Name: 肝分型与门静脉结扎大鼠分期肝切除 (ALPPS) 手术模型的建立 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 29 s
Description: 学习在大鼠中建立ALPPS手术模型，通过门静脉结扎联合肝实质离断实现快速肝脏肥大。该方法可用于研究生理和分子层面的肝脏再生机制，并评估潜在治疗药物的效果。

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作者无致谢。

本方案中的所有实验均经瑞士苏黎世州兽医管理局批准（编号 60/2014）。此外，所有实验步骤均严格遵守瑞士医学科学学会（SAMS）发布的《动物实验指南》以及欧洲实验动物科学联合会（FELASA）的指南。
1. 动物饲养、手术室设备与器械、麻醉
<ol>
	<li>将体重为250–300 g的雄性Wistar大鼠饲养于通风良好的笼具中，维持标准无病原体环境，光照/黑暗周期为12/12小时。环境温度保持在22 ± 1 °C，动物可自由获取食物和饮水。</li>
	<li>在麻醉箱中诱导麻醉，先以5 vol%异氟烷冲洗30秒（图1A），随后将异氟烷浓度调整为3 vol%，直至动物达到深度麻醉状态。通过夹趾反射确认麻醉深度。</li>
	<li>术中给予皮下注射布托啡诺（0.01 mg/kg）以提供镇痛，术后阶段每12小时给予0.02 mg/kg，持续48小时。</li>
	<li>将动物转移至操作区域，使其在氧气（流速：600 mL/min）中自主呼吸，吸入气体含1.0–2.5 vol%异氟烷。</li>
	<li>闭合动物眼睑，并使用眼膏保护角膜。皮下注射5 mL生理盐水，腹部两侧各注射2.5 mL，随后注射0.1 mg阿托品。</li>
	<li>在显微外科室内使用手术显微镜进行手术操作。</li>
	<li>通过由乳胶膜构成的通气面罩维持动物的挥发性麻醉状态（图1B），将大鼠鼻部插入面罩中，并用胶带固定四肢（图1B）。</li>
	<li>将手术器械以无菌方式整齐摆放于侧台：浸有生理盐水和聚维酮碘的纱布块（图2A）、腹壁牵开器（图2B），以及用于牵拉腹壁和剑突的3-0缝线、剪刀、Adson镊、直头和弯头精细尖头显微镊，还有预先剪好的6-0丝线结扎线（图2C）。</li>
	<li>使用不粘连的双极显微镊切断肝实质。以3-0丝线配合SH-1针缝合腹壁和皮肤，并使用5-0 Maxon缝线（图2D）。使用双极电凝钳进行止血。</li>
</ol>
2. 手术开始
<ol>
	<li>使用小型动物电推剪，从剑突至生殖器区域，沿腹中线两侧各2 cm范围剃除动物腹部毛发，并彻底清除所有毛发。</li>
	<li>用浸有聚维酮碘的海绵对该区域进行三次消毒。</li>
	<li>使用手术刀沿腹中线切开皮肤，然后用手术剪剪开腹腔。</li>
	<li>用3-0丝线缝合线牵开左右腹壁及剑突（图3A）。</li>
	<li>使用自制的小型金属牵开器，将胃、结肠和小肠从大鼠的肝十二指肠韧带处牵开（图3B）。</li>
</ol>
3. 门静脉结扎术（PVL）
<ol>
	<li>通过向侧方牵拉胃和小肠来暴露门静脉及其分支（图3B）。</li>
	<li>使用显微镊轻轻夹起腹膜，缓慢向内侧剥离，钝性解剖门静脉。</li>
	<li>按以下顺序解剖并分离出门静脉的分支（图3C）：(1) 右后支，(2) 左外侧支与左中叶支一同处理，(3) 尾状叶支。
	<ol>
		<li>首先，以小幅度、不过于剧烈的动作剥离腹膜，避免撕裂走行于腹膜覆盖下方、直接供应肝叶的小动脉分支。</li>
		<li>当主门静脉充分暴露后，使用缓慢前推并撑开的动作将各分支游离，随后将一段1 cm长的6-0丝线穿过相应门静脉分支并结扎。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>结扎右后叶分支（图3C）。右后支的技术难点在于，供应右后叶的动脉恰好跨过右后门静脉支的表面走行。
	<ol>
		<li>使用弯头显微镊将动脉连同腹膜一起向头侧牵拉，以暴露右门静脉分支。</li>
		<li>使用预先剪好的6-0丝线结扎右后叶分支。门静脉结扎后，右后叶会明显变苍白。</li>
