Name: 在多发性硬化症的小鼠模型测量进行性神经功能残疾 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: 了解如何使用优化的转棒测试评估TMEV感染小鼠的进行性神经功能障碍。该方法为研究多发性硬化症等慢性脱髓鞘疾病提供了客观的神经功能量化指标，有助于评估治疗效果。

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作者感谢达特茅斯比较医学与研究中心（CCMR）工作人员在本研究中对小鼠的精心护理。作者还感谢 Emily Clough 提供出色的行政支持。

所有动物实验均采用达特茅斯盖泽尔医学院机构动物照护与使用委员会（IACUC）审查并批准的方案。
1. 小鼠模型
<ol>
	<li>诱导TMEV致脱髓鞘疾病
	<ol>
		<li>将饲养4至6周龄雌性SJL/JHan小鼠的笼子从架子转移到便于操作的工作区域。对小鼠进行标记（例如，使用耳标或耳缘穿孔），以便对每只小鼠的临床表现和组织病理学病变进行个体化评估。</li>
		<li>用29号胰岛素注射器和针头吸取30 μl TMEV感染原液（2 × 106 空斑形成单位；PFU），溶于PBS中。</li>
		<li>准备麻醉气体设备：检查系统，确保在整个操作过程中有足够的氧气和异氟烷供应。</li>
		<li>打开流量计至1 L/min。将动物放入诱导室并密封顶部。开启蒸发器至3.5%，持续观察动物直至其呈侧卧状态。</li>
		<li>将动物从诱导室中取出，通过轻捏足垫测试麻醉深度。若对强烈刺激无反应，则表明麻醉充分。</li>
		<li>用70%异丙醇清洁注射部位。</li>
		<li>通过徒手注射法将30 μl TMEV感染原液注入右侧大脑半球（图1）。注射位点位于眼与耳连线中点附近，稍偏离中线。</li>
		<li>待小鼠完全清醒并能够自主活动后（通常为3–5分钟），将其放回饲养笼中。</li>
		<li>根据疾病发展速度，在TMEV感染后3至6个月通过放血法或心脏灌注法处死小鼠。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 转棒分析
<ol>
	<li>转棒仪装置
	<ol>
		<li>在感染TMEV之前对小鼠进行测试，以使其熟悉仪器，并评估其正常的基线平衡协调能力和运动控制。</li>
		<li>从感染后第-5天（dpi）开始适应性方案； 即， TMEV感染前5天</li>
		<li>让小鼠在转棒实验前至少在测试室内适应30分钟，以使其适应环境。</li>
		<li>确保转棒仪主机和计算机均已接通电源并相互连接（图2).</li>
		<li>预先将转棒仪设置为 -5 dpi 训练方案参数，具体如所述 表1.</li>
		<li>使用日期和标识信息保存工作文件。</li>
		<li>将装有待测小鼠组的笼子从架子上移至旋转棒仪旁边的桌子。通常每组4只小鼠进行测试。</li>
		<li>用镊子夹住小鼠尾巴，将其放置于转棒上，使小鼠背对操作者。对第二至第四只小鼠重复此操作。若某只小鼠掉落或跳下，应将其重新放回转棒上的原位置，直至所有小鼠均处于正确位置。若小鼠转身面向操作者，可忽略此行为。</li>
		<li>加载完所有小鼠后，按下 &#34;进入&#34; 点击按钮开始实验。观察各通道的计时器自动启动，并显示每分钟转数（rpm）。
		<ol>
			<li>当每只动物从转棒上跌落时，记录其跌落时刻转棒的转速以及动物在转棒上停留的持续时间。转棒将持续旋转，直至最后一只动物从转棒装置上跌落。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>所有小鼠跌落后，使用纸巾清除转棒上的粪便和尿液。尿液和粪便的存在可能影响小鼠对转棒的抓握能力。
		<ol>
			<li>休息3分钟后，给予小鼠第二次试验，随后进行第三次试验。每次试验最长持续时间为240秒。每次测试日共进行3次试验。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>将小鼠放回其饲养笼，并将其放回笼架。实验结束后，用肥皂和水清洁旋转棒仪器，以清除设备上的所有粪便残留物。</li>
		<li>用70%乙醇擦拭基板以清洁。用二氧化氯喷洒整个设备进行消毒。</li>
		<li>在感染后第 -4、-3、-2 和 -1 天，按照所述方法将旋转杆仪预设为相应的训练程序参数 表1，重复步骤 2.1.2 至 2.1.12。</li>
		<li>在获得基线测量值后，用TMEV感染小鼠，并给予6天的感染后恢复期。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td rowspan="2">实验方案</td>
			<td rowspan="2">测试日期</td>
			<td rowspan="2">频率</td>
			<td rowspan="2">起始速度 (rpm)</td>
			<td rowspan="2">最大速度 (rpm)</td>
			<td>加速度</td>
			<td>试验次数</td>
			<td>ITI</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(rpm/sec)</td>
			<td>(N × sec)</td>
			<td>(min)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="4">训练阶段</td>
			<td>-5 天（d.p.i）</td>
			<td>每日 1 次</td>
			<td>1</td>
			<td>12</td>
			<td>01/03</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>-4 天（d.p.i）</td>
			<td>每日 1 次</td>
			<td>1</td>
