Name: ACT-PRESTO:生物组织清算和体积成像方法免疫标记 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 46 s
Description: 了解ACT-PRESTO组织透明化与免疫标记技术，用于神经科学和发育生物学研究。该方法利用离心力和注射泵输送抗体，可在小鼠肾脏和肝脏组织中实现300-350微米的标记深度，无需切片即可进行亚细胞水平的三维分子成像分析。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本研究由韩国科学、信息通信技术与未来规划部资助的国家研究基金会（NRF）脑科学研究计划支持（项目编号：NRF-2015M3C7A1028790）。

动物实验必须符合所有相关的政府和机构规定。
1. 试剂的准备
<ol>
	<li>对于水凝胶单体溶液（A4P0）：将20 g丙烯酰胺加入450 mL 0.1x磷酸盐缓冲液（PBS）中，再用0.1x PBS定容至500 mL。 
	警告：丙烯酰胺单体具有毒性。所有操作均须在通风橱中进行，并佩戴个人防护装备，包括面罩、实验服、手套和封闭式鞋。
	<ol>
		<li>使用前立即在通风橱中，将100 mg 2,2'-偶氮双[2-(2-咪唑啉-2-基)丙烷]二盐酸盐加入50 mL锥形管中的40 mL水凝胶单体溶液（A4P0）内。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用于电泳组织透明（ETC）缓冲液：将40 g十二烷基硫酸钠（SDS）和12.37 g硼酸加入800 mL去离子H2O (dH2O）。用 NaOH 调节 pH 至 8.5，并用额外的 dH₂O 定容至 1 L。2O. 
	注意：SDS 是一种有害化学物质，操作时需小心谨慎。</li>
	<li>对于CUBIC-mount溶液：加入250 g蔗糖、125 g尿素和125 g N,N,N',N'-四(2-羟丙基)乙二胺加入至150 mL去离子水中2O，并用去离子水定容至 500 mL2O.</li>
</ol>
2. 样品制备 &amp;#38; 固定
<ol>
	<li>处死小鼠。
	<ol>
		<li>在同一注射器中配制阿法沙龙（1 mg/kg）和赛拉嗪（0.5 mg/kg）。</li>
		<li>腹腔注射阿法沙龙与赛拉嗪的混合液，等待3分钟，使小鼠进入无意识状态。</li>
		<li>在继续操作前，需确认麻醉后的小鼠对疼痛刺激（如尾部夹捏）无反应。 
		注意：动物操作应遵循所在机构的相应指导原则。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用含肝素（100 U/mL）的100 mL 0.9% NaCl溶液（pH 7.4–7.5）经心脏灌注小鼠以清除血液，随后用100 mL含4%多聚甲醛（PFA）的1×PBS溶液（pH 7.4）进行灌注固定14。 
	注意：PFA溶液具有毒性，配制PFA溶液及后续所有操作必须在通风橱内进行，并佩戴个人防护装备。</li>
	<li>剪下小鼠头部，切开皮肤，用小剪刀在两眼之间剪开颅骨。</li>
	<li>使用小型弯头镊子移除颅骨碎片。</li>
	<li>取出脑组织或所需器官。</li>
	<li>将脑组织和器官在4 °C条件下，置于4% PFA后固定液中孵育过夜。 
	注意：如需对特定区域进行组织透明化处理，可在组织固定后解剖出目标区域或修剪组织。 
	注意：PFA溶液具有毒性，经心脏灌注及后续所有小鼠操作必须在通风橱内进行，并佩戴个人防护装备。</li>
</ol>
3. 水凝胶单体灌注与聚合
<ol>
	<li>将固定的器官在 A4P0 水凝胶单体溶液中于 4 °C 下孵育 12–24 小时，并轻轻振荡。</li>
	<li>水凝胶单体浸渗组织的聚合。
	<ol>
		<li>将样品转移至含有 5 mL 水凝胶单体溶液的 10 mL 圆底管中。用 Parafilm 封闭圆底管管口。</li>
		<li>向装有浸渗了水凝胶的完整小鼠脑组织样品的圆底管中通入氮气 1 分钟，以去除氧气。迅速并紧密地封闭含有样品的管子。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将管子置于 37 °C 水浴中 2 小时。</li>
	<li>用 0.1x PBS 快速洗涤聚合后的样品，以去除多余的水凝胶。 
	注意： 水凝胶单体具有毒性。为避免皮肤接触水凝胶单体，所有操作均应在通风橱中进行，并佩戴个人防护装备，包括面罩、实验服和手套。 
	备注： 聚合后的组织可在含叠氮化钠的 0.1x PBS 中于 4 °C 保存超过 2 周。 
	注意： 叠氮化钠具有高度急性毒性。所有操作均应在通风橱中进行，并佩戴个人防护装备，包括面罩、实验服和手套。</li>
</ol>
4. 电泳组织透明化（ETC）
<ol>
	<li>将聚合后的样品转移至组织容器中，并将组织容器放入ETC室。</li>
	<li>使用蠕动泵将ETC缓冲液注入ETC室。</li>
	<li>设定ETC运行条件并启动ETC。采用以下设置：
	<ol>
		<li>对于完整器官的ETC设置，使用以下参数：电流（1.5 amp）、温度（37 °C）、运行时间（6.0 h）、泵速（30 rpm）。</li>