		<li>在环绕操作时避免强行推进，以防撕裂动脉或门静脉。若发生出血，应用无菌棉签压迫至少一分钟，然后重新评估。如出血不止，则需处死动物。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>结扎左外侧叶（LLL）和左中叶（LML）分支。这些分支共用一个主干（图3C）。左中叶分支起源于LLL实质内的门静脉。
	<ol>
		<li>使用预先剪好的6-0丝线，同时结扎通向LLL和LML的门静脉分支。</li>
		<li>注意避免损伤走行于腹膜层内的LLL和LML供血动脉。只要小心地剥离腹膜，这些动脉通常可保持完整。分支结扎后，LLL和LML会明显变苍白。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>结扎尾状叶分支（图3C）。在大鼠中，通向相对独立的尾状叶的门静脉从主门静脉发出，位置位于右叶分支起始处的远端及内侧（并非像人类或较大动物那样严格地位于下方）。
	<ol>
		<li>通过将腹膜连同胆管和动脉从主门静脉上方抬起，解剖并游离该分支。</li>
		<li>从侧方用弯头显微镊将其环绕。使用6-0丝线结扎尾状叶分支后，两个尾状叶会明显变苍白。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>结扎上述三个门静脉分支后，门静脉血流将仅灌注右中叶（RML），此时右中叶与左中叶之间会出现清晰的分界线。</li>
</ol>
4. 门静脉结扎联合离断术（PVL+T）
<ol>
	<li>在门静脉结扎（PVL）后，沿右中叶（RML）与左中叶（LML）之间的分界线进行肝实质离断（图3D）。</li>
	<li>使用带极细神经外科尖端的防粘连双极银夹镊对肝脏组织进行预电凝，在分界线上形成一条约1 mm宽的电凝带。</li>
	<li>使用剪刀仔细剪开已预电凝的组织。准确判断离断深度较为困难，操作目标是尽可能接近下腔静脉（在大鼠体内走行于肝实质内）。若损伤下腔静脉，将导致大量出血，通常难以控制。</li>
	<li>一旦发生损伤，可先用棉签轻压止血；但如果出血在3–4分钟内无法停止，则需处死动物。使用缝合方法修复下腔静脉通常无效。大鼠对空气栓塞极为敏感，偶可发生空气栓塞并导致心脏骤停。</li>
</ol>
5. 门静脉压力和血流量的术中测量
<ol>
	<li>通过连接至压力监测仪的G30针头直接插管测量门静脉压力（图 4A).</li>
	<li>使用侧向连接至流量装置的2-mm容积流量探头，直接测量门静脉2分钟内的容积流量图4B仅记录仪器显示屏上指示测量质量稳定的数据。</li>
	<li>在定义相应操作步骤的流程完成后，分别评估门静脉血流和压力。 即 结扎三条门静脉分支，或结扎三条门静脉分支并同时在右中叶与左中叶之间进行实质切开。</li>
</ol>
6. 手术的最后步骤
<ol>
	<li>关闭腹腔前，确保小肠已正确放置于腹腔内。</li>
	<li>使用带SH-1针头的3-0丝线缝合腹膜和腹壁。</li>
	<li>最后使用Maxon 5-0缝合皮肤。</li>
	<li>再次对皮肤进行消毒。</li>
	<li>再次向腹部侧方皮下组织皮下注射5 mL生理盐水。</li>
</ol>
7. 使用小动物 CT 对大鼠进行肝脏体积测量
<ol>
	<li>在首次CT成像前24小时，通过G26静脉导管向尾静脉注射200 μL造影剂。</li>
	<li>使用微型CT扫描大鼠。将动物置于聚甲基丙烯酸甲酯（plexiglas）箱中以诱导全身麻醉（先以5 vol%异氟烷冲洗30秒，随后使用2–3 vol%异氟烷浓度直至动物进入麻醉状态，并通过管路系统在扫描全程维持麻醉）。为获得最佳图像质量，需将CT扫描与动物呼吸节律同步。</li>
	<li>导出医学数字成像和通信（DICOM）文件，并使用公共领域影像平台 OsiriX 8.0 进行分析。使用 &#34;闭合多边形&#34; 基于肝脏内纳米颗粒对比剂的放射密度，使用工具绘制叶边界，并通过感兴趣区域（ROI）菜单计算部分肝脏体积（参见 图2A 在 Schadde 等17)</li>
	<li>在标准模型中，让肝脏生长3天，并每天进行CT扫描以评估体积增加情况。</li>
</ol>

