的运动神经元记录是通过 体内 大型动物，例如&#160;猫或大鼠1 或在离体的完整脊髓上&#160;小鼠220世纪80年代膜片钳记录技术的出现，要求直接接触运动神经元胞体，因为封接需在视觉引导下完成。因此，自20世纪90年代初以来，脊髓切片制备已得以顺利实现。3然而，早期的脑片制备通常无法实现对腹根的刺激。据我们所知，仅有两项研究报道了在横切脑片中成功刺激腹根，且均未使用小鼠获得4,5.
本文介绍一种制备出生后小鼠（P2 - P11）具有活性的脊髓切片的技术，其中运动神经元&#160;池&#160;保留了&#160;从腹根&#160;发出的轴突。刺激腹根可引发逆行性动作电位，反向传入同一腹根发出的运动神经元&#160;池&#160;的胞体。此外，该刺激还可兴奋运动神经元的侧支靶点，&#160;包括其他运动神经元6-10以及Renshaw细胞11-13。由于只有运动神经元&#160;将轴突经由腹根传出，我们利用逆行性动作电位的记录作为生理学上简便且明确识别运动神经元的方法10。
除了使用可能缺乏包容性或具有误导性的电生理学和形态学方法外&#160;确认运动神经元的标准&#160;身份鉴定，近期关于脊髓运动神经元的研究也依赖于繁琐且&#160;耗时的 术后&#160;临时的 染色16此类鉴定通常仅对记录的细胞样本进行。其他鉴定策略则依赖于&#160;在运动神经元表达内源性荧光的转基因小鼠品系中17-19然而，在幼龄阶段，由于标记物的表达尚不稳定，或当研究本身已需使用转基因小鼠品系时，使用基因编码标记可能会存在困难。另一种方法是，从开始进行细胞记录时，即可对所有小鼠常规开展逆向传导的动作电位记录。自20世纪50年代以来，研究猫、大鼠和小鼠完整脊髓制备物的实验人员已可靠地应用了此类鉴定技术。1,2,20,21在理想条件下，我们能够从几乎所有记录到的运动神经元中诱发出逆行性动作电位。
此外，腹根刺激可可靠地兴奋其他运动神经元22,23&#160;或其靶细胞，例如&#160;Renshaw细胞10,24,25。本文展示了腹根刺激的应用，包括记录运动神经元胞体的逆向动作电位，以及兴奋Renshaw细胞。

<table><tbody><tr><td>Na-犬尿氨酸</td><td>ABCAM</td><td>ab120256</td><td>比其他品牌的溶解性更好</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P3911</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma</td><td>P5655</td><td></td></tr><tr><td>蔗糖&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>S9378</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>S6014</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;&amp;nbsp;</td><td>G Biosciences</td><td>R040</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;&amp;nbsp;</td><td>Quality Biological</td><td>351-033-721</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G5767</td><td></td></tr><tr><td>抗坏血酸&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A5960</td><td></td></tr><tr><td>Na-丙酮酸盐&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>P2250</td><td></td></tr><tr><td>K-葡糖酸盐&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>P1847</td><td></td></tr><tr><td>EGTA&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>HEPES&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>H4034</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>琼脂</td><td>Sigma</td><td>A9799</td><td></td></tr><tr><td>QX-314</td><td>Alomone</td><td>Q150</td><td></td></tr><tr><td>Mg-ATP</td><td>Sigma</td><td>A9187</td><td></td></tr><tr><td>CsOH</td><td>Sigma</td><td>232041</td><td></td></tr><tr><td>Na-GTP</td><td>Sigma</td><td>51120</td><td></td></tr><tr><td>葡糖酸</td><td>Sigma</td><td>G1951</td><td></td></tr><tr><td>氢氧化铯溶液</td><td>Sigma</td><td>232041</td><td></td></tr><tr><td>KOH</td><td>Sigma</td><td>P5958</td><td></td></tr><tr><td>万纳斯弹簧剪 - 2.5 mm&amp;nbsp;</td><td>FST</td><td>15000-08</td><td>仅用于剪开硬脑膜，若用于剪骨可能造成损坏</td></tr><tr><td>刺激器</td><td>A-M Systems</td><td>Isolated Pulse Stimulator Model 2100</td><td></td></tr><tr><td>振动切片机</td><td>Campden</td><td>Vibrating Microtome 7000 - Model 7000smz-2</td><td></td></tr></tbody></table>