			<td>13</td>
			<td>01/03</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>-3 天（d.p.i）</td>
			<td>每日 1 次</td>
			<td>1</td>
			<td>14</td>
			<td>01/03</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>-2 天；-1 天（d.p.i）</td>
			<td>每日 1 次</td>
			<td>5</td>
			<td>40</td>
			<td>01/03</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">实验阶段</td>
			<td>+7 至 +50 天（d.p.i）</td>
			<td>每周 2 次</td>
			<td>5</td>
			<td>40</td>
			<td>05/30</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>+51 至 +150 天（d.p.i）</td>
			<td>每周 1 次</td>
			<td>5</td>
			<td>40</td>
			<td>05/30</td>
			<td>3 × 240 秒</td>
			<td>3</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
表1：训练和实验方案中的转棒参数。
<ol start="2">
	<li>转棒实验方案
	<ol>
		<li>在接种后第7天（+7 dpi），按照表1中所述设置转棒仪的实验参数。重复执行步骤2.1.2至2.1.10。</li>
		<li>第3次试验结束后，称量每只小鼠的体重，并在数据表中记录体重数值。按照步骤2.1.11和2.1.12清洁并消毒转棒仪。</li>
		<li>在接下来的6周内，每周测试小鼠两次，方法如上所述。6周后（此时小鼠可能已进入平台期）8,9，改为每周使用相同的实验方案测试一次。整个实际测试过程平均持续150天，具体时长取决于疾病进程。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>神经功能指数
	<ol>
		<li>将原始数据导出至电子表格文件，并分析结果。</li>
		<li>以跑步时间表示数据（图3A）：即正常跑步时间加上被动旋转时间，减去旋转延迟时间（表2）10。计算每天三次试验的平均跑步时间。</li>
		<li>以神经功能指数（NFI；图3B）表示数据。
		<ol>
			<li>计算每只小鼠的基线性能阈值。基线性能阈值定义为接种后第15天至第45天（pi）所有跑步时间的平均值6,7。</li>
			<li>将NFI计算为最近三次平均跑步时间的均值除以该小鼠的基线性能阈值6,7。 
			注：若某小鼠在接种后第72、76和79天的测试跑步时间分别为55秒、45秒和50秒，且该小鼠的基线时间为135秒，则该小鼠在+79 dpi时的NFI为[(45+50+55)/3]/135，即0.37。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>以校正后的NFI（adjNFI；图3C）表示数据：通过单次实验的群体值对NFI数据进行校正。
		<ol>
			<li>通过将NFI值除以假手术组在特定日期获得的平均NFI来计算adjNFI。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>术语</td>
			<td>定义</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>正常跑步时间</td>
			<td>小鼠在旋转杆上主动奔跑的总时间，i.e.，跌落潜伏期。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>被动旋转时间</td>
			<td>小鼠在被动旋转模式下停留在杆上的时间长度。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>旋转延迟时间</td>
			<td>小鼠在被动旋转模式下停留在杆上的时间长度。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>被动旋转模式</td>
			<td>当小鼠抓住旋转杆并随其转动而无需主动行走时的状态。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>总实验时长</td>
			<td>在实验过程中，小鼠停留在旋转杆上的总时间。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>基线表现</td>
			<td>损伤前评估的运动功能，用于确定最低表现阈值。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>神经功能指数 (NFI)</td>
			<td>临床指数，用于将每只小鼠在任意时间点的运动表现（i.e., 跑步时间）与其峰值表现进行比较。</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>校正神经功能指数 (adjNFI)</td>
			<td>通过将单次实验的 NFI 数据以群体值进行标准化处理后得到的调整值。&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>群体值</td>
			<td>假手术组在特定时间点获得的平均 NFI 值。</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
表2：用于量化神经功能障碍的旋转棒参数定义。