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<li>Cieslak, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Liver+Function+Using+%2899m%29Tc-Mebrofenin+Hepatobiliary+Scintigraphy+in+ALPPS+%28Associating+Liver+Partition+and+Portal+Vein+Ligation+for+Staged+Hepatectomy%29%5BTitle%5D)+AND+%22Case+Rep+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Assessment of Liver Function Using (99m)Tc-Mebrofenin Hepatobiliary Scintigraphy in ALPPS (Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy).</a> Case Rep Gastroenterol. 9 (3), 353-360 (2015).</li>
<li>Truant, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drop+of+Total+Liver+Function+in+the+Interstages+of+the+New+Associating+Liver+Partition+and+Portal+Vein+Ligation+for+Staged+Hepatectomy+Technique%3A+Analysis+of+the+%26%2334%3BAuxiliary+Liver%26%2334%3B+by+HIDA+Scintigraphy%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Drop of Total Liver Function in the Interstages of the New Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy Technique: Analysis of the &#34;Auxiliary Liver&#34; by HIDA Scintigraphy.</a> Ann Surg. 263 (3), e33-e34 (2016).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本方案介绍了一种ALPPS动物模型，通过PVL+T诱导肝脏快速增生，在3天内的体积增长约为单纯PVL的两倍17。选用右肝中叶作为肝脏增生叶的模型，因为肝中叶是一个连续的实质组织团块，其左侧和右侧分别由两条独立的门静脉供血，如最近发表的研究中图1所示17。与其他报道相比，该模型具有一些优势。从解剖学角度看，选择中叶最能代表人类肝脏作为一个连续实质组织团块的特征，便于进行切开从而阻断侧支血流。门静脉在左外侧叶（LLL）内分支至左内叶（LML），使得LML与LLL可同时结扎。
目前已建立并描述了多种大鼠模型和一种小鼠的ALPPS模型。18 许多大鼠模型19,20 以及唯一已报道的小鼠模型15 均需要进行肝脏质量减少。质量减少...