		<li>对于1至2 mm厚的小鼠脑切片的ETC设置，使用以下参数：电流（1.5 amp）、温度（37 °C）、运行时间（2.0 h）、泵速（30 rpm）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将透明化后的样品转移至含有45 mL 0.1x PBS的50 mL锥形管中。用0.1x PBS多次清洗样品，直至轻轻振荡管子时不再出现气泡（以确认SDS已完全去除）。</li>
</ol>
5. ACT 处理组织的免疫标记
<ol>
	<li>对于小鼠全脑：将样本置于含有1x PBS、6% 牛血清白蛋白（BSA）、0.1% Triton X-100 和 0.01% 叠氮化钠的3 mL抗体溶液（抗体稀释液）中，加入酪氨酸羟化酶（TH）抗体（稀释比例为1/500），在37 °C条件下轻度振荡孵育4天。在第2天结束时更换抗体溶液。
	<ol>
		<li>在50 mL锥形管中用45 mL的0.1x PBS清洗样本，持续3–5小时，每小时更换一次缓冲液。</li>
		<li>将样本置于3 mL抗体稀释液中，加入驴抗兔488二抗（稀释比例为1/500），在37 °C条件下轻度振荡孵育4天。在第2天更换稀释后的抗体溶液。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>对于1–2 mm厚的脑组织切片：将样本置于0.5–1 mL抗体稀释液中，加入IV型胶原抗体（稀释比例为1/500），在37 °C条件下轻度振荡孵育过夜或最长1天。
	<ol>
		<li>在15 mL锥形管中用12 mL的0.1x PBS清洗样本，持续1–2小时，每小时更换一次缓冲液。</li>
		<li>将样本置于0.5–1 mL抗体稀释液中，加入Cy3标记的抗兔二抗（稀释比例为1/500），在37 °C条件下轻度振荡孵育过夜或最长1天。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>用0.1x PBS清洗样本3–5小时，每小时更换一次缓冲液。</li>
	<li>成像前，将样本置于适量CUBIC-mount溶液中，在室温下轻柔振荡孵育1小时。更换新鲜的CUBIC-mount溶液，再孵育1小时。 
	注意： 在小鼠ACT处理的组织中，已有76种抗体表现出良好的效果，其中包括31种单克隆抗体14。预先标记的组织可与ACT处理组织中另外两种荧光染料的免疫标记联合使用。</li>
</ol>
6. 致密组织的免疫标记（PRESTO）
<ol>
	<li>c-PRESTO 
	注意：c-PRESTO 适用于小尺寸样本，例如完整睾丸、完整肾脏或较大器官的小片组织。
	<ol>
		<li>将样本转移至 1.5-mL 离心管中，加入 500 µL 抗体稀释液（IV 型胶原抗体稀释比例为 1/500），在 600 × g 条件下离心 2 小时。</li>
		<li>用 0.1x PBS 通过 600 × g 离心 30 分钟洗涤染色后的样本。</li>
		<li>加入 500 µL 抗体稀释液（Cy3 标记的兔抗二抗稀释比例为 1/500），在 600 × g 条件下离心 2 小时。</li>
		<li>用 0.1x PBS 通过 600 × g 离心 30 分钟洗涤染色后的样本。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>s-PRESTO 
	注意：s-PRESTO 适用于较大组织。
	<ol>
		<li>准备一支 30-mL 注射器，并将其连接至三通阀（图 1A）。使用热熔胶枪对三通阀进行加固，以承受高压条件（图 1B）。</li>
		<li>将样本转移至处于关闭状态的三通阀连接注射器中。</li>
		<li>加入 5–7 mL 抗体稀释液（IV 型胶原抗体稀释比例为 1/500）。打开阀门，将抗体溶液注入样本中。</li>
		<li>将注射器活塞调至 17-mL 位置，以提供足够的灌注/回吸行程空间。此操作可在阀门开启状态下完成。注射器设置完成后关闭三通阀。</li>
		<li>将装有样本的注射器置于注射泵上。设置注射泵参数为灌注/回吸流速 10 mL/min，暂停时间 4 分钟，运行模式为连续循环（图 1C）。 
		注意： 泵持续灌注至目标体积（10 mL）后，经短暂暂停（4 分钟）改变流动方向。</li>
		<li>在室温下运行注射泵 3–24 小时（图 1F）。</li>
		<li>打开三通阀，用 0.1x PBS 更换溶液。</li>
		<li>使用注射泵，每次用 0.1x PBS 洗涤染色样本 1 小时，共洗涤两次。</li>
		<li>更换为含 Cy3 标记的兔抗二抗的抗体稀释液（稀释比例为 1/500），并运行注射泵 3–24 小时。</li>
		<li>打开三通阀，用 0.1x PBS 更换溶液。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>成像前，将染色样本置于适量 CUBIC-mount 溶液中，在室温下轻轻振荡孵育 1 小时。更换新鲜的 CUBIC-mount 溶液，继续孵育 1 小时。</li>
</ol>
7. 成像
<ol>
	<li>将标记好的组织放入共聚焦培养皿中，加入CUBIC-mount溶液至完全覆盖组织。在组织上放置盖玻片。使用共聚焦显微镜在10倍物镜下对组织进行成像14。</li>
</ol>