<ol><li>Lipton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theiler%27s+virus+infection+in+mice%3A+an+unusual+biphasic+disease+process+leading+to+demyelination%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Theiler's virus infection in mice: an unusual biphasic disease process leading to demyelination.</a> Infect Immun. 11, 1147-1155 (1975).</li>
<li>Pachner, A. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPachner%2C+AR+%22A+Primer+of+Neuroimmunological+Disease%22">A Primer of Neuroimmunological Disease</a>. , Springer. New York. (2012).</li>
<li>Rustay, N. R., Wahlsten, D., Crabbe, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+genetic+susceptibility+to+ethanol+intoxication+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Assessment of genetic susceptibility to ethanol intoxication in mice.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 2917-2922 (2003).</li>
<li>McGavern, D. B., Zoecklein, L., Drescher, K. M., Rodriguez, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+neurologic+deficits+in+a+chronic+progressive+murine+model+of+CNS+demyelination%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of neurologic deficits in a chronic progressive murine model of CNS demyelination.</a> Exp Neurol. 158, 171-181 (1999).</li>
<li>Zoecklein, L. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+comparison+of+demyelinating+disease+induced+by+the+Daniel%27s+strain+and+BeAn+strain+of+Theiler%27s+murine+encephalomyelitis+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Pathol%22%5BJournal%5D)">Direct comparison of demyelinating disease induced by the Daniel's strain and BeAn strain of Theiler's murine encephalomyelitis virus.</a> Brain Pathol. 13, 291-308 (2003).</li>
<li>Gilli, F., Li, L., Campbell, S. J., Anthony, D. C., Pachner, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+B-cell+depletion+in+the+Theiler%27s+model+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Sci%22%5BJournal%5D)">The effect of B-cell depletion in the Theiler's model of multiple sclerosis.</a> J Neurol Sci. 359, 40-47 (2015).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+FTY720+in+the+Theiler%27s+virus+model+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Sci%22%5BJournal%5D)">The effect of FTY720 in the Theiler's virus model of multiple sclerosis.</a> J Neurol Sci. 308, 41-48 (2011).</li>
<li>Homanics, G. E., Quinlan, J. J., Firestone, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacologic+and+behavioral+responses+of+inbred+C57BL%2F6J+and+strain+129%2FSvJ+mouse+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Be%22%5BJournal%5D)">Pharmacologic and behavioral responses of inbred C57BL/6J and strain 129/SvJ mouse lines.</a> Pharmacol Biochem Be. 63, 21-26 (1999).</li>
<li>Balkaya, M., Krober, J. M., Rex, A., Endres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+post-stroke+behavior+in+mouse+models+of+focal+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cerebr+Blood+F+Met%22%5BJournal%5D)">Assessing post-stroke behavior in mouse models of focal ischemia.</a> J Cerebr Blood F Met. 33, 330-338 (2013).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Columbus+Instruments+Rotamex-5+Manual%22">Columbus Instruments Rotamex-5 Manual</a>. , 1-33 (2005).</li>
<li>Dunham, N. W., Miya, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+note+on+a+simple+apparatus+for+detecting+neurological+deficit+in+rats+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Pharm+Ass%22%5BJournal%5D)">A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice.</a> J Am Pharm Ass. 46, 208-209 (1957).</li>
<li>Ulrich, R., Kalkuhl, A., Deschl, U., Baumgartner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Machine+learning+approach+identifies+new+pathways+associated+with+demyelination+in+a+viral+model+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Machine learning approach identifies new pathways associated with demyelination in a viral model of multiple sclerosis.</a> J Cell Mol Med. 14, 434-448 (2010).</li>
<li>Lynch, J. L., Gallus, N. J., Ericson, M. E., Beitz, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+nociception%2C+sex+and+peripheral+nerve+innervation+in+the+TMEV+animal+model+of+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Analysis of nociception, sex and peripheral nerve innervation in the TMEV animal model of multiple sclerosis.</a> Pain. 136, 293-304 (2008).</li>
<li>Pirko, I., Johnson, A. J., Lohrey, A. K., Chen, Y., Ying, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+gray+matter+T2+hypointensity+correlates+with+disability+in+a+murine+model+of+MS%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Sci%22%5BJournal%5D)">Deep gray matter T2 hypointensity correlates with disability in a murine model of MS.</a> J Neurol Sci. 282, 34-38 (2009).</li>
<li>Oleszak, E. L., Chang, J. R., Friedman, H., Katsetos, C. D., Platsoucas, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theiler%27s+virus+infection%3A+a+model+for+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Theiler's virus infection: a model for multiple sclerosis.</a> Clin Microbiol Rev. 17, 174-207 (2004).</li>
<li>McCarthy, D. P., Richards, M. H., Miller, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+multiple+sclerosis%3A+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+and+Theiler%27s+virus-induced+demyelinating+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Mouse models of multiple sclerosis: experimental autoimmune encephalomyelitis and Theiler's virus-induced demyelinating disease.</a> Methods Mol Biol. 900, Clifton, N.J. 381-401 (2012).</li>
<li>International Mouse Phenotyping Resource of Standardised Screens. , Available from:
 Rotarod. https://www.mousephenotype.org/impress/protocol/158/12 (2016).</li>
<li>Bohlen, M., Cameron, A., Metten, P., Crabbe, J. C., Wahlsten, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calibration+of+rotational+acceleration+for+the+rotarod+test+of+rodent+motor+coordination%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Calibration of rotational acceleration for the rotarod test of rodent motor coordination.</a> J Neurosci Methods. 178, 10-14 (2009).</li>
<li>Hopkins, M. E., Bucci, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interpreting+the+effects+of+exercise+on+fear+conditioning%3A+the+influence+of+time+of+day%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Interpreting the effects of exercise on fear conditioning: the influence of time of day.</a> Behav Neurosci. 124, 868-872 (2010).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突披露。