肝脏残余体积的大小限制了肝肿瘤的可切除性。1 通常情况下，当残留肝组织少于25%时，患者因急性肝功能衰竭导致死亡的风险显著增加，这是由于肝脏无法为整个机体提供足够的代谢功能（&#34;过小残肝综合征&#34;）。2 这种肝切除术后肝功能衰竭是肝切除术后最严重的并发症。因此，临床医生尝试在肝切除术前通过调控门静脉血流来诱导肝脏再生。3 研究发现，一旦门静脉被阻断，保留侧有门静脉血流的肝组织会以缓慢的速度开始增生，体积可因此增加至多60%。4 外科结扎5 或介入性门静脉阻塞均已作为临床常规方法确立。4 肝脏体积和功能的增加具有可靠性，但门静脉阻断后肝脏的生长速率仅为部分肝切除术后残肝再生速率的约五分之一。6
尽管肝脏在切除后能够以更快的速度再生，但肝脏生长所需的时间仍需数周至数月。因此，肝脏是唯一一种在部分被切除后能够恢复至正常功能的器官。7 一组外科医生开发出一种新型手术方法，可诱导肝脏以与部分肝切除术后相似的速度再生。他们发现，在肝脏被阻断与未被阻断区域之间增加切开，可在肝切除术前诱导未来残肝部分产生与肝切除术后相同速率的肝组织增生。9 该方法可在一周内使未来残肝体积迅速增生达80%，从而允许在一周内切除原本广泛且主要无法切除的肝肿瘤。该手术方法被称为&#34;联合肝脏分割和门静脉结扎分阶段肝切除术 = ALPPS&#34;，并迅速在全球范围内得到广泛应用。10 多项研究报道支持该新技术可显著扩大临界可切除肝肿瘤的可切除范围，11 但该复杂手术也因其较高的并发症发生率而受到质疑。12,13
自2012年ALPPS技术发表以来，研究人员已尝试建立啮齿类动物及大型动物的缓慢和快速增生模型，以实现对肝脏组织增生机制更深入的组织学表征与理解，并测试药物对动物肝脏组织不同增生速率的影响。首个建立的动物模型为大鼠模型。在该模型中，通过在中叶右部与左部之间进行实质切开，可诱导右中叶快速增生，从而加速其再生过程。14 随后，小鼠模型也被引入。在此模型中，切除左外侧叶，并结扎除左中叶外所有肝叶的门静脉分支。15 此外，猪的ALPPS大型动物模型也已有报道。16
在研究门静脉血流变化和压力、肝脏组织灌注与氧合等生理机制方面，大鼠模型优于小鼠的ALPPS模型。与小鼠模型相比，大鼠模型的另一优势在于无需切除左外侧叶15，从而避免了肝切除效应与ALPPS效应之间的相互干扰。相反，大鼠模型不会减少肝细胞质量。猪模型采用右后叶作为增生肝叶，但猪肝具有高度分叶结构，因此在右后叶与右前叶之间本已较薄的组织桥上建立切面十分困难。相比之下，大鼠的中叶由两部分组成，每部分均由独立的门静脉供血，可通过显微外科技术在两者之间轻松建立实质切面。小型动物计算机断层扫描（CT）和/或磁共振成像（MRI）技术的应用，使得能够精确量化仅门静脉结扎与门静脉结扎联合实质切分之间肝脏体积增长的差异，这对于验证任何快速肝肥大模型均具有重要意义。
本文所述方案介绍了在大鼠中分别通过门静脉结扎以及门静脉结扎联合离断术建立慢性和快速肥大模型后，用于进行体积验证和生理学表征的外科技术与操作步骤。