<ol><li>Micheva, K. D., Smith, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Array+tomography%3A+a+new+tool+for+imaging+the+molecular+architecture+and+ultrastructure+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Array tomography: a new tool for imaging the molecular architecture and ultrastructure of neural circuits.</a> Neuron. 55, 25-36 (2007).</li>
<li>Dodt, H. -U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultramicroscopy%3A+three-dimensional+visualization+of+neuronal+networks+in+the+whole+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Ultramicroscopy: three-dimensional visualization of neuronal networks in the whole mouse brain.</a> Nat Methods. 4, 331-336 (2007).</li>
<li>Chung, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+molecular+interrogation+of+intact+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22NATURE%22%5BJournal%5D)">Structural and molecular interrogation of intact biological systems.</a> NATURE. 497, 332-337 (2013).</li>
<li>Ke, M. -T., Fujimoto, S., Imai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SeeDB%3A+a+simple+and+morphology-preserving+optical+clearing+agent+for+neuronal+circuit+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">SeeDB: a simple and morphology-preserving optical clearing agent for neuronal circuit reconstruction.</a> Nat Neurosci. 16, 1154-1161 (2013).</li>
<li>Ert&#252;rk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+imaging+of+solvent-cleared+organs+using+3DISCO%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO.</a> Nat Protoc. 7, 1983-1995 (2012).</li>
<li>Hama, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scale%3A+a+chemical+approach+for+fluorescence+imaging+and+reconstruction+of+transparent+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain.</a> Nat Neurosci. 14, 1481-1488 (2011).</li>
<li>Renier, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((iDISCO%3A+a+simple%2C+rapid+method+to+immunolabel+large+tissue+samples+for+volume+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">iDISCO: a simple, rapid method to immunolabel large tissue samples for volume imaging.</a> Cell. 159, 896-910 (2014).</li>
<li>Susaki, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+imaging+with+single-cell+resolution+using+chemical+cocktails+and+computational+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis.</a> Cell. 157, 726-739 (2014).</li>
<li>Tainaka, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-body+imaging+with+single-cell+resolution+by+tissue+decolorization%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Whole-body imaging with single-cell resolution by tissue decolorization.</a> Cell. 159, 911-924 (2014).</li>
<li>Yang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+phenotyping+within+transparent+intact+tissue+through+whole-body+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Single-cell phenotyping within transparent intact tissue through whole-body clearing.</a> Cell. 158, 945-958 (2014).</li>
<li>Kim, S. -Y., Chung, K., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+microscopy+mapping+of+connections+in+the+intact+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cogn+Sci%22%5BJournal%5D)">Light microscopy mapping of connections in the intact brain.</a> Trends Cogn Sci. 17, 596-599 (2013).</li>
<li>Yushchenko, D. A., Schultz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+clearing+for+optical+anatomy%5BTitle%5D)+AND+%22Angew+Chem+Int+Edit%22%5BJournal%5D)">Tissue clearing for optical anatomy.</a> Angew Chem Int Edit. 52, 10949-10951 (2013).</li>
<li>Tomer, R., Ye, L., Hsueh, B., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+CLARITY+for+rapid+and+high-resolution+imaging+of+intact+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Advanced CLARITY for rapid and high-resolution imaging of intact tissues.</a> Nat Protoc. 9, 1682-1697 (2014).</li>
<li>Lee, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ACT-PRESTO%3A+Rapid+and+consistent+tissue+clearing+and+labeling+method+for+3-dimensional+%283D%29+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">ACT-PRESTO: Rapid and consistent tissue clearing and labeling method for 3-dimensional (3D) imaging.</a> Sci Rep. 6, 18631(2016).</li>
<li>Murray, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scalable+Proteomic+Imaging+for+High-Dimensional+Profiling+of+Intact+Systems%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Scalable Proteomic Imaging for High-Dimensional Profiling of Intact Systems.</a> Cell. 163, 1500-1514 (2015).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