斜向脊髓切片的制备用于腹根刺激

The Preparation of Oblique Spinal Cord Slices for Ventral Root Stimulation

从脊髓切片进行电生理记录已被证明是一种研究从细胞到神经网络特性的宝贵技术。我们展示了如何制备出生后2至11天（P2–P11）幼鼠脊髓的可行斜切切片。在此制备过程中，运动神经元保持&#160;其轴突从 腹侧根的&#160;脊髓。刺激这些轴突可引发逆向传播的动作电位，侵入运动神经元&#160;胞体并激活运动神经元&#160;脊髓内的侧支。记录逆向动作电位是一种直接、明确且优雅的方法，可用于鉴定运动神经元的身份，其优势超过&#160;其他鉴定方法。此外，刺激运动神经元的侧支是一种简单且可靠的方法，可用于激活脊髓内运动神经元侧支的靶细胞，例如其他运动神经元或闰绍细胞。在本方案中，我们展示了通过腹根刺激引发的运动神经元胞体的逆向传导记录以及闰绍细胞的兴奋。

利用逆向动作电位确认运动神经元身份
细胞靶向
运动神经元位于腹角（在图2C中以红色显示）。从构成腹根的轴突束开始，向上追踪至轴突束完全散开，并开始出现较大的细胞（胞体长轴超过20 µm）。使用初始电阻为3至4 MΩ的电极，对形态圆润且健康的细胞进行全细胞记录。所用胞内液成分为：140 mM K-葡萄糖酸盐、6 mM KCl、10 mM HEPES、1 mM EGTA、0.1 mM CaCl2、4 mM Mg-ATP、0.3 mM Na2GTP。用KOH将pH值调节至7.3，并通过添加蒸馏水将渗透压调整至285 - 295 mOsm。
<p class="jove_content" fo...