<table><tbody><tr><td>异氟烷，250 mL 瓶装</td><td>Attane，Piramal，孟买，印度</td><td>LDNI 22098</td><td>标准兽医设备</td></tr><tr><td>Tec-3 异氟烷蒸发器</td><td>Ohmeda，GE Healthcare，芝加哥，IL</td><td>不再提供</td><td>标准兽医设备&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>布托啡诺（Temgesic）</td><td>Indivior，瑞士巴尔</td><td>7680419310353</td><td>GTIN编号</td></tr><tr><td>维生素A软膏</td><td>Bausch&amp;amp;Lomp，苏黎世，瑞士</td><td>7680223980247</td><td>GTIN编号</td></tr><tr><td>硫酸阿托品 0.5 mg/mL</td><td>Sintetica SA，门德里西奥，瑞士</td><td>7680565330045</td><td>GTIN编号</td></tr><tr><td>显微外科手术显微镜</td><td>奥林巴斯，东京，日本</td><td>SZX10</td><td>标准兽医设备</td></tr><tr><td>聚维酮碘</td><td>Mundipharma，巴塞尔，瑞士</td><td>7680342821377</td><td>GTIN编号</td></tr><tr><td>海绵动物</td><td>卡尔·罗斯有限公司，德国卡尔斯鲁厄</td><td>NK83.1</td><td>微型海绵</td></tr><tr><td>腹壁牵开器</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>用回形针和棉签自制</td></tr><tr><td>3-0 丝线&amp;nbsp;</td><td>Ethicon，萨默维尔，新泽西州</td><td>K872H</td><td>标准外科手术</td></tr><tr><td>剪刀&amp;nbsp;</td><td>世界精密仪器公司（WPI），佛罗里达州萨拉索塔</td><td>503371</td><td>标准显微外科技术</td></tr><tr><td>阿氏镊</td><td>世界精密仪器公司（WPI），佛罗里达州萨拉索塔</td><td>501244-G</td><td>标准显微外科技术</td></tr><tr><td>精细尖头微型镊子</td><td>世界精密仪器公司（WPI），佛罗里达州萨拉索塔</td><td>501976</td><td>移液器吸头需要定期抛光</td></tr><tr><td>弯曲精细尖头微型镊</td><td>世界精密仪器公司（World Precision Instruments, WPI），佛罗里达州萨拉索塔</td><td>504513</td><td>必须绕行门静脉分支&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>6-0 LOOK 黑色编织丝线</td><td>Surgical Specalities Corporation，宾夕法尼亚州怀奥米辛&amp;nbsp;</td><td>SP114</td><td>线轴，术前已预先切割</td></tr><tr><td>2-0 丝线缝合线</td><td>Ethicon，新泽西州萨默维尔</td><td>K833</td><td>标准外科手术</td></tr><tr><td>5-0 Maxon缝合线</td><td>Covidien，爱尔兰都柏林</td><td>6608-21</td><td>标准外科手术</td></tr><tr><td>双极显微镊</td><td>Sutter，德国弗赖堡</td><td>780148SGS</td><td>实质切开术的关键步骤</td></tr><tr><td>小号棉签</td><td>卡尔罗斯特有限公司，德国卡尔斯鲁厄</td><td>EH11.1</td><td>标准外科手术</td></tr><tr><td>大号棉签</td><td>卡尔罗斯特有限公司，德国卡尔斯鲁厄</td><td>XL54.1</td><td>标准外科手术</td></tr><tr><td>G30 针头&amp;nbsp;</td><td>Terumo，东京，日本</td><td>NN-3013R&amp;nbsp;</td><td>标准麻醉设备</td></tr><tr><td>2 mm 体积流量探头&amp;nbsp;</td><td>Transonic Systems，纽约州伊萨卡</td><td>MA-2PS</td><td>HAT-311 流量计可使用的最小探头</td></tr><tr><td>跨音速流量计</td><td>Transonic Systems，伊萨卡，纽约州</td><td>HAT-311 跨音速流动质量控制计量仪</td><td>其中一个&amp;nbsp; 用于手术的一代流量计</td></tr><tr><td>ExiTron nano 12,000&amp;nbsp;</td><td>德国米尔泰尼生物技术公司，贝尔吉施格拉德巴赫</td><td>130-095-698</td><td>用于肝脏和脾脏显影的纳米分子造影剂</td></tr><tr><td>G26 静脉导管</td><td>Becton Dickinson，美国新泽西州富兰克林湖</td><td>391349</td><td>标准麻醉设备</td></tr><tr><td>Quantum FX MicroCT&amp;nbsp;</td><td>Perkin Elmer，美国马萨诸塞州沃尔瑟姆</td><td>N/A</td><td>中国台湾，Z大学生理学研究所的标准小型动物CT扫描仪&amp;uuml;丰富</td></tr><tr><td>OsiriX 8.0</td><td>Pixmeo Sarl，瑞士日内瓦</td><td>N/A</td><td>公共领域软件：www.pixmeo.com</td></tr></tbody></table>

