Name: 用于评估一般运动、肌肉力量和小鼠协调性的行为测试电池 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 54 s
Description: 学习使用旷场实验、网格测试和转棒测试评估小鼠的运动能力、肌肉力量与协调性。该行为测试组合为临床前试验中的治疗效果评估提供全面的运动功能分析。

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我们感谢新希望研究基金会&#160;对我们研究工作的持续支持和资助。同时，我们感谢IITC为本工作提供的部分资金支持。

本文所述所有实验方案均依照女王大学动物护理委员会的规定进行，并已获得该委员会的批准。行为学测试的频率可以为每周一次、每月一次，或两者结合使用。即， 每周一次（在预期差异最大时），其余时间每月一次。
注意：小鼠行为学研究在很大程度上依赖于性别、年龄和品系，因此必须采集适当的时间点，并在各实验组间保持一致。环境因素（例如， 气味、噪音、温度、湿度、光照 等等。) 对小鼠的行为和焦虑水平有显著影响。应尽可能减少这些环境因素。
1. 开放旷场实验
注意：在进行行为学测试之前，应让动物在测试房间内适应环境 10 - 15 分钟。进行行为学测试时，须遵守适当的个人防护装备要求以及所有当地机构的相关操作规范。
注意：测试前无需培训。
<ol>
	<li>确保计算机和OFT程序已开启、正常运行，并正确连接到摄像头或敞箱装置。点击smartware程序、敞箱图标和&#34;OK&#34;。在摄像头选项中选择&#34;digital analog converter&#34;作为信号源。点击&#34;detection&#34;，确保整个敞箱区域均被可视化，且尺寸设置为30 cm × 30 cm。 
	注意：设备布局可能因空间限制而有所不同，但应确保计算机与敞箱装置位于光线充足的同一房间内并彼此靠近，以保证视频采集质量。</li>
	<li>点击&#34;calibration&#34;、&#34;snapshot&#34;，然后点击&#34;OK&#34;，以确认小鼠在敞箱范围内可被系统正确检测。点击&#34;time&#34;预设测试时间；本实验中设定为5分钟。</li>
	<li>点击&#34;subjects&#34;图标输入受试动物信息。点击&#34;scheduler&#34;，选中所有待测动物，然后点击双绿色箭头和&#34;phase one, session one&#34;；此操作将按顺序导入所有受试动物，以便开始数据采集。</li>
	<li>将一只小鼠放置于敞箱中央，然后点击&#34;start&#34;图标，启动程序开始记录。每次仅测试一只小鼠。</li>
	<li>当5分钟测试时间结束后，程序将自动进入下一个受试动物。此时，取出已完成测试的小鼠，并将下一只受试动物放入敞箱中，然后点击&#34;start&#34;。</li>
	<li>清洁设备。对剩余的受试动物重复步骤1.3至1.4。</li>
	<li>在所有受试动物完成测试后，若需分析数据，请点击屏幕右上角的&#34;analyze&#34;图标。再次点击&#34;analyze&#34;，然后选择&#34;summary report&#34;。也可选择将数据导出至U盘。</li>
</ol>
2. 网格测试
注意：MT上的网面面积和网孔大小可能影响实验结果。在MT测试中，若小鼠在前两个采集时间点的最初10秒内掉落，则应立即将其放回网面上进行第二次尝试。本实验所用网面为金属丝网，网孔直径约为1.5 mm。
注意：建议在每天的同一时间进行这些测试，因为生理和生化参数在一天中会有所波动。体重可能影响本测试中的表现，因此必须予以考虑。
<ol>
	<li>将小鼠置于网格中央，将网格翻转，使其倒置在透明容器上方至少20 cm处。翻转后立即启动计时器。</li>
	<li>记录小鼠跌落前的潜伏时间。若小鼠在60秒内未跌落，则记为60秒，并停止后续试验。让小鼠休息至少5分钟。此为第一次试验结束。</li>
	<li>擦拭设备，并在5分钟的试验间歇期间，如有需要，可对第二只小鼠进行测试。如有必要，重复步骤2.1–2.2进行第二次和第三次试验（只要小鼠未获得60秒评分，应进行三次试验）。</li>
</ol>
3. 旋转棒实验
注意：旋转棒（RT）上的杆的表面和直径可能影响实验结果。在旋转棒实验中，如果小鼠在前两个采集时间点的最初10秒内掉落，应立即将其放回杆上进行第二次尝试。
注意：建议在每天的同一时间进行这些测试，因为生理和生化参数在一天中会有所波动。体重可能影响本测试中的表现，因此必须予以考虑。
<ol>
	<li>打开IITC转棒仪和计算机，确保它们已正确连接以进行数据记录。</li>
	<li>确保程序运行的是加速模式。将转棒实验的设定时长设为xxx（有效范围为000至999）；在此情况下，按300*。设定使用的通道数为xxx（有效范围为001至005）；在此情况下，按005*。设定起始转速为xxx rpm（输入3005表示5 rpm；有效范围为001至045）；在此情况下，按004*。</li>
	<li>设定最高转速为xxx rpm（输入4,030表示30 rpm；有效范围为001至045）；在此情况下，按040*。设定加速时间为xxx秒（输入5,030表示在30秒内达到最高转速；有效范围为000至999）；在此情况下，按300*。将设备模式设为小鼠模式（输入6001表示小鼠正向旋转，6002表示小鼠反向旋转）；在此情况下，按6001*。</li>
	<li>开始实验前，确保所有磁化通道保持平衡。将每只小鼠放入转棒仪的一个通道中。</li>
	<li>按下“开始”以启动程序。当小鼠掉落时，应立即将其从通道中移除，以确保它们不会&#34;绊倒&#34;其他通道的小鼠。</li>
	<li>让小鼠休息10分钟作为组间间隔。至此完成第一次试验。在组间间隔期间，清洁设备并开始下一组小鼠的试验。</li>
	<li>根据需要重复步骤4至6。若某只小鼠在完整的5分钟试验期间始终停留在转棒上，则该小鼠无需再进行后续试验。</li>
</ol>