固定不充分或水凝胶渗透不完全可能导致组织在透明化过程中蛋白质丢失和组织变形。完整的成年小鼠脑组织应先在4%多聚甲醛中4℃孵育过夜，随后在至少20 mL的水凝胶单体溶液中轻轻振荡浸润12至18小时。对于较大的组织，包括人脑切片和脊髓等人类组织，需延长在水凝胶单体溶液中的浸泡时间。ACT方案易于应用于固定组织的透明化，因为组织固定与聚合物灌注步骤是分离的。在组织透明化后，人类组织可被多种抗体良好染色。需要注意的是，ACT透明化技术与乙醇、甲醇等醇类固定剂不兼容。
组织-水凝胶聚合步骤对于透明化处理后获得高质量的组织样品也至关重要。由于氧气会抑制丙烯酰胺的聚合反应，因此应通过在氮气注入系统下对含有组织的溶液进行脱气处理以去除氧气。或者，也可使用真空腔室配合加热模块处理23小时来实现去氧。
清除速率取决于多种因素，包括器官大小、脂质或细胞外基质纤维蛋白的含量、固定状态等。 等等。 大多数成年小鼠组织均可在ETC中过夜完成透明化。然而，存在过度透明化和组织肿胀的风险，因此透明化时间的差异需予以重要考虑。组织透明化的条件应通过实验经验确定。重要的是，细胞外基质（ECM）的成分可能影响透明化后组织的外观。由于ACT无法清除致密的蛋白质纤维，即使经过ETC缓冲液中的ACT处理，组织颜色仍保持白色或不透明状态。然而，当这些器官浸入折射率匹配溶液后，即变为透明。
组织肿胀的速率似乎取决于组织的细胞外基质（ECM）含量，柔软的器官（如脑）比致密器官表现出更高的肿胀比例。由于增强的组织肿胀有助于组织透明化过程，ACT 通常在大多数情况下使用基于蒸馏水的缓冲液。在某些情况下，当组织肿胀或暂时性形变不可取时（例如胚胎样本），可采用含有 0.1x PBS 的缓冲液以实现高分辨率成像。还应注意，缓冲液中较高的盐浓度可能导致组织收缩。
ACT 方法可以实现小鼠整个器官甚至全身体组织的透明化14。然而，对透明化组织进行深层成像需要特殊的显微镜和物镜。因此，使用常规共聚焦显微镜成像时，厚度为 1 至 2 毫米的脑组织效果最佳。据我们经验，ACT 处理后的组织中已标记抗体的去除效果依赖于具体抗体，因此不建议进行多轮不同抗体的标记。多种抗体（如 TH 和 GFAP）在全脑免疫标记中表现出特别良好的效果14。另一方面，某些抗体（如 Tuj1 或 Map2）通常仅能标记组织表面。这一问题可能通过其他方法（如 SWITCH15）得到改善。另一个潜在的局限性在于，由于组织透明化过程中会发生组织膨胀与收缩，可能难以在 ACT 处理后的组织中保持精细的蛋白质结构。
PRESTO 技术可广泛应用于多种组织标记方法。例如，在使用预先标记组织的透明化组织技术（如 SeeDB4 和 iDISCO7）中，致密组织的免疫标记需要数天至数周的孵育时间。然而，PRESTO 可将孵育时间缩短至数小时，使得在一天内完成整个流程成为可能，即使对于厚度达 1 mm 的致密组织亦是如此。PRESTO 能够提高对厚且致密组织，甚至未经透明化处理的厚组织进行深层标记的效率。由于 PRESTO 仅需使用台式离心机或注射泵，无需任何特殊设备，因此该技术易于与常规实验室操作流程相结合。

神经科学领域的挑战之一是可视化完整脑组织中的神经环路连接以及单个细胞。直到最近，以这种方式展示神经元之间的连接需要三个步骤：1）对组织进行连续切片；2）对特定靶标（如轴突或蛋白质）进行分子标记；3）通过计算机对二维连续图像进行配准或对齐，进而实现全脑的三维重建1。这些步骤费时费力，且在切片和标记过程中容易丢失信息，使得神经网络的绘制极为困难。然而，目前已开发出多种无需切片即可实现完整组织可视化的技术。通过组织透明化技术，生物组织可变得光学透明2-10。其中主要方法之一是降低完整组织与浸没溶液之间的折射率差异，从而减少光在组织中的散射，使组织透明化，进而实现深层结构的观察。某些类型的浸没溶液具有疏水性，在脱水过程中会导致荧光迅速淬灭。因此，这些方法不适用于长时间的荧光成像11,12。与使用疏水性试剂的方法不同，其他方法采用亲水性试剂进行组织透明化处理，例如 SeeDB4 和 Scale6，这些方法能够较好地保持生物组织的结构信息和荧光信号4,6,8。然而，包括抗体在内的大分子仅靠扩散难以渗透至完整组织的内部核心区域。因此，在致密组织深层区域对靶分子进行预先标记在技术上仍具有挑战性。
在最近开发的一种组织透明化方法CLARITY3中，使用丙烯酰胺形成水凝胶包埋的生物组织，并在含十二烷基硫酸钠（SDS）的溶液中通过电泳去除脂质。随后将样品浸入折射率匹配的溶液中，以减少光散射3。后续在高级CLARITY13和PACT（被动透明化技术）10中对脂质清除系统进行了改进。聚合后，丙烯酰胺链与蛋白质交联，形成水凝胶-组织复合物。脂质成分无法与丙烯酰胺交联，因此可在含SDS的缓冲液中通过电泳将其去除。通过主动清除脂质，脑组织的透明度显著提高9。然而，这些方法并未解决游离扩散无法实现深层标记的问题。为克服这一局限性，需要开发将试剂主动输送至厚组织最深层的技术。
尽管CLARITY技术能够实现组织透明化和深层组织成像，但它并非一种简单或快速的流程。清除整个小鼠大脑可能需要数周时间7,14。组织的快速透明化对于将此类方法应用于生命科学研究或体积诊断的基本或临床实验室环境至关重要。本方案提供了一种简化的生物组织透明化流程，并通过压力辅助递送免疫染色实现后续蛋白质检测。该方法适用于与成像技术联用，进行大视野高分辨率体积成像以及三维数据处理系统分析。