尽管存在一些局限性，转棒性能测试仍是评估TMEV-IDD中运动功能及功能障碍的重要工具，也可用于评估药物干预对小鼠残疾进展的影响。
Rotarod 实验最早于1957年被描述为一种用于测量啮齿类动物神经功能缺损的工具11。实验中，啮齿类动物需在一根旋转杆上行走，旋转速度逐渐增加，并尽力避免跌落至地面。记录动物从杆上跌落的潜伏期，并将其作为运动功能的定量终点指标：动物的神经功能损害越严重，其跌落时间越早。与传统的视觉评分系统相比，该实验的明显优势在于能够产生一个可用于统计分析的客观变量，从而量化治疗手段和实验操作对功能障碍进展的影响3。诸如翻正反射测试等视觉评分系统可能因其操作更简单、检测更快速而在评估小鼠运动能力时被优先选用。然而，这些系统缺乏 Rotarod 性能测试等定量方法所具备的精确性，因此不适用于监测具有轻度且进行性神经功能损害的小鼠的自然病程或表型变化。另一方面，像翻正反射测试这样的视觉检测方法特别适用于年龄过小或病情过重而无法在 Rotarod 上进行测试的小鼠。
为了...

鼠脑心肌炎病毒（Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus, TMEV）是一种嗜神经性的单链RNA病毒，可在小鼠中枢神经系统（CNS）中持续感染。在易感小鼠中，TMEV感染会引发一种由免疫介导的慢性进行性脱髓鞘疾病，称为TMEV诱导的脱髓鞘疾病（TMEV-IDD）。小鼠的实验性感染病程与多发性硬化症（MS）的进行性类型相似。TMEV-IDD具有两个明显不同的阶段：急性期和慢性期。急性期表现为轻度、通常为亚临床的脑炎1,2。第二个阶段即慢性期，通常在感染后约一个月开始，其特征是缓慢进展的功能障碍，伴随脱髓鞘、炎症和轴突损伤1,2。小鼠表现出的虚弱常伴有痉挛，偶尔还会出现严重的强直性痉挛。
由于目前尚无药物能够改善患者的进行性残疾，研究人员对TMEV-IDD尤为关注，该模型是监测疾病修饰药物对疾病进展影响的理想动物模型。然而，无论是在小鼠还是多发性硬化症患者中，残疾进展的监测都需要长期持续的临床观察。在小鼠中，可通过转棒性能测试实现对残疾进展的长期监测。
转棒实验是一种标准的行为学测试，用于评估啮齿类动物与运动相关的功能，如协调性、平衡能力和疲劳程度。小鼠需在一根持续加速旋转的转棒上保持平衡，记录其从转棒上掉落的时间潜伏期。神经系统功能障碍的动物无法像对照组动物一样长时间停留在转棒上，当转速超过其运动能力时，通常会提前掉落。动物的神经功能损伤越严重，掉落得越早，时间潜伏期也越短。
与传统的视觉评分系统相比，转棒实验的优势在于其能够产生一个客观且可测量的变量——时间潜伏期——该变量最终可用于统计分析，以量化治疗和实验操作的效果3。
在达特茅斯学院的神经免疫学实验室（LONI）中，小鼠需接受适应性训练方案，在感染TMEV之前进行测试，以使其熟悉仪器操作，并评估其正常的&#34;基线&#34;平衡协调能力与运动控制能力4,5。在确定基线值后，小鼠被感染TMEV，并在随后数月内每周测试一至两次。实际测试方案平均持续150天，从而可在整个脱髓鞘疾病病程中系统评估平衡能力、协调能力及运动控制能力的进行性下降情况。