<ol><li>Osmon, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systemic+Gene+Transfer+of+a+Hexosaminidase+Variant+Using+an+scAAV9.47+Vector+Corrects+GM2+Gangliosidosis+in+Sandhoff+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Systemic Gene Transfer of a Hexosaminidase Variant Using an scAAV9.47 Vector Corrects GM2 Gangliosidosis in Sandhoff Mice.</a> Human Gene Therapy. 27 (7), 497-508 (2016).</li>
<li>Brooks, S. P., Dunnett, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tests+to+assess+motor+phenotype+in+mice%3A+a+user%27s+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews%2C+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Tests to assess motor phenotype in mice: a user's guide.</a> Nature Reviews, Neuroscience. 10, 519-529 (2009).</li>
<li>Ma, M., Basso, D. M., Walters, P., Stokes, B. T., Moser, P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11358439">Behavioural and histological outcomes following graded spinal cord contusion injury in the C57Bl/6 mouse.</a> Exp. Neurol. 169, 239-254 (2001).</li>
<li>Menalled, L. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+motor+dysfunction+and+striosomal+distribution+of+huntingtin+microaggregates+in+Huntington%27s+disease+knock-in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.Neurosci%22%5BJournal%5D)">Early motor dysfunction and striosomal distribution of huntingtin microaggregates in Huntington's disease knock-in mice.</a> J.Neurosci. 22, 8266-8276 (2002).</li>
<li>Grusser, C., Grusser-Cornehls, U. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0166432898000424">Improvement in motor performance of Weaver mutant mice following lesion of the cerebellum.</a> Behav. Brain Res. 97, 189-194 (1998).</li>
<li>De Leonibus, E., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17619858">Spatial deficits in a mouse model of Parkinson's disease.</a> Psychopharmacology (Berl). 194, 517-525 (2007).</li>
<li>Morris, M., Koyama, A., Masliah, E., Mucke, L. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22206005">Tau Reduction Does Not Prevent Motor Deficits in Two Mouse Models of Parkinson's Disease.</a> PLoS ONE. 6 (12), 1-7 (2011).</li>
<li>Abo-ouf, A., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23727835">Deletion of tumour necrosis factor-α ameliorates neurodegeneration in Sandhoff disease mice.</a> Human Molecular Genetics. , 1-16 (2013).</li>
<li>Dumont, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+Phenotyping+of+Mouse+Models+of+Neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Neurodegeneration+%3A+Methods+and+Protocols%2C+Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Behavioral Phenotyping of Mouse Models of Neurodegeneration.</a> Neurodegeneration : Methods and Protocols, Methods in Molecular Biology. 793, 229-237 (2011).</li>
<li>Cabe, P. A., Tilson, H. A., Mitchell, C. L., Dennis, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+recording+grip+strength+device%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A simple recording grip strength device.</a> Pharmacol. Biochem. 8, 101-102 (1978).</li>
<li>Barnēoud, P., Loliver, J., Sanger, D., Moser, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+motor+assessment+in+FALS+mice%3A+a+longitudinal+study%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Quantitative motor assessment in FALS mice: a longitudinal study.</a> Neuroreport. 8, 2861-2865 (1997).</li>
<li>Lui, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+of+GM2+activator+deficiency+manifests+cerebellar+pathology+and+motor+impairment%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Mouse model of GM2 activator deficiency manifests cerebellar pathology and motor impairment.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 94, 8133-8143 (1997).</li>
<li>Sango, K., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7550345">Mouse models of Tay-Sachs and Sandhoff diseases differ in neurologic phenotype and ganglioside metabolism.</a> Nature Genetics. 11 (2), 170-176 (1995).</li>
<li>Jones, B. J., Roberts, D. J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/4232694">A rotarod suitable for quantitative measurements of motor inco-ordination in naïve mice.</a> Nauyn-Schmiedebergs Arch. Pharmacol. 259 (2), 211(1968).</li>
<li>Deacon, R. M. J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3725666/">Measuring the Strength of Mice.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (76), (2013).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