<table><tbody><tr><td>4% 多聚甲醛</td><td>Lugen SCI&amp;nbsp;</td><td>LGB-1175-4B</td><td>样本固定&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>丙烯酰胺</td><td>Affymetrix</td><td>75820</td><td>水凝胶单体溶液&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>2,2&amp;rsquo;-偶氮双[2-(2-咪唑啉-2-基)丙烷]二盐酸盐</td><td>Wako Pure Chemical Industries&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>VA-044</td><td>水凝胶单体溶液&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>硼酸</td><td>Affymetrix</td><td>76324</td><td>ETC 缓冲液</td></tr><tr><td>十二烷基硫酸钠 (SDS)</td><td>Affymetrix</td><td>18220</td><td>ETC 缓冲液</td></tr><tr><td>氢氧化钠颗粒</td><td>Junsei chemical</td><td>1310-73-2</td><td>ETC 缓冲液</td></tr><tr><td>牛血清白蛋白 (BSA)</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-2323A</td><td>免疫标记</td></tr><tr><td>曲拉通 X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>免疫标记</td></tr><tr><td>叠氮化钠</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2002</td><td>免疫标记</td></tr><tr><td>酪氨酸羟化酶 (TH)</td><td>Millipore</td><td>AB152</td><td>抗体/免疫标记</td></tr><tr><td>Alexa Fluor Cy3 驴抗兔 IgG (H+L)</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>711-165-152</td><td>二抗/免疫标记</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 驴抗兔 IgG (H+L)</td><td>Life Technologies - Molecular Probes</td><td>A21206</td><td>二抗/免疫标记</td></tr><tr><td>共聚焦培养皿</td><td>SPL lifesciences</td><td>101350</td><td>成像</td></tr><tr><td>共聚焦显微镜</td><td>Leica</td><td>SP8</td><td>成像</td></tr><tr><td>蔗糖</td><td>Junsei chemical</td><td>31365-0301</td><td>CUBIC-封片溶液&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>尿素</td><td>Affymetrix</td><td>23036</td><td>CUBIC-封片溶液&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;N,N,N&amp;rsquo;,N&amp;rsquo;&lt;/em&gt;-四(2-羟丙基)乙二胺</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>122262</td><td>CUBIC-封片溶液&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>ETC 电泳室</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C10101</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>ETC 电泳室控制器</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C10201</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>温度探头</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12101</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>蠕动泵</td><td>保定雷诺恒业精密泵有限公司</td><td>YZ1515X</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>缓冲液储液罐</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C10401</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>组织容器&amp;nbsp;</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12001</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>单组织容器支架</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12002</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>小鼠脑片支架</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12004</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>大鼠全脑支架</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12007</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>蠕动泵管路</td><td>Logos Biosystems, Inc.</td><td>C12104</td><td>ETC 系统</td></tr><tr><td>台式离心机</td><td>韩一科学工业有限公司</td><td>MICRO 12</td><td>c-PRESTO</td></tr><tr><td>注射泵</td><td>保定雷诺恒业精密泵有限公司</td><td>LSP02-1B</td><td>s-PRESTO</td></tr><tr><td>注射器 (30 mL)</td><td>韩国疫苗株式会社</td><td>KV-S30</td><td>s-PRESTO</td></tr><tr><td>三通旋塞阀</td><td>协成医疗株式会社</td><td>HS-T-01N</td><td>s-PRESTO</td></tr></tbody></table>

act-presto：用于大体积成像的生物组织透明化与免疫标记方法

ACT-PRESTO: Biological Tissue Clearing and Immunolabeling Methods for Volume Imaging