迄今为止，在达特茅斯已有数百只TMEV-IDD模型小鼠和假手术处理的小鼠接受了神经功能障碍检测。这些小鼠曾接受过多种免疫调节治疗，但尚未发现任何药物能够有效缓解其残疾的进展6,7。本文及相关实验方案描述了如何表征TMEV-IDD小鼠所表现出的进行性神经功能损害。特别是，该方案提供了特定测试参数的建议，这些参数被认为通常适用于利用转棒实验研究TMEV-IDD小鼠的神经功能障碍。此方法可为评估以下两方面提供基线依据：（1）该小鼠模型与进行性多发性硬化症（MS）的相关性；（2）其在测试针对MS等进行性神经疾病疗法中的应用价值。显然，转棒实验以及当前优化的测试参数和操作流程不仅有助于检测TMEV-IDD小鼠模型中的进行性神经功能障碍，还可用于发现其他病毒诱导和/或遗传性神经退行性疾病小鼠模型中的功能损害。

<table><tbody><tr><td>4至6周龄SJL/JCrHsd小鼠</td><td>Envigo</td><td>#052</td><td></td></tr><tr><td>TMEV病毒原液</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>异氟烷蒸发器</td><td>Harvard Apparatus</td><td>#340471</td><td></td></tr><tr><td>胰岛素注射器 U-100 29G × 0.5 cc</td><td>BD</td><td>#328203</td><td></td></tr><tr><td>Rotamex-5 四通道小鼠转棒仪，带RS-232接口和软件</td><td>Columbus Instruments</td><td>#0890M</td><td></td></tr></tbody></table>

测量多发性硬化小鼠模型中的进行性神经功能障碍

Measuring Progressive Neurological Disability in a Mouse Model of Multiple Sclerosis

在通过脑内感染Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus（TMEV）后，易感的SJL小鼠会发展为一种慢性进行性脱髓鞘疾病，其临床特征与多发性硬化症（MS）的进行性类型相似。小鼠表现出进行性功能障碍，伴随运动和感觉功能的丧失，可通过多种仪器和方案进行评估。其中，转棒实验（Rotarod performance test）是一种非常常见的行为学检测方法，其优势在于能够提供客观的测量结果，但该实验常被误认为操作简单直接。与某些MS模型中使用的一些高度主观的视觉评分系统相比，转棒实验可产生客观、可量化、连续的变量（即持续时间），从而实现近乎完美的评分者间一致性。然而，只有在各实验室之间复制相同的测试参数时，才能实现跨实验室的可靠性。本文针对转棒实验，提出了关于具体测试参数的建议，包括转棒的尺寸、转速和加速度；对动物的训练次数；以及数据处理方法。

