2017年7月18日
我们描述了通过将肿瘤细胞或类器官注射到小鼠盲肠中建立原位结直肠肿瘤模型,并从此模型中后续分离循环肿瘤细胞(CTCs)的方法。
该显微外科技术的总体目标是将结直肠肿瘤细胞注射到盲肠壁内,以在小鼠体内诱导出可重复且具有转移性的结直肠肿瘤。该方法可解答循环肿瘤细胞生物学领域的关键问题,其主要优势在于所形成的肿瘤高度可重复且均一,从而能够可靠地预测肿瘤分期和循环肿瘤细胞情况。首先使用无创镊子小心地将一只6至8周龄免疫缺陷小鼠的盲肠拉出体外。
将盲肠的盲端置于腹部,使盲肠袋朝向头侧。进行盲肠内注射时,将配备30号针头的标准1毫升注射器连接到安装于显微操作仪上的微量注射泵,并装入肿瘤细胞。接着,用无创镊子小心夹住盲肠尖端,用另一把镊子蘸取温热的生理盐水,轻轻向下抚平盲肠表面。
现在将动物移至双目手术显微镜下,使套管针与盲肠平行并位于其上方,用两把无创镊子小心地拉伸盲肠外露末端两端的组织。缓慢将盲肠拉过套管针,注意不要穿透肠壁全层或浆膜层(除初始穿刺点外),并将套管针置于血管上方、肠壁内层薄而半透明的膜下方。当套管针就位后,使用脚踏开关在20秒内注入20 µL细胞悬液。
位于浆膜下透明的浆膜层与肌层之间的血管上方。当所有细胞注射完毕后,小心拔出套管,并在盲肠下方放置一块干燥的棉片。为防止人为的腹膜播散,用大量蒸馏水冲洗以裂解任何外漏的细胞,并轻柔地将盲肠复位至腹腔内。
使用快速吸收的连续缝合线缝合腹壁,皮肤则使用外科伤口夹闭合。随后将小鼠置于设定为38摄氏度的加热垫上,并持续监测直至完全恢复卧姿。为分离循环肿瘤细胞,在适当的实验终点,向每支15毫升锥形管中加入5毫升密度梯度介质,并小心地将从荷瘤动物采集的全血样本转移至密度梯度层上。
通过离心分离细胞,并小心收集含有单个核细胞的界面层。用移液器将单个核细胞转移至新的15毫升离心管中,进行第二次离心。随后用PBS洗涤离心管。
第二次洗涤后,将沉淀重悬于200 µL含EDTA的PBS中,并向每个样品中加入4 µL抗amp cAMP抗体,在冰上避光孵育20分钟。接着,使用疏水屏障笔在每个样品对应的无菌6 cm培养皿中画一个直径约1 cm的圆圈,向每个圆圈中加入700 µL挑取缓冲液,随后加入50 µL细胞悬液。用显微镜检查细胞密度,并让样品静置约5分钟。
然后对细胞液滴进行amp camp阳性的筛选,并使用显微操作仪将感兴趣的细胞转移至15 µL适当缓冲液中,用于后续预定的下游分析。在此模型中使用结直肠细胞,可在肿瘤细胞注射后35天内稳定地获得更多的小鼠成瘤,原发肿瘤大小约为10毫米,并几乎必然出现肝转移、肺转移及循环肿瘤细胞。此外,循环肿瘤细胞可被轻松分离,用于下游分析。
一旦掌握并正确操作,该技术可在10分钟内完成,有助于形成均一且具有转移性的肿瘤,可用于治疗学和分子学研究。该模型的局限性包括其对细胞裂解的依赖性,而细胞裂解本身存在局限性,以及小鼠的免疫缺陷,这些问题均可通过使用突变型结直肠癌细胞加以克服。由于该模型操作简便,可能成为目前可用的结直肠癌模型中有价值的补充。
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本文介绍了一种通过将肿瘤细胞注射到小鼠盲肠以建立原位结直肠肿瘤的显微外科技术。该方法可用于分离循环肿瘤细胞(CTCs),并为研究转移性结直肠癌提供了一种可重复的模型。
建立可重复的原位肿瘤模型对于降低结直肠癌药物研发中靶点验证的风险、提高疗效预测的可信度至关重要。该显微外科技术可实现循环肿瘤细胞(CTCs)的可靠分离,支持对转移机制及治疗反应的机制性研究。该模型通过提供一种与疾病高度相关的体系,用于体内评估肿瘤生物学特性及治疗效果,弥补了关键的转化医学空白。
该方法可整合到从早期靶点验证、先导化合物鉴定到临床前药效测试的整个发现流程中,尤其适用于以转移为重点的研究项目。