所有实验均需对表面进行清洁和消毒，以尽量减少对小鼠的感染和干扰因素。&#160;此外，在使用开放旷场实验（OFT）、右转实验（RR）和新物体识别实验（MT）时，须确保小鼠在各次试验之间以及不同行为测试之间有充足的休息时间。
在开放旷场实验（OFT）中，必须将每只小鼠放置在旷场中央，并在将小鼠释放至中心位置的同时启动程序。启动程序时，应确保没有手部动作被传感器检测到。
对于悬尾实验（MT），在小鼠悬挂的网面区域与容器侧壁之间设置屏障非常重要。有研究指出，当小鼠能够触及容器侧壁时，它们会逐渐松开前爪，随后松开后爪，从而跳下。在网面中心与容器壁之间粘贴屏障可显著减少这种行为，从而更准确地测量肌肉力量。
单独来看，这些测试分别能很好地评估一般运动能力（开放旷场实验）、肌肉力量（网格实验）和协调性（转棒实验）2,7,<sup class="xr...

行为学测试的目的是测量表型特征，无论是在研究影响中枢神经系统的新小鼠疾病模型，还是在新治疗方法的试验中均如此。可选择的行为学测试种类繁多。通常采用多种行为学测试组合的理由是全面评估临床前治疗效果。本文所采用的行为学测试组合包括开放场地测试（OFT）、网格测试（MT）和转棒测试（RR）。
开放场实验（OFT）被用作评估一般运动活性的指标1,2,3,4,5,6,7。该评估允许小鼠在开放环境中自由活动，测量指标为行为实验过程中小鼠的运动情况。利用OFT进行的定量分析包括直立行为、移动距离、运动时间（例如，行走和奔跑）以及随时间变化的活动模式（例如，跳跃和运动减缓/过度活跃行为），因此OFT是一种对啮齿类动物行为进行有效且全面的分析方法。
悬尾试验（MT）用于评估小鼠的肌力1,2,8,9,10,11。通过让小鼠用四肢悬挂在金属丝网格上，可无创地测量其在对抗重力作用时维持肢体张力的能力。该评估方法是将小鼠置于倒置的网格上，记录其坠落前的潜伏时间。该试验通过测量小鼠在坠落前能够抓住倒置网格的时间长短，来评估其肌肉力量。
转棒实验（RR）通过加速程序评估小鼠的运动协调能力1,2,7,8,9,12,13。转棒装置由一根在空中旋转的圆柱形滚轴组成，起始转速为 4 rpm。小鼠可学习此项运动协调技能，并在转速缓慢、逐步增加至 40 rpm 的过程中接受挑战。传统上，恒定速度程序用于评估肌肉力量，而转棒实验中的加速程序则用于评估协调性、耐力和肌肉力量1,2,7,14。
这三种行为学实验的优点在于，它们在整个啮齿类动物行为测试领域被广泛接受2,7,8,9，当不仅将它们视为各个独立实验结果的简单加总，而是综合起来使用时，可用于在研究不同实验处理结果时对表型行为进行整体评估。旷场实验（OFT）是目前仅有的可用于评估总体运动活性的实验方法之一2。旋转棒实验（RR）也是评估协调能力的少数方法之一2，除此之外的方法包括步态分析软件，但后者不在本文讨论范围内。评估小鼠肌肉力量的方法有数种，但握力测试（MT）或悬丝实验在文献中被广泛采用，并被公认为测试肌肉力量的可靠方法2,8,9,10,11。许多其他用于测量总体运动和协调能力的技术极为耗时，且可能无法产生可靠的数据（例如，手动计时小鼠运动或手动染色足垫进行步态分析）。旷场实验和旋转棒实验的自动化系统提高了所获得数据的可靠性和有效性，同时节省了时间和精力。
例如，鉴于Sandhoff病小鼠模型存在神经退行性病变，在进行这一系列测试时，开放场测试（OFT）应作为首个测试，用于评估该小鼠模型通常从3月龄开始出现的运动异常。运动协调能力的缺陷也应从12周龄起开始显现。肌肉力量的缺陷大约在14周龄时开始出现，但在16周龄时会变得更为显著。
这些检测方法在研究导致显著运动功能障碍的疾病时非常有用，包括神经退行性疾病9，例如Sandhoff病1,8,13、帕金森病7、亨廷顿病、多发性硬化症。这些检测还可用于研究衰老过程，以及进行老年学的比较评估或健康状况测量。许多此类疾病状态下均可观察到步态异常以及运动和平衡能力的改变。然而，这些检测方法的应用价值并不仅限于以常见神经肌肉症状为特征的疾病。
