Name: 细菌生长的精确、高通量分析 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 学习使用高通量方法精确分析细菌生长，同时测试多种培养基或菌株。该技术可评估最大生长速率和群体密度，适用于大肠杆菌及其他微生物的系统生物学研究。

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作者无任何利益冲突需要披露。

1. 准备培养基
注意：最小培养基 M63 的化学成分为：62 mM K2HPO4、39 mM KH2PO4、15 mM (NH4)2SO4、1.8 µM FeSO4、15 µM 硫胺素盐酸盐（thiamine-HCl）、0.2 mM MgSO4 和 22 mM 葡萄糖。M63 通过混合三种储备液配制而成：5 倍浓缩液（Five X solution）、20% 葡萄糖溶液以及 MgSO4 与硫胺素溶液。所有溶液均应保存于 4 °C。
<ol>
	<li>配制五倍浓缩溶液
	<ol>
		<li>配制 FeSO4 溶液时，使用电动移液器和一次性刻度移液管将 ddH2O 加入一个 50 mL 离心管中。使用 P-200 移液器加入 0.06 mL HCl，配制成 0.01 M HCl。加入 36 mg FeSO4-7H2O，并充分混匀。</li>
		<li>用量筒量取 160 mL ddH2O，倒入 500 mL 烧杯中。按以下顺序依次加入：10.72 g K2HPO4、5.24 g KH2PO4、2.0 g (NH4)2SO4 和 0.5 mL FeSO4 溶液（步骤 1.1.1 中配制）。</li>
		<li>使用精密 pH 计，通过加入 2 M KOH 将 pH 调整至 7.0。将溶液倒入量筒中，并用 ddH2O 定容至总体积 200 mL。使用 250 mL 过滤装置（PVDF，0.22 µm）对溶液进行灭菌。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制 20% 葡萄糖溶液
	<ol>
		<li>用量筒量取 200 mL ddH2O，倒入 500 mL 烧杯中。在磁力搅拌器搅拌下加入 50 g 葡萄糖。将溶液在量筒中稀释至总体积 250 mL。按照步骤 1.1.3 所述方法对溶液进行灭菌。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制 MgSO4 硫胺素溶液
	<ol>
		<li>向 500 mL 烧杯中加入 150 mL ddH2O。在磁力搅拌器搅拌下加入 1.0 g 硫胺素-HCl 和 10 g MgSO4-7H2O。将溶液在量筒中稀释至总体积 200 mL。按照步骤 1.1.3 所述方法对溶液进行灭菌。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制最小培养基 M63
	<ol>
		<li>将五倍浓缩溶液、20% 葡萄糖溶液、MgSO4 硫胺素溶液、电动移液器、P-200 移液器和 200 µL 吸头放置于洁净工作台上。</li>
		<li>用量筒量取 155.8 mL ddH2O，倒入 500 mL 烧杯中。</li>
		<li>使用电动移液器和一次性刻度移液管，向已量取的 ddH2O 中加入 40 mL 五倍浓缩溶液和 4 mL 20% 葡萄糖溶液。然后使用 P-200 移液器加入 0.2 mL MgSO4 硫胺素溶液。按照步骤 1.1.3 所述方法对溶液进行灭菌。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 准备甘油菌种保