在细胞水平上对器官或整个生物体的精细结构进行鉴定和探索，是生物学中的基本挑战。传统方法需要耗费大量时间和精力才能获得三维图像，包括对完整组织进行切片、免疫标记以及对连续切片组织进行成像，这些步骤在每个环节都会导致信息丢失。在近期发展的完整组织高分辨率成像技术中，分子表征被限制于蛋白质标记。然而，目前可用的器官透明化方案通常需要相当长的时间，使得组织透明化技术难以在实验室中广泛应用。我们近期建立了一种快速且高度可重复的方案，称为 ACT-PRESTO（active clarity technique–pressure related efficient and stable transfer of macromolecules into organs，主动透明技术——压力相关的大分子高效稳定递送至器官），可在数小时内实现组织透明化。此外，ACT-PRESTO 能够结合常规方法实现快速免疫标记，并通过施加压力或对流流动，加速抗体向致密厚组织深层的渗透。本文描述了组织样本的制备方法、利用电泳去除脂质实现透明化的步骤，以及通过压力辅助递送进行免疫染色的操作流程。该方案的快速性和一致性将加速三维组织学研究及基于体积的病理诊断的开展。

ACT-组织透明化
影响组织透明化的一个重要因素是组织固定。在本方案中，PFA固定和丙烯酰胺浸润是两个独立的步骤。在组织-水凝胶聚合步骤之后，游离的A4P0溶液不会发生聚合，尽管已浸润组织的水凝胶会与内源性大分子交联。因此，在组织外部不应形成凝胶（图2A）。与CLARITY方案相比，ACT方案导致蛋白质与丙烯酰胺之间的交联程度较低。因此，组织-水凝胶样品具有更高的孔隙率。这一特性有助于脂质的快速提取以及大分子的扩散。厚度为1至2毫米的小鼠脑组织切片在1至2小时内即可实现充分透明化（图2B），而完整的小鼠脑组织通过电泳组织清除（ETC）处理5至6小时即可完成透明化（图2C）。水凝胶介导的组织透明化在ETC步骤后会引起组织膨胀，但在折射率匹配溶液中，组织可恢复至原始大小。ACT方案形成的组织-水凝胶样品具有高度多孔结构，因此小分子化合物和大分子能够高效渗透并易于扩散（图3）。将1毫米厚的脑切片与酪氨酸羟化酶（TH）和IV型胶原抗体共同孵育2小时后，再与二抗孵育2小时，即可在500 µm深度处有效标记多巴胺能神经元（图3）。
PRESTO-组织免疫标记
致密器官通常含有高浓度的细胞外基质（ECM）纤维，这会影响抗体向组织内部的渗透。因此，在孵育12小时后，抗体在肾组织等致密组织中的渗透深度仅为20–30 µm。为了克服这一限制，我们设计了能够将试剂递送至深层组织的活性大分子渗透方法，即PRESTO（压力相关高效稳定的大分子器官递送技术）（图4）。与对经ACT处理的肾组织进行静态孵育相比，使用台式离心机施加离心力（600 × g）（离心式PRESTO，c-PRESTO）显著提高了抗体向深层组织的递送效率（图5）。当我们将c-PRESTO方法应用于致密组织时，仅需3小时的孵育即可标记深度达250–300 µm的结构。为了在不造成显著组织损伤的前提下改善组织形变，我们还设计了一种利用注射泵产生对流流动的装置（注射泵式PRESTO，s-PRESTO）。该方法与被动扩散相比，同样显著提升了抗体的渗透效果（图5）。
<img alt="用于色谱中精确流体控制的注射泵系统；包含设置和操作显示。" src="/files/ftp_upload/54904/54904fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 
图 1. s-PRESTO 装置的准备。A. 一个注射器（30 mL）和一个三通旋塞阀。B. 三通旋塞阀连接并粘接到注射器上。C. 注射器中装有样品和抗体溶液，并将注射器放置在注射泵上。D. 注射泵及工作条件设置。E. 泵将含有标记试剂的溶液注入样本中。当达到指定体积后，泵送方向改变，并在指定时间后将溶液回抽。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54904/54904fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="聚合过程；光学透明化过程中的试管和样品；实验进程示意图。" src="/files/ftp_upload/54904/54904fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 
图 2. 小鼠脑组织的 ACT 透明化。A. 聚合后，未结合组织的 A4P0 溶液未发生聚合；而渗入组织的水凝胶则通过与内源性大分子交联形成凝胶。 B. 1 至 2 mm 厚的脑切片透明化处理 1 - 2 小时，并记录在折射率（RI）匹配溶液中膨胀程度及尺寸恢复情况。 C. 整个小鼠脑组织厚度约为 0.8 cm，经过 5 - 6 小时电泳组织透明化（ETC）即可完全透明化。ETC 处理 3 小时后，仍有大量组织未被透明化；然而，至 6 小时时，整个脑组织均已实现透明化。ACT 处理后脑组织在 ETC 缓冲液中呈白色或不透明状，通过调节折射率（RI），组织变为透明。 <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54904/54904fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="小鼠脑图示；胶原蛋白IV（红色），酪氨酸羟化酶（绿色）；显微镜分析。" src="/files/ftp_upload/54904/54904fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 
图3. 使用ACT透明化小鼠脑组织进行免疫标记。 经ACT处理的1毫米小鼠脑切片图像，显示小鼠脑皮层用胶原蛋白IV抗体染色，中脑部分用酪氨酸羟化酶（TH）抗体染色。比例尺：100 µm。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54904/54904fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="PRESTO 扩散比较示意图；c-PRESTO 为离心式，s-PRESTO 为对流式；抗体流动方向。" src="/files/ftp_upload/54904/54904fig4.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 4"> 
图 4. PRESTO 免疫标记方法。 抗体无法通过扩散作用穿透致密组织。PRESTO 免疫标记方法旨在主动灌注大分子并将其试剂递送至致密组织内部。利用标准台式离心机施加离心力（离心式 PRESTO，c-PRESTO）可显著促进抗体的递送；而采用注射泵施加对流流动（注射式 PRESTO，s-PRESTO）则进一步改善了抗体的渗透效果。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54904/54904fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="肾脏和肝脏显微镜比较；自由扩散与PRESTO方法；组织成像结果。" src="/files/ftp_upload/54904/54904fig5.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图5"> 
图5. ACT透明化致密组织的PRESTO免疫标记。 在c-PRESTO中，使用标准台式离心机以600 × g离心3小时，以加速一抗和二抗的渗透。在s-PRESTO中，使用注射泵递送抗体。小鼠器官（如肾脏和肝脏）用IV型胶原进行标记。与传统方法相比，c-PRESTO或s-PRESTO处理3小时显著增强了标记深度。在肾脏和肝脏中，PRESTO样本（右）的Z轴深度达到300–350 µm或更深，而对照样本（左）的标记深度仅为40–50 µm。三维重建图像通过共聚焦显微镜获得。比例尺：100 µm。 <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54904/54904fig5large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