请注意，目前尚未发现与动机或所述行为测试方法的新颖性相关的任何混杂因素。对于某些疾病状态和病理情况，研究人员必须在小鼠出现任何表型症状之前获取初步的行为学数据；此后应定期（每周）确认所有运动功能障碍是否均已记录。许多疾病的表型症状出现迅速，若不进行每周测试，这些症状将无法被及时发现和记录。

<table><tbody><tr><td>IITC生命科学转棒仪，配备Series 8计算软件&amp;nbsp;</td><td>IITC生命科学</td><td>755</td><td></td></tr><tr><td>方形开放旷场 45 × 45 × 40 cm（灰色）。其他地面颜色可选：白色、黑色。</td><td>哈佛仪器（PanLab）</td><td>760190</td><td></td></tr><tr><td>&amp;nbsp;开放场预设模块</td><td>Harvard Aparatus (PanLab)</td><td>760688</td><td></td></tr><tr><td>Smart V3.0 软件平台&amp;nbsp;</td><td>Harvard Aparatus (PanLab)</td><td>760681</td><td></td></tr><tr><td>视频转换器（模拟/数字）</td><td>Harvard Aparatus (PanLab)</td><td>760262</td><td></td></tr><tr><td>摄像机屋顶固定系统</td><td>哈佛仪器（PanLab）</td><td>760277</td><td></td></tr><tr><td>模拟索尼摄像机 &amp;amp; lenseNTSC</td><td>哈佛仪器（PanLab）</td><td>760505</td><td></td></tr></tbody></table>

评估小鼠一般运动、肌肉力量与协调性的行为学测试组合

Battery of Behavioral Tests Assessing General Locomotion, Muscular Strength, and Coordination in Mice

行为学测试在临床前试验中用于评估特定疾病或治疗对动物健康和福祉所产生的表型效应和结果。可采用多种行为学测试方法。我们选择了一种用于评估一般运动能力的开放旷场测试（open field test, OFT）；一种用于评估肌肉力量的网格悬挂测试（mesh test, MT）；以及一种用于评估协调性的转棒测试（rotarod test, RR）。测试可按周或按月进行。作为评估一般运动能力的方法，OFT通过客观监测小鼠在开放旷场装置中活动时的运动参数来实现。该装置通常是一个2英尺×2英尺的箱体，通过激光感应或视频记录系统记录动物的运动轨迹。将小鼠置于旷场中央，使其在测试期间自由活动。MT则通过测量小鼠从倒置的网格上跌落所需的时间（即跌落潜伏期）来评估其肌肉力量。将小鼠放置于网格表面，随后将网格倒置于透明箱体上方，记录其跌落前的持续时间。每只小鼠进行三次试验，取当日三次中最佳成绩作为评分。小鼠倒置状态的最长时间上限为60秒。每次网格测试之间给予小鼠5分钟的休息时间。最后，采用加速程序的RR测试用于评估运动协调性和耐力。在单次试验中，转棒转速在5分钟内从4 rpm匀速增加至40 rpm，小鼠在转棒上行走直至跌落。当小鼠跌落并接触磁性压力传感器时，试验自动终止。每只小鼠进行三次试验，取当日三次中最佳成绩作为评分。这些综合行为学数据可用于全面评估实验动物的活动能力、协调性、力量及运动表现。只有在三项行为学测试指标中至少有两项显示出改善时，才可判定该动物的整体运动功能有所提升。