我们展示了如何制备幼鼠脊髓的斜切片。该制备方法可用于刺激腹根。

脊髓切片的电生理记录已被证明是一种有价值的技术，可用于研究从细胞水平到……的广泛问题

本实验的主要目标是制备脊髓的斜切片，以实现对腹根的刺激。该技术的主要优势在于，它能够识别用于腹根刺激的运动神经元，并研究由运动神经元轴突侧支所支配的腹侧细胞。我们最初是在需要一种可靠方法来刺激腹侧细胞时，提出了这一方法的设想。初次使用该方法的研究人员可能会因难以准确执行解剖的各个步骤而遇到困难。首先用低钠人工脑脊液（ACSF）灌注出生后2至11天的小鼠。在小鼠断头并去除背部皮肤后，于肩部做两个切口，并沿肋骨向下延伸。然后，尽可能在尾部较低的位置切断脊髓，以分离椎柱和肋骨与动物下部的连接。翻转椎柱，并去除仍附着在肋骨上的内脏组织。将椎柱转移至另一个较小的、盛有硅胶的培养皿中。加入冰冷的ACSF溶液，并用碳合气（carbogen）持续通气，用四枚昆虫针将组织背侧朝上固定。随后进行背侧椎板切除，首先将精细剪刀尖插入骨与脊髓之间，从头端开始剪除骨组织，注意避免接触白质。使用镊子夹住已剪开的骨条，交替在两侧进行剪切操作。接下来，使用小镊子抬起硬脑膜，并用小剪刀沿头尾方向在两侧进行剪切。硬脑膜的去除是一个关键步骤，值得多花几分钟彻底完成。硬脑膜去除后，使用钝头玻璃针尖轻轻将脊髓向半切脊柱所形成的沟槽左侧推移。然后在腹侧根和背侧根进入脊髓处尽可能远的位置将其切断。在左侧重复此操作，始终从头端向尾端进行。解剖后，将脊髓从椎管中轻轻滑出，然后用细小的昆虫针固定脊髓，使其背面向上。小心去除附着的膜组织。清洗完毕后，修剪脊髓两端，并将一枚弯头昆虫针插入脊髓前端以标记其方向。随后将脊髓转移至冰浴的细胞内液中。接着，将预先准备好的熔融琼脂置于冰水混合物中冷却。搅拌琼脂的同时测量温度。当琼脂温度达到38摄氏度时，用昆虫针夹住脊髓，将其腹侧朝下浸入琼脂中。确保脊髓尽可能保持笔直，远离容器壁，尾部略微向上。将烧杯置于冰水混合物中，使琼脂尽可能快速地在脊髓周围凝固。凝固后，切割含有脊髓的琼脂块，使琼脂块底面与脊髓腰段呈35度角，背侧朝向远离底面的方向。使用氰基丙烯酸酯胶水将组织块粘附到振动切片机的样品腔中。正确安装组织块至关重要，以保持运动神经元池与其发出的腹根之间的连续性。将组织块浸入葡萄糖酸钾溶液中。设置振动切片机参数。随后，切取腰段区域350至400微米厚的切片，该区域可通过其弯曲形态和较大直径进行识别。将合适的切片转移至34摄氏度的ACSF溶液中。通常有四到五个切片合适，其腹根延伸长度达两毫米或以上。在34摄氏度下孵育约30分钟后，将切片冷却至室温，然后开始记录。提前准备一个装有多种移液管的盒子，其尖端直径范围为40至170微米。制备切片移液管时，应选择具有细长锥形尖端的移液管。然后使用金刚石刀在不同位置进行切割，并在解剖显微镜下用镊子轻敲尖端，使每根移液管断裂。接下来，将记录显微镜中的腔室取出，并置于解剖显微镜下。选择一个包含足够长度腹根的脑片，以便将其固定在吸吮式刺激电极上。将脑片放置妥当，使腹根朝上，然后小心地切开腹根周围的琼脂，保留脑片其余部分周围的琼脂，并放置网格以固定样本。将记录室重新安装到显微镜上，并以每分钟一至二毫升的速度持续用室温人工脑脊液（ACSF）灌流记录室。使用一支充满人工脑脊液（ACSF）并连接至注射器的玻璃移液管，吸入其中一条腹根。为了有效刺激腹根，移液管尖端需与腹根紧密贴合。对目标细胞类型进行膜片钳记录，并按照前述方法记录腹根刺激所产生的效应。此图像显示了电压钳记录的结果。上排图中的记录来自与下排图不同的运动神经元。上图显示了一个运动神经元对一伏刺激的逆向反应（红色），以及对五伏刺激的逆向反应（黑色）。下部的迹线以红色显示对20伏刺激的顺向动作电位反应，以黑色显示对30伏刺激的反应。黑色圆点表示刺激的时间点。双箭头突出显示顺向与逆向锋电位之间潜伏期的差异。此处显示的是电流钳记录结果。上图分别以红色和黑色显示了对10伏和15伏刺激的逆向反应。下图分别以红色和黑色显示了对25伏和40伏刺激的顺向反应。再次指出，刺激时间与潜伏期的差异。该闰绍细胞池的图像采用斜聚光镜和20倍物镜获得。注意运动神经元轴突汇入腹根，如箭头所示。此图使用40倍物镜拍摄同一区域。箭头头标记了推测的Renshaw细胞。图中显示的是刺激前根后Renshaw细胞的电压钳记录，黑色圆点表示刺激位置。细胞内液中的QX-314可防止细胞产生动作电位，而3微摩尔加巴青霉素和1微摩尔士的宁可分别阻断甘氨酸和GABA的反应。红色迹线为灰色迹线的平均值。一旦掌握，该技术可在20至30分钟内完成。在进行该操作时，重要的是始终记住将制备过程保持在低温介质中。观看本视频后，您应能够充分掌握如何制备适用于腹根刺激的脊髓斜切片。腹根刺激可用于轻松确认运动神经元的身份，更重要的是，可可靠地刺激腹侧细胞。

the-preparation-oblique-spinal-cord-slices-for-ventral-root

Research

科研

JoVE Journal

Neuroscience

神经科学

斜脊髓切片用于神经前根刺激的制备

我们描述了制备和记录保持内侧内嗅皮层（MEC）背腹轴完整性的脑切片并进行电生理记录的操作步骤。由于位置的神经编码在MEC内遵循背腹向的组织方式，这些操作步骤有助于研究与导航和记忆相关的细胞机制。...

