2017年8月21日
本文所述方法是一种新的囊泡分离方案,可纯化在交叉提呈过程中通过内质网相关降解途径处理外源性抗原的细胞区室。
本实验的总体目标是纯化膜性区室,在交叉提呈过程中,外源性抗原在此发生类似内质网相关降解(ERAD)的降解过程。该方法有助于解答免疫学领域中的关键问题,例如阐明交叉提呈中外源性抗原发生类似ERAD降解的细胞区室。该技术的主要优势在于,所获得的纯化囊泡包含所有相关的分子机制,从而能够实现对外源性抗原的类似ERAD的降解。因此,该方法可为树突状细胞介导的交叉提呈过程提供深入见解,也可应用于其他具有交叉提呈能力的抗原提呈细胞。通常,初次接触该方法的研究人员会遇到困难,因为无法完全排除所有非特异性背景信号。在纯化前一天,将DC2.4细胞以每毫升10万个细胞的密度接种于组织培养板中,使用RPMI缓冲液进行培养。应避免细胞长至完全汇合状态,以提高外源性抗原摄取的概率。在DC2.4细胞达到半汇合状态前,加入生物素标记的卵清蛋白(biotinylated ovalbumin, bOVA)作为外源性抗原,随后孵育2至4小时。通过轻柔吹打将细胞从组织培养板中收集至新的50 mL锥形管中,在4°C条件下以1000 × g离心5分钟
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本文介绍了一种新型囊泡分离方案,可实现对外源性抗原加工相关细胞区室的纯化。该方法聚焦于内质网相关降解在交叉提呈中的作用。
从树突状细胞中纯化与内质网相关降解(ERAD)相关的囊泡,可实现对交叉提呈这一抗原加工和免疫激活关键过程的机制性研究。该技术能力有助于提升免疫学导向的研发项目在靶点验证方面的预测可信度,并为免疫治疗候选物的风险调整式推进提供依据。该方案可拓展应用于其他抗原提呈细胞,从而增强了其在企业研发管线中的战略价值。
该囊泡纯化方案整合了早期发现与临床前免疫学的交叉环节,支持从作用机制靶点验证到候选分子鉴定的全流程工作。