2017年3月21日
选择性标记的荧光的GnRH-I,-II和-III衍生物对于跟踪可靠的工具和量化它们的细胞摄取。这个手稿介绍实验来可视化,量化和比较在各种细胞系这些GnRH的缀合物的吸收效率。
该程序的总体目标是研究和预测基于 GnRH 的药物递送系统在人类癌细胞培养中的疗效。这种方法可以帮助回答靶向抗癌治疗领域的关键问题,例如不同人类癌症类型的细胞吸收 GnRH 靶向抗癌药物的效率如何。该方法的主要优点是它使用新的荧光标记的 GnRH 类似物,允许同时使用共聚焦显微镜和流式细胞术分析。
这项技术的影响延伸到抗癌治疗,因为 GnRH 受体在几种癌细胞类型上高度表达,能够选择性靶向它们。演示该程序的是我实验室的博士生 Bianka Gurbi。首先,从接种的显微载玻片的七个孔中的每一个中取出培养的培养基。
然后,将 250 微升预热的完全培养基添加到阴性对照孔中,将 250 微升预热的 GnRH 拟合种子处理培养基添加到其余六个孔中的每一个中。将玻片在 37 摄氏度、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 5 小时。孵育 5 小时后,从每个孔中吸出培养基,并用 250 μL PBS 洗涤细胞。
随后,向每个孔中加入 250 μL 固定液,并在室温下孵育玻片 10 分钟。细胞固定后,丢弃固定液并用 250 微升 PBS 洗涤细胞。向每个孔中加入 250 μL 在 PBS 中制备的 5 微摩尔荧光探针溶液,并在室温下孵育玻片 10 分钟。
去除荧光探针溶液后,用 250 μL PBS 小心洗涤细胞两次。最后,向每个孔中加入 3 到 4 滴封固剂。将载玻片在室温下避光保存,直到在显微镜下成像。
从接种的显微载玻片的五个孔中的每一个中取出培养培养基。接下来,将 250 微升预热的完全培养基添加到阴性对照孔和含有未处理细胞的第二个孔中。用含有 10 微摩尔 GnRH FITC 的预热处理培养基预处理其余三个孔中的细胞。
将玻片在 37 摄氏度、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 1 小时。然后,仅从处理过的细胞中取出培养基,并用 250 μL 预热的完全培养基洗涤细胞。接下来,去除洗涤介质。
然后,将 250 微升预热的完全培养基添加到三个孔中。将玻片在 37 摄氏度、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 1 小时。孵育后,丢弃所有五个孔中的培养基,并用 250 微升 PBS 洗涤细胞。
然后,去除 PBS,并在室温下用 250 μL 固定液固定细胞 10 分钟。接下来,丢弃固定液并用 250 微升 PBS 洗涤细胞。向每个孔中加入 250 μL 封闭溶液,并在室温下孵育玻片 1 小时。
从除阴性对照以外的每个孔中吸出封闭溶液。用 250 μL PBS 洗涤细胞后,向每个孔中加入 250 μL 一抗溶液。将玻片在室温下在黑暗处孵育 1 小时。
从五个孔中的每一个中取出溶液,并用 250 微升 PBS 洗涤细胞。然后,去除 PBS 并加入 250 μL 二抗溶液。将玻片在室温下避光孵育 1 小时。
从每个孔中吸出溶液,并用 250 微升 PBS 洗涤细胞。去除洗涤 PBS,然后在每个孔中加入 250 微升含有 5 微摩尔荧光探针的 PBS。在室温下孵育玻片 10 分钟。
从每个孔中取出荧光探针溶液,并用 250 微升 PBS 小心洗涤细胞两次。最后,向每个孔中加入 3 到 4 滴封固剂。将载玻片在室温下避光保存,直到在显微镜下成像。
在倒置共聚焦激光扫描显微镜下对细胞进行成像。打开 488 纳米和 633 纳米激光器。检查激光放大和针孔大小。
对阴性对照样品进行成像。优化观察到的细胞核信号,并调整 FITC 和 Alexa 546 的信号,使其接近于零。然后,使用相同的参数对处理后的样品进行成像。
丢弃接种培养板的所有 7 个孔中的完全培养基。然后,将 1 毫升预热的完全培养基加入阴性对照孔中,将 1 毫升预热的处理培养基加入其余 6 个孔中。将板在 37 摄氏度、5% 二氧化碳的培养箱中孵育 5 小时。
丢弃所有孔中的培养基后,用 2 毫升 PBS 小心洗涤细胞两次。去除 PBS,然后在每个孔中加入 500 微升胰蛋白酶 EDTA 溶液。在 37 摄氏度下孵育板,直到细胞分离,这大约需要 10 分钟。
使用 1 毫升完全培养基,中和每个孔中的胰蛋白酶并摇动板。然后通过轻轻移液悬浮细胞。将悬浮液转移到单独的 FACS 管中,并在 4 摄氏度下以 150 倍 G 离心样品 4 分钟。
小心地倒出上清液。然后,将 500 微升冰冷的 PBS 加入每个 FACS 管中,并轻轻重悬细胞。将试管保持在冰上,直到被 FACS 分析。
这里介绍的是咽癌细胞中 GnRH 摄取的分析。用 1 微摩尔的 GnRH 荧光复合物处理 5 小时,导致轻微但可区分的摄入,表现为位于咽癌细胞中的绿色荧光信号。复合物剂量的额外增加导致摄取增强,证明了咽癌细胞中 GnRH 摄取的剂量依赖性。
通过同时用荧光 GnRH 复合物处理和对 1 型 GnRH 受体和细胞核进行染色,分析 GnRH 受体依赖性摄取及其受体中配体在肺癌细胞中的细胞分布。结果表明,1 型 GnRH 受体与细胞膜相关,而 GnRH 蛋白在细胞中内化并保留在细胞质中。还使用 FACS 分析研究了咽癌细胞中 GnRH 的摄取。
结果表明,当施加到细胞的剂量增加到 10 微摩尔时,当用 1 微摩尔的 GnRH 偶联物处理细胞时观察到的 GnRH 摄取明显增强。一旦掌握,如果执行得当,这项技术可以在八小时内完成。在尝试此程序时,请务必记住保护处理过的样品和荧光染料免受阳光直射。
在此程序之后,可以执行其他方法,如细胞活力或细胞凋亡检测,以回答其他问题,例如 GnRH 靶向药物抑制给定类型癌症生长的效率如何。在此发展之后,这项技术为癌症治疗领域的研究人员探索基于 GnRH 的药物递送系统在粘附癌细胞中的疗效铺平了道路。看完这个视频,你应该对如何使用这些荧光标记的 GnRH 偶联物来探索癌细胞对 GnRH 靶向治疗的敏感性有一个很好的了解。
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本研究探讨了基于GnRH的药物递送系统在人类癌细胞培养物中的功效。它引入了用于追踪细胞摄取的荧光标记的GnRH类似物,为靶向抗癌疗法提供了见解。
This method enables biopharma R&D teams to quantitatively assess the cellular uptake efficiency of GnRH-targeted drug conjugates across diverse cancer models. By combining confocal microscopy and flow cytometry, it provides mechanistic de-risking for GnRH-based therapeutic candidates through direct visualization and dose-dependent quantification of target engagement. The approach supports early-stage target validation and predictive confidence in tumor-selective delivery systems prior to lead optimization.
The method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification, enabling data-driven prioritization of GnRH-conjugate candidates based on quantitative uptake and receptor correlation.