ACT-PRESTO（活性透明技术——基于压力的高效稳定大分子递送至器官）能够实现快速、高效且低成本的组织透明化，并通过被动扩散或压力辅助递送方式，促进抗体快速渗透入透明化组织。利用该方法，可对多种组织进行透明化处理，使用多种抗体进行免疫标记，并实现整体体积成像。

ACT-PRESTO：用于大体积成像的生物组织透明化与免疫标记方法

在细胞水平上对器官或整个机体的精细结构进行鉴定与探索，是……的基本挑战

本实验的总体目标是获得透明化且完整的组织，并利用免疫标记方法可视化其三维分子信息。该方法有助于回答神经科学和发育生物学领域中的关键问题，例如神经元连接、分子分类以及发育过程中的结构变化。该技术的主要优势在于，无需切片即可对大型样本进行亚细胞水平的清晰分析。开始此操作时，将固定的器官在4°C下于A4P0水凝胶单体溶液中孵育12至24小时，并轻轻振荡。随后，向一个10毫升的圆底试管中加入5毫升水凝胶单体溶液。然后将小鼠脑组织样本转移至其中，并用Parafilm封住试管口。接下来，将氮气通入含有水凝胶浸润脑组织样本的液体中，持续吹泡一分钟。迅速并紧密地封闭装有样本的管子。将该管子转移至水浴中孵育两小时。随后，检查水凝胶的黏度，然后用 0.1 X PBS 短暂清洗聚合后的样品，以去除多余的水凝胶。在此步骤中，将聚合后的样品转移至组织容器中，并将组织容器放入 ETC 室内。接下来，使用蠕动泵将ETC缓冲液注入ETC室中。设置ETC反应条件并启动装置。一至两毫米厚的脑片可在两小时内完成透明化处理。整个大脑可在五到六小时内充分透明化。随后，将样品转移至含有45毫升0.1倍浓度PBS的50毫升锥形管中。用0.1倍浓度PBS多次清洗样品，直至短暂振荡试管时不再观察到气泡，以确认十二烷基硫酸钠（SDS）已完全去除。进行c-PRESTO时，取少量样品转移至1.5毫升离心管中。加入500微升抗体稀释液，其中IV型胶原抗体的稀释比例为1:500，然后在600 × g条件下离心2小时。随后，用0.1 × PBS通过600 × g离心30分钟洗涤染色后的样品。然后，加入500微升抗体稀释液，稀释倍数为1:500，用于Cy3标记的抗兔二抗，并以600 × g离心两小时。随后，用0.1 × PBS通过600 × g离心30分钟洗涤染色样本。为了对较大组织进行s-PRESTO操作，将样本转移至处于阀门关闭位置的三通阀连接注射器中。加入5至7毫升抗体稀释液，按1:500的比例稀释IV型胶原抗体。随后，打开阀门，将抗体溶液加入样品中。接下来，在保持阀门打开的状态下，将注射器活塞设置至17毫升位置，以留出足够的空间用于输注回抽操作。然后，在完成注射器设置后关闭三通阀。将装有样品的注射器放置在注射泵上。将注射泵的条件设置为连续循环模式，输注抽取速率为每分钟十毫升，暂停时间为四分钟。随后，在室温下使用注射泵运行三至24小时。之后，打开三通阀，用0.1倍浓度的PBS溶液替换原有溶液。使用注射泵，每次用0.1倍浓度的PBS溶液对染色样本清洗一小时，共清洗两次。然后，用含有Cy3标记的山羊抗兔二抗的抗体稀释液替换PBS，并运行注射泵3至24小时。随后，打开三通阀，用0.1 X PBS替换溶液。成像前，将染色样本置于适量的立方体封片液中，在室温下轻轻振荡孵育1小时。一小时后，将溶液更换为新鲜的立方体封片溶液，并继续孵育一小时。由于抗体无法通过扩散作用穿透致密组织，PRESTO 免疫标记方法被设计用于主动灌注大分子并递送试剂进入致密组织。使用标准台式离心机施加离心力可显著促进抗体的递送。使用注射泵施加对流流动也改善了抗体的渗透。对于s-PRESTO，采用注射泵输送抗体。小鼠器官（如肾脏和肝脏）用IV型胶原进行标记。与传统方法相比，c或s-PRESTO技术经过三小时处理即可显著增强标记深度。在肾脏和肝脏中，PRESTO样本的z轴标记深度可达300至350微米甚至更深，而对照样本的标记深度仅为40至50微米。一旦掌握，若操作得当，这些技术可在一天内完成组织的清晰处理。在进行该操作时，重要的是要明确记录组织固定、水凝胶单体乳液处理以及电泳组织的时间。在完成该操作后，还可进行免疫标记等其他方法，以回答更多科学问题，例如细胞动态分析以及跨多个器官的神经元网络鉴定。该技术问世后，为医学领域研究人员探索疾病诊断开辟了新的途径。观看本视频后，您应能够充分理解如何进行水凝胶包埋和组织聚合。请务必注意，操作水凝胶单体溶液可能具有极高危险性，在执行该实验步骤时应始终采取必要的防护措施。