本代表性实验的目的是比较由TMEV的Daniels（DA）株和BeAn株所诱导的神经功能障碍。为本研究目的，将32只雌性SJL小鼠分为两组，分别经颅内接种TMEV的DA株（n = 16）或BeAn株（n = 16），并随时间监测其临床症状。另设一组20只小鼠进行假处理（即， 生理盐水通过颅内注射）作为健康对照组。
采用转棒性能测试评估TMEV感染小鼠及假手术对照组的慢性疾病进展。小鼠经个体耳标标记后，在注射TMEV前一周内每日进行适应性训练，随后进入持续125天的实际测试阶段。在每次测试日，记录每只小鼠在转棒上的停留时间（定义为单次测试中保持在棒上的时长），并以当日3次试验的平均值单独保存。转棒数据还以NFI及假手术组归一化的adjNFI形式表示。
如图所示 图3A，TMEV感染对...

本文介绍了一种用于检测TMEV感染小鼠进行性神经功能障碍的优化型Rotarod性能测试方案。

经脑内感染鼠脊髓灰质炎病毒（Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus, TMEV）后，易感的SJL小鼠会出现慢性进行性脱髓鞘……

本实验的总体目标是评估慢性脱髓鞘疾病小鼠模型中进行性神经功能损伤的程度。我们通过提供适用于研究进行性多发性硬化 Theiler 病毒模型中长期神经功能障碍的检测参数建议，采用转棒实验（Rotarod test）来实现这一目标。该方法可为评估小鼠模型与进行性脱髓鞘病变的相关性，以及其在测试针对多发性硬化等进行性神经疾病疗法中的应用价值提供基线依据。与传统的视觉评分系统相比，这种优化检测方法的优势在于能够提供一个客观的变量，用于量化治疗手段和实验操作对运动功能长期影响的效果。本实验操作将由达特茅斯大学神经免疫学实验室的技术员Darlene Royce进行演示。为评估小鼠的基础平衡协调能力和运动控制能力，需在TMEV感染前5天开始适应性操作：首先让小鼠在检测室中适应环境至少30分钟。在小鼠适应环境的同时，预先将转棒仪设置为感染后第5天（minus five DPI）的训练参数。然后，抓住小鼠的尾巴，将其放置在转棒上，使其朝向远离操作者的方向。如果小鼠掉落或跳跃，应将其重新放回转棒上的原位置，直至所有小鼠均处于正确位置。加载全部四只小鼠后，按下回车按钮以开始实验。确保计时器自动启动，并观察每条通道显示的每分钟转数。随后，当每只动物从转棒上掉落时，记录掉落时转棒的转速以及动物在转棒上停留的持续时间。所有小鼠跌落后，使用纸巾清除转棒上的粪便颗粒和尿液，因为尿液和粪便的存在可能会影响小鼠对转棒的抓握能力。经过3分钟休息后，给予小鼠第二次和第三次试验，每次试验最长持续时间为240秒。在每次测试日共进行三次试验。最后，将小鼠放回其饲养笼中。在接种前第4天、第3天、第2天和第1天，预先设置转棒仪的相应训练程序参数，并重复进行转棒实验。首先，将装有4至6周龄雌性SJL小鼠的笼子从架子上移至方便操作的工作区域。使用耳缘打孔法标记小鼠，以便对每只小鼠的临床表现和组织病理学病变进行个体化评估。随后，用29号胰岛素注射针头吸取30微升PBS配制的TMEV感染原液。准备麻醉气体机，确保在操作过程中有充足氧气和异氟烷供应。将动物放入诱导室并封好顶部。数分钟后，将动物从诱导室中取出，通过捏压足垫测试小鼠，以确认麻醉效果充分。接着，用70%异丙醇清洁注射部位，并通过徒手注射将30 µL TMEV感染原液注入右侧大脑半球。最后，待小鼠完全清醒并能够自由活动后，将其放回饲养笼中。感染后第7天，按照适当的实验参数预先设置旋转棒仪，并根据相应的实验方案参数重复完整的旋转棒训练程序。每天完成第三次试验后，称量每只小鼠的体重，并在数据表中记录体重数值。每周对小鼠进行两次测试，持续六周，方法相同。六周后，按照相同的实验方案每周测试一次小鼠，持续约150天。随后分析原始数据，并以神经功能指数（NFI）表示。为确定每个小鼠的个体 NFI 值，需先计算每只小鼠在感染后 15 至 45 天期间所有跑步时间的平均值，作