可根据分析所需的时间点，每周或每月对实验动物进行一次行为学测试范式。有关行为学测试时间安排的示例，请参见图1。以下代表性数据来自 Osmon et al. (2016)，小鼠从12周龄开始每月接受一次系列行为学测试，直至约40周龄达到人道终点。行为学测试的时间安排在某些实验中可能至关重要，尤其是当未处理组与处理组动物的存活时间存在显著差异且需要进行比较时。
尽管这些测试并非仅用于神经退行性疾病，我们仍使用了Sandhoff小鼠（见图2）。该小鼠模型若未经治疗，在12至16周龄时会逐渐出现震颤和运动失调，并通常需在16周龄时实施安乐死1。图2D中的数据展示了转棒实验用于评估经治疗小鼠与正常杂合子小鼠行为表现的差异。两组在40周时的分离表明，治疗组小鼠的协调能力开始较正常对照组下降。在其他用...

在临床前试验中，行为学测试用于评估疾病或治疗对动物健康状况的表型效应。为了全面评估运动功能，我们分别选择了用于检测一般运动能力、肌肉力量和协调性的测试方法：开放场测试、网格测试和转棒测试。

行为学测试在临床前试验中用于评估特定疾病或治疗对表型产生的影响及结果……

本系列行为学测试的总体目标是观察小鼠的总体运动能力、肌肉力量和协调性。这些方法有助于回答有关多种临床前试验中不同治疗方案实施的关键问题，例如治疗对小鼠运动功能的益处。该技术的主要优势在于，可通过本系列行为学测试对运动的多个方面和维度进行测量和评估。为我们演示该实验步骤的是本实验室的硕士研究生 Meera。首先打开旷场实验程序，并将计算机连接至摄像头或旷场实验箱。然后启动Open Field图标中的SmartWare选择性软件。选择确定。如果适用，请从相机选项中选择数字模拟转换器源。按照说明进行适当设置，以覆盖开放场地盒的范围。接下来，通过校准软件的相应部分，确保小鼠在开放场内的活动能够被检测到。点击“时间”以预设测试小鼠的时间，在本例中设置为五分钟。通过点击并输入文件的适当名称来输入受试对象信息。例如，第一阶段，第一次实验。接着，将一只小鼠放置在开放场的中央，然后点击开始图标，以启动程序开始记录。五分钟后，观察程序自动进入下一个受试对象。此时，取出已完成测试的小鼠，将下一个受试对象放入程序的开放区域，然后点击“开始”。最后，要分析数据，请点击屏幕右上角的“分析”图标。再次点击“分析”，然后选择“汇总报告”。首先将小鼠放置在网格的中央。将网格倒置在干净容器上方至少20厘米处。倒置后立即启动计时器，记录小鼠从网格上掉落的潜伏时间。如果小鼠在 60 秒内未掉落，则记为 60 秒，并不再进行后续试验。随后，让小鼠休息至少五分钟。然后打开转棒仪和计算机。并确保它们已正确连接以进行数据记录。为运行加速程序，使用键盘上的代码将转棒仪的设定时间设为300秒，通道数设为5，起始速度和结束速度分别设为每分钟4转和40转，斜坡时间设为300秒。然后将设备设置为小鼠正向模式。开始试验前，确保所有磁化通道均保持平衡，并在每条通道中放置一只小鼠。然后按下启动按钮以运行程序。当小鼠跌落时，应立即将其从通道中移除，以确保不会干扰其他通道的小鼠。最后，让小鼠休息10分钟的试验间歇期。在此期间，开始下一组小鼠的试验。该数据展示了利用转棒仪来观察经处理的小鼠与正常的杂合子小鼠行为差异的方法。两组在40周时的差异表明，与正常对照组相比，治疗组小鼠的协调能力开始下降。在每月的行为学测试中，经治疗的小鼠在旷场实验、转棒实验和网格实验中的表现与正常的杂合子对照组相似。在12周时，经治疗动物在旷场实验中的运动时间以及网格实验中跌落潜伏期的表现优于未经治疗的动物。一旦掌握，若操作得当，完成20只小鼠的整个实验流程可在两个半小时内完成。在实施该操作过程中，需注意每次小鼠实验后均应清洁仪器，以避免不同小鼠及笼具之间的潜在污染。在完成本实验步骤后，可进一步采用其他方法，如行为学和生物化学检测，以回答有关治疗效果的其他问题，例如生物分布检测、酶活性检测、组织学检测，或记忆与学习能力测试。该技术问世后，为心理学领域以及后来的神经科学领域的研究人员探索各种治疗手段和条件对模式生物的影响开辟了道路。观看视频后，您应能够充分理解如何开展一般运动、肌肉力量和协调性方面的行为测试。请务必注意，操作小鼠可能存在风险，因此在进行该实验操作时，应始终采取佩戴适当的个人防护装备等预防措施。