制备矢状切片以研究啮齿类动物内侧内嗅皮层的背-腹向组织结构

本视频介绍了在经脊髓直流电刺激下对大鼠运动神经元进行的体内细胞内记录。该方案描述了如何在脊髓阳极或阴极极化前、期间和之后，测量运动神经元的膜特性并记录其节律性放电活动。...

大鼠脊髓运动神经元的经脊髓直流电刺激

本视频展示了一种基于微电极阵列的检测方法，用于研究小鼠脊髓切片中神经元网络的活动。首先，记录切片浅层背角（SDH）的电生理活动；随后引入钾通道抑制剂以延长去极化过程，从而在神经元网络中引发同步的节律性活动。...

基于微电极阵列的小鼠脊髓切片神经元网络评估

在突触前释放面膜上记录 Ca2+ 电流，对于精确理解 Ca2+...

急性分离七鳃鳗网状脊髓轴突以实现对单个功能性突触前终末释放面膜的记录

分子通过肌肉注射后被摄取并逆行转运至相应运动神经元的效率，取决于注射位点相对于运动终板（MEPs）的位置。本文介绍如何在骨骼肌上定位运动终板，以优化示踪剂向运动神经元的逆行转运。...

沿运动终板进行肌肉内注射：一种将示踪剂直接导入运动神经元的微创方法

在此，我们描述了在 substantia gelatinosa (SG) 神经元中进行全细胞膜片钳记录的关键步骤 体外...

脊髓胶状质神经元全细胞膜片钳记录用急性脊髓切片的制备

本方案以可视化方式展示了脑干-脊髓制备过程，并全面、分步详解了脑干横切片的制备方法。该方案旨在提高实验可重复性，并增加成功获取存活时间长、具有节律性活性、可用于记录脑干呼吸区神经输出信号的脑片的可能性。...

新生啮齿类动物脑干-脊髓节律性活动体外制备及薄片制备

本方案描述了在同时进行经脊髓直流电刺激的条件下，对大鼠腰段运动神经元进行体内细胞内记录的方法。该方法使我们能够在脊髓阳极或阴极极化之前、期间和之后，测量运动神经元的膜特性并记录其节律性放电活动。...

在体条件下对经脊髓直流电刺激期间类型明确的大鼠脊髓运动神经元进行细胞内记录

整合神经元对多种突触输入的响应，最佳方法是采用一种能够保留所有突触前核团、以维持自然时序和环路可塑性的实验体系；然而，脑片通常会切断大量连接。我们开发了一种改良的脑片制备方法，可在保持体外实验可行性的同时，模拟体内环路的活动状态。...

体外楔形脑片制备以模拟体内神经元环路连接

本文概述了联合使用微电极阵列技术和4-氨基吡啶诱导的化学刺激方法，用于研究脊髓背角网络水平的伤害性感受活动。...

使用微电极阵列记录脊髓伤害性感觉回路中的网络活动

本方案描述了一种利用膜片钳技术以高时空分辨率研究运动神经元对脊髓刺激（SCS）电反应的方法，该方法可帮助研究人员同时提高分离脊髓和维持细胞活性的技术水平。...

的 离体 脊髓刺激期间运动神经元全细胞膜片钳记录用脊髓切片制备

学习制备小鼠斜脊髓切片技术，用于腹根刺激和运动神经元识别。该方法适用于P2至P11小鼠，通过灌注低钠ACSF、精确解剖和振动切片，实现可靠的神经生理学研究。

斜向脊髓切片的制备用于腹根刺激

探索更多视频