2017年3月8日
在此实验中,从一只麻醉的猪体内取出股四头肌组织样本,并通过差速离心法分离线粒体。随后,采用高分辨率呼吸测定法测定线粒体呼吸链复合物I、II和IV的呼吸速率。
本实验的总体目标是通过差速离心法分离骨骼肌线粒体,并测定线粒体呼吸链复合物 I、II 和 IV 的呼吸速率。该方法有助于解答线粒体生物能量学领域中的关键问题,例如与线粒体功能障碍相关的疾病和综合征,包括多种神经系统疾病、脓毒症以及衰老相关疾病。该技术的主要优势在于,所分离的线粒体样品中几乎不含大多数细胞学干扰因子,从而避免对线粒体功能分析造成干扰。本次实验操作将由本实验室的技术员 Sandra Nansoz 演示。
开始此操作时,按照文本方案获取装有骨骼肌样本的烧杯。将烧杯置于冰桶上。使用精细剪刀将肌肉剪切成大小为一至二毫米的碎片。
接下来,用20毫升冰浴的分离缓冲液将切碎的组织清洗两次,每次清洗使用20毫升。将清洗后的组织按每克组织加入10毫升分离缓冲液进行重悬,然后加入5毫克蛋白酶G组织。随后将烧杯置于冰浴中,并放入磁力搅拌器,搅拌10分钟。
此后,每克组织加入额外的10毫升分离缓冲液,该缓冲液中添加有0.2%去脂BSA,用于稀释悬液。接着,将烧杯中的全部分离缓冲液倾倒弃去。用含有0.2% BSA的预冷冰冻分离缓冲液洗涤组织两次,每次使用20毫升。
然后,每克组织加入10毫升添加了BSA的分离缓冲液重悬组织。使用带有松配合研杵的半自动玻璃匀浆器匀浆组织。接着,将匀浆液转移至离心管中,在4°C条件下以10,000 × g离心10分钟。
使用血清移液管弃去上清液。每克组织加入10毫升冰冻的含BSA的分离培养基重悬沉淀。4°C下以350 × g离心10分钟。
此后,使用刻度移液管保留上清液,弃去沉淀。将上清液通过两层纱布过滤至置于冰上的烧杯中。将过滤后的悬液转移至离心管中,在4°C条件下以7,000 × g离心10分钟。
然后弃去上清液。每克组织用5毫升添加了BSA的分离缓冲液重悬粗线粒体沉淀。将此悬浮液在4°C下以7,000 × g离心10分钟。
接下来,弃去上清液,并将沉淀重悬于 20 毫升洗涤缓冲液中。在 4 °C 条件下,以 7,000 ×g 离心 10 分钟。重复此重悬和离心步骤一次。
此后,弃去上清液,并将沉淀重悬于一毫升洗涤缓冲液中。采用任何标准方法测定蛋白质浓度。然后将浓缩的线粒体悬液置于冰上,直至准备进行呼吸测定实验。
首先,用呼吸缓冲液重悬线粒体浓缩物,使线粒体蛋白的终浓度为 0.4 毫克/毫升。接着,吸除已与空气平衡的氧电极室中的呼吸介质。加入 2.1 毫升分离的线粒体悬液。
插入塞子封闭氧电极室。随后,在37摄氏度下以700转/分钟持续搅拌线粒体悬液。记录基础状态下的细胞呼吸三到五分钟,直至获得稳定的氧通量信号。
为启动依赖复合体 I 的呼吸作用,通过密封塞上的钛注射口,向已加入分离线粒体悬液的氧电极室中注入 12.5 微升 0.8 摩尔的苹果酸。随后,注入 10 微升 2 摩尔的谷氨酸。记录细胞呼吸 3 至 5 分钟,直至获得稳定的氧通量信号。
随后,通过进样口向检测室中注入 10 微升 0.05 摩尔的 ADP。记录细胞呼吸,直至氧通量信号先升高,后下降并趋于稳定。对于复合体 II 依赖性呼吸,向已加入分离线粒体悬液的氧电极检测室中注入 2 微升 0.2 毫摩尔的鱼藤酮。