act-presto-biological-tissue-clearing-immunolabeling-methods-for

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

ACT-PRESTO:生物组织清算和体积成像方法免疫标记

本文介绍一种快速、简便的方法，用于在半厚脑切片中对荧光标记的细胞进行成像。通过固定、切片并进行光学透明化处理脑组织，我们描述了如何利用标准的落射荧光或共聚焦成像技术，在完整的神经组织中观察单个细胞及神经元网络。...

一种用于半厚脑切片高分辨率荧光成像的快速方法

为了获得大组织内荧光标记细胞的高分辨率图像，理想情况下应无需切片即可对生物样本进行成像。3DISCO...

通过3DISCO技术在细胞水平上对完整生物系统进行成像

离体全器官成像是一种快速确定组织内或不同处理组之间荧光标记化合物相对浓度的方法。相比之下，定量荧光组织学虽然更为耗时，但能够对标记分子的组织绝对含量进行定量分析。...

使用 离体 全器官成像与定量组织组织学分析用于确定荧光标记分子的生物分布

本文介绍了一种光片显微镜方法，用于在无菌性暴发性心肌炎小鼠模型中可视化心脏 CD45+ 白细胞浸润，该模型通过向 CD11c.DTR...

通过光片显微镜对暴发性心肌炎小鼠模型中白细胞浸润的定量可视化

本研究介绍了一种可逆组织透明化、免疫染色、三维成像及分析人胎盘绒毛样本中血管网络的实验方案，样本体积约为 1 - 2...

三维重建与分析免疫标记并透明化处理的人类胎盘小叶血管网络

本研究的重点是展示全组织免疫染色与可视化技术作为一种理想的三维成像方法，用于观察脂肪组织的结构及其细胞组分。...

利用整体染色法观察三维白色脂肪组织结构

抗体标记、光学透明化与先进光学显微镜技术的结合，可实现对完整结构或器官的三维分析。本文介绍一种简便的方法，将厚肾组织切片的免疫标记、肉桂酸乙酯光学透明化处理以及共聚焦成像相结合，从而实现对肾脏三维结构的可视化观察与定量分析。...

免疫标记肾组织的光学透明化与成像

我们介绍一种对冷冻组织进行多光谱成像的快速染色方法。...

一种用于冷冻组织切片多光谱荧光成像的快速方法

本方案提供了一种结合（的逐步操作流程，用于对数十个死后人类脑切片进行快速且同步的光学透明化、多轮标记及三维体积重建SWITCH - H2O2 - 抗原 R2,2'-硫代二乙醇的提取TDE])...

大规模人脑成像中用于光片荧光显微镜的光学透明化与标记技术

本方案介绍了一种利用光片荧光显微镜进行定量整体三维血管成像的快速方法。该方法的有效性通过鸡胚模型的咽弓动脉系统加以验证，并对血流动力学力进行了量化。 通过...

小型动物血管系统的快速全组织高分辨率成像用于定量研究

了解ACT-PRESTO组织透明化与免疫标记技术，用于神经科学和发育生物学研究。该方法利用离心力和注射泵输送抗体，可在小鼠肾脏和肝脏组织中实现300-350微米的标记深度，无需切片即可进行亚细胞水平的三维分子成像分析。

ACT-PRESTO：用于大体积成像的生物组织透明化与免疫标记方法

探索更多视频