联合肝脏分割和门静脉结扎分期肝切除术（alpps）的大鼠模型

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy (ALPPS) Procedure

近期的临床数据支持对原发性和转移性肝肿瘤采取积极的外科手术治疗策略。对于某些适应证，例如结直肠癌肝转移，肝切除术后剩余肝组织的体积已成为能否切除大体积或多发性肝肿瘤的主要限制因素。为避免术后肝功能衰竭这一严重并发症（其发病率和死亡率均较高），必须保留最低限度的功能性肝组织。在肝切除术前促进未来残余肝体积增生的方法在肝脏外科中已日益成熟，包括由介入放射科医生实施的门静脉栓塞术，或在切除术前数周进行的门静脉结扎术。最近研究发现，当在第一阶段将肝实质离断与门静脉结扎相结合，仅等待一周后即在第二阶段实施切除术时，肝脏再生更为显著且迅速（即分阶段肝实质离断联合门静脉结扎术 = ALPPS）。ALPPS 迅速在全球范围内得到推广，但也因其较高的围手术期死亡率而受到质疑。该手术所诱导的快速且广泛的肝再生机制尚未被充分阐明。为此已建立了动物模型，以探究 ALPPS 中加速肝再生的生理及分子机制。本方案介绍了一种可用于深入研究加速性肝再生机制的大鼠模型。

两种不同的外科手术方式——门静脉结扎（PVL）和门静脉结扎加离断（PVL+T）——会导致明显不同的肝脏增生动力学。PVL 在 3 天内引起中等程度的体积增加，而在 PVL+T 中则可见更大的右中叶（RML）增生（图 5）。这一现象可通过每日容积测量加以验证。在 PVL 中，RML 体积在 3 天内大约增加一倍，而在 PVL+T 中则增至原来的三倍。17
门静脉内的血流测量显示血流稳定，尽管PLV和PVL+T的血流面积有所减少（见Schadde 等人17的图3A）。这表明全部门静脉血流量通过约26%的原有肝实质，从而导致“门静脉高灌注”。
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已提出使用联合肝脏分割和门静脉结扎分阶段肝切除术（ALPPS）来诱导快速肝肥大，以用于临界可切除肝肿瘤的切除。该模型有助于阐明快速肥大过程中涉及的机制，并可用于测试促进或抑制再生加速的药物。