记录细胞呼吸,直至获得稳定的氧通量信号。然后,加入20微升1摩尔的琥珀酸。继续记录细胞呼吸,直至再次获得稳定的氧通量信号。
此后,通过进样口向检测室中注入10微升0.05摩尔的ADP。记录细胞呼吸,直至氧通量信号先升高,后下降并趋于稳定。对于复合体IV依赖性呼吸,向含有分离线粒体悬液的氧电极检测室中注入2.5微升0.8毫摩尔的抗坏血酸。
接下来,立即加入 2.5 µL 的 0.2 M TMPD 和 10 µL 的 0.05 M ADP。记录细胞呼吸,直至获得稳定的氧气通量信号。然后,加入 10 µL 的 1 M 叠氮化钠。
记录细胞呼吸,直至氧通量信号下降,然后趋于稳定。本研究中,从骨骼肌中分离完整的线粒体,随后通过高分辨率呼吸测定法测量复合物I依赖性呼吸速率。
可以看出,加入ADP后,线粒体呼吸速率立即升高。在ADP耗尽后,呼吸速率下降至与加入ADP前相似的水平。这表明被称为呼吸控制比(RCR)的态3与态4之比值较高,说明线粒体在分离过程中保持了良好的完整性。
随后通过鱼藤酮抑制复合物I的呼吸,并加入复合物II底物琥珀酸,观察依赖复合物II的呼吸速率。接着加入ADP,呼吸速率立即上升。当ADP耗尽后,呼吸速率下降至接近ADP添加前的水平,表明呼吸控制比(RCR)较高,说明线粒体在分离过程中保持了良好的完整性。
通过添加抗坏血酸、TMPD 和 ADP 来观察依赖复合体 IV 的呼吸速率。随后加入叠氮化钠以抑制复合体 IV。加入叠氮化钠前后氧气消耗量的差异被解释为真实的复合体 IV 呼吸速率。在状态 3 中观察到较高的依赖复合体 IV 的呼吸速率,表明线粒体在分离过程中保持了良好的完整性。
一旦熟练掌握,若操作得当,该技术可在一个半小时内完成。在进行该实验时,重要的是需记住在组织匀浆前预先对氧气传感器进行校准。在完成该步骤后,还可进一步采用其他方法,如测定细胞内ADP含量、线粒体膜电位、ATP合酶酶活性及底物水平,以回答更多相关问题,例如呼吸速率的变化是否由线粒体底物缺乏、膜电位异常或ATP合酶酶活性降低所致。
观看本视频后,您应能够充分理解如何通过差速离心法从骨骼肌中分离线粒体,以及如何利用高分辨率呼吸测定法测量线粒体复合物 I、II 和 IV 的呼吸速率。该技术发展后,为线粒体能量代谢领域的研究人员探索遗传性线粒体疾病、肌病、缺血-再灌注损伤等领域的线粒体能量功能提供了重要途径。请务必注意,使用抗霉素A、鱼藤酮、叠氮化钠和FCCP可能具有极高危险性。
进行该操作时,应始终采取佩戴手套和实验服等预防措施。
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本文介绍了一种利用差速离心法从猪股四头肌中分离骨骼肌线粒体的方法。随后采用高分辨率呼吸测定法测定线粒体呼吸链复合物I、II和IV的呼吸速率。
从骨骼肌中分离完整的线粒体可实现对呼吸链功能的精确定量评估,有助于在线粒体功能障碍相关治疗领域的靶点验证。高分辨率呼吸测定技术可提供定量且可重复的数据,降低在神经系统疾病、脓毒症及衰老相关疾病等临床前模型中机制性假设的风险。该实验流程通过消除可能掩盖化合物对生物能量通路作用的细胞学干扰因素,提高了先导化合物筛选的预测可靠性。
该方法适用于从早期靶点假设验证到先导化合物优化的整个发现过程,其中线粒体呼吸测定可基于生物能量学风险为决策提供依据,以确定是否继续推进。