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在多发性硬化症的小鼠模型测量进行性神经功能残疾

本文介绍了两种成熟的运动协调任务的实验方案：加速转棒实验和水平横杆实验，以及牛津大学近期开发的另外两种测试方法：静态杆实验和平行杆实验。这些测试不仅能够检测可能具有独立研究价值的运动功能障碍，还可作为其他行为学测试中潜在的影响变量。...

测量小鼠的运动协调能力

对一种肌萎缩侧索硬化症（ALS）的小鼠模型进行临床和行为学评估。作为配套免疫组织化学分析的前提，本文详细展示了脊髓组织的制备过程。...

用于肌萎缩侧索硬化症（ALS）小鼠模型的临床检测与脊髓取出

准确测量多发性硬化症中的神经学和神经心理学损害及功能障碍具有挑战性。我们报告了一种新测试方法——多发性硬化症表现测试（Multiple Sclerosis Performance Test,...

多发性硬化症功能评估测试（MSPT）：一种基于iPad的残疾评估工具

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一种快速表型神经功能评分系统用于评估ALS的SOD1-G93A小鼠模型中的疾病进展

小鼠多发性硬化EAE模型中视神经炎和脑部炎症的生物发光与近红外成像

矢状面运动学步态分析可提供关于运动执行方式的高度精确信息。本文描述了这些技术在识别经受自身免疫介导脱髓鞘小鼠步态缺陷中的应用。这些方法也可用于表征其他具有运动功能障碍的小鼠模型的步态缺陷。...

C57BL/6小鼠经MOG35-55诱导实验性自身免疫性脑脊髓炎后的矢状面运动学步态分析

神经传导测量是评估神经退行性疾病小鼠模型的有用工具，但通常仅用于刺激后肢坐骨神经。本文介绍了一种测量复合肌肉动作电位（CMAP）的技术 体内...

体内电生理记录小鼠运动神经元变性模型前肢复合肌肉动作电位

提供了一种利用 MouseWalker（MW）工具箱对自由行走小鼠的运动模式进行定量描述的实验流程，该流程涵盖从初始视频录制和追踪到后期定量分析的各个环节。采用小鼠脊髓挫伤模型以展示 MW...

利用MouseWalker量化脊髓损伤小鼠模型中的运动功能障碍

实验性自身免疫性脑脊髓炎（EAE）是多发性硬化症的动物模型。本文介绍了一种对EAE小鼠脊髓中的炎症、脱髓鞘和轴突损伤进行评分的方法。此外，还提供了一种定量检测小鼠血清中可溶性神经丝轻链水平的方法，有助于在活体小鼠中评估轴突损伤。...

评估实验性自身免疫性脑脊髓炎中的中枢神经系统炎症、脱髓鞘及轴突损伤

实验性自身免疫性脑脊髓炎是目前最常用的多发性硬化小鼠模型之一。在本方案中，对两种性别的C57BL/6J小鼠使用髓鞘少突胶质细胞糖蛋白肽进行免疫，主要导致尾巴和肢体的上升性轻瘫。本文将讨论EAE的诱导与评估方案。...

在两种性别中建模多发性硬化症：MOG35-55诱导的实验性自身免疫性脑脊髓炎

本文介绍了一种在大卒中模型小鼠中实施高度可转化且经独立验证的小鼠卒中单元（mSU）概念的实验方案。同时提供了一种标准化的实验性局灶性卒中评分在小鼠中的操作流程，用于评估即使在长期阶段仍可检测到的卒中局灶性神经功能缺损。...

用于转化型小鼠脑卒中研究的标准化神经功能评分小鼠脑卒中单元方案

了解如何使用优化的转棒测试评估TMEV感染小鼠的进行性神经功能障碍。该方法为研究多发性硬化症等慢性脱髓鞘疾病提供了客观的神经功能量化指标，有助于评估治疗效果。

测量多发性硬化小鼠模型中的进行性神经功能障碍

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