联合肝脏分割和门静脉结扎分期肝切除术（ALPPS）的大鼠模型

近期临床数据支持对原发性和转移性肝肿瘤采取积极的手术治疗策略。对于某些适应证，如结直肠肝……

本手术干预的总体目标是通过对门静脉进行结扎并横断肝实质，实现大鼠肝脏的快速肥大。该模型可用于对肝脏快速再生过程中的生理学和分子机制进行详细评估。门静脉结扎后，肝脏即开始再生。我们发现了一种在门静脉结扎之外额外横断肝实质的方法，可加速肝脏再生。该方法提供了一种肝脏加速再生的模型，此技术在临床手术中用于临界可切除肝肿瘤的患者。动物完全麻醉并做好手术准备后，使用小型动物专用电推剪沿腹中线从剑突至生殖器区域剃毛。彻底清除腹中线两侧各两厘米范围内的毛发。皮肤消毒后，切开腹壁。然后用3-0丝线缝线牵拉并固定两侧腹壁及剑突。接着使用自制的小型金属牵开器，将胃、结肠和小肠从肝十二指肠韧带处向侧方牵开，从而暴露门静脉。现在钝性分离门静脉。用显微镊提起腹膜，并缓慢向内侧剥离。按以下顺序游离门静脉的分支。首先，右侧后支；其次，左侧外侧支与左侧中支合并；最后，尾状支。接下来，使用小幅度动作小心剥离腹膜，避免撕裂走行于其下方的通向肝叶的小动脉分支。当主门静脉暴露后，通过缓慢向前推进和撑开的动作将其分支环绕。避免用力推压遇到的阻力，以防撕裂动脉或静脉。这是该操作的关键步骤。必须避免在遇到阻力时强行推进。但通常一旦将腹膜表面剥离后，显微外科直角器械便可顺利沿门静脉分支滑动。若出现出血，使用无菌棉签按压至少一分钟，然后重新评估。必要时，可重复此操作数次。如果出血仍不止，则处死动物。接下来，解剖右后叶支。首先小心移动横跨叶支的动脉。然后使用弯头显微镊，将动脉与腹膜一同向头侧牵拉，以暴露右门静脉支。现在使用6-0丝线结扎右后叶支。观察右后叶，结扎后其颜色将变苍白。接下来，解剖下肝左叶（LLL）和下肝中叶（LML）分支。它们共用一个主干。注意避免损伤穿行于腹膜层内并供应这些分支的动脉。小心剥离腹膜，以保持这些动脉完整。然后分离较为独立的尾状叶分支。通向尾状叶的门静脉从主门静脉发出，位置位于右叶分支的远端和内侧。这与较大型动物中分支严格位于下方的情况不同。用胆管及动脉将肝十二指肠韧带提起，从主门静脉分离并游离尾状叶分支。使用弯头显微镊，从侧方接近该叶。然后使用6-0丝线进行结扎。结扎后该叶也会变苍白。此时观察右中叶与左中叶之间出现的明显分界线。这是由于仅有右中叶（RML）接受门静脉的独占灌注所致。若进行门静脉结扎模型实验，手术可在此终止。若需继续进行离断操作，应使用带有极细神经外科尖端的防粘连双极银制镊子。首先，沿分界线进行预电凝，在组织上形成一条短的电凝带。随后使用剪刀仔细剪开已预电凝的组织，切割深度应尽可能接近腔静脉，该静脉走行于肝内。损伤下腔静脉通常会导致动物死亡，因此需格外小心。已有多种技术用于横断肝实质。我们发现，使用尖端细小的银色镊子预先对肝组织进行电凝止血，再用剪刀剪开，可最大限度地减少出血，效果最佳。切断后，将腹部擦干并确认无出血。在关闭切口前，确保小肠已正确复位。随后使用SH-1

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肝分型与门静脉结扎大鼠分期肝切除 (ALPPS) 手术模型的建立

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部分原位肝移植伴肝动脉重建的大鼠手术操作

辅助性肝移植可在急性肝衰竭时提供临时支持，直至衰竭肝脏再生。异位辅助性肝移植（HALT）联合门静脉动脉化（PVA）可提供充分的肝功能。我们建立了大鼠的类似技术，以研究门静脉动脉化对移植物形态和功能的影响。...

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腹腔镜肝切除术中整块切除理念与解剖性切除的联合应用

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本文所述的大鼠异位辅助性肝移植方案为研究肝同种异体移植物排斥反应的机制提供了一种实用的实验工具。该模型有助于减轻大鼠原位肝移植过程中的手术难度和动物应激反应。...

利用输尿管肝管吻合术的异位辅助性全肝大鼠移植模型用于同种异体移植物排斥研究

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小鼠手术模型中的扩大78%肝切除术

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保留肝右静脉下支的腹腔镜解剖性S7+S8段切除术联合S6段切除及肝右静脉离断

盲肠结扎穿刺小鼠模型作为研究人类脓毒症的重要工具。...

盲肠结扎穿刺术

学习在大鼠中建立ALPPS手术模型，通过门静脉结扎联合肝实质离断实现快速肝脏肥大。该方法可用于研究生理和分子层面的肝脏再生机制，并评估潜在治疗药物的效果。

联合肝脏分割和门静脉结扎分期肝切除术（ALPPS）的大鼠模型

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