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Research

科研

JoVE Journal

Behavior

行为

用于评估一般运动、肌肉力量和小鼠协调性的行为测试电池

可通过平衡木实验评估精细运动协调能力的缺陷。小鼠在平衡木上的表现通过其通过平衡木的速度以及在平衡木上打滑的次数来量化。...

使用平衡木评估小鼠的运动平衡与协调能力

本文介绍了两种成熟的运动协调任务的实验方案：加速转棒实验和水平横杆实验，以及牛津大学近期开发的另外两种测试方法：静态杆实验和平行杆实验。这些测试不仅能够检测可能具有独立研究价值的运动功能障碍，还可作为其他行为学测试中潜在的影响变量。...

测量小鼠的运动协调能力

肌肉力量减退出现在许多临床状况中，例如运动神经元病。本文所述的倒置网格试验和负重提起试验几乎完全用于测量小鼠的力量，且受协调性等因素的影响极小。...

测量小鼠的肌力

在本视频中，我们介绍了用于评估小鼠步态和运动协调能力的足迹测试方法及相关分析流程。...

通过足迹分析评估步态：一种检测小鼠运动协调能力的方法

本视频介绍了用于检测啮齿类动物一般运动能力和探索行为的开放旷场行为测试。...

开放场行为测试：一种评估一般运动能力与探索习惯的方法

神经肌肉疾病临床试验的主要结局指标通常是改善肌肉功能。因此，在小鼠模型中对潜在治疗化合物对肌肉功能的影响进行临床前评估具有重要意义。本文将介绍几种用于实现这一目的的功能性检测方法。...

评估 Mdx 小鼠模型中的功能表现

本文介绍了一套简明的小鼠新生期运动功能测试方法。利用这些测试，可在多种新生期运动障碍模型中检测出运动功能缺陷。通过采用标准化的测试方案，不同研究之间的结果可进行比较，从而实现各研究组之间更准确、更可靠的报告与交流。...

一种脑性瘫痪新生小鼠模型中的运动功能测试组合

我们描述了使用MPTP建立帕金森病小鼠模型的方法，并通过圆筒实验和开放旷场实验进行行为学评估，以测量运动功能。随后，我们以左旋多巴（L-DOPA）为例，展示如何应用该模型研究帕金森病药物。...

小鼠MPTP诱导帕金森病模型中自发运动行为评估

本研究设计了一套全面的行为测试组合，用于对小鼠与神经退行性变相关的行为变化进行重复评估，包括运动技能、情绪（如社交互动、抑郁和焦虑）以及认知功能。...

用于小鼠运动技能、情绪和认知能力重复评估的行为测试组合

本论文介绍了一组高度可重复的行为学实验，用于验证Angelman综合征小鼠模型。...

Angelman综合征小鼠模型的行为学表征

学习使用旷场实验、网格测试和转棒测试评估小鼠的运动能力、肌肉力量与协调性。该行为测试组合为临床前试验中的治疗效果评估提供全面的运动功能分析。

评估小鼠一般运动、肌肉力量与协调性的行为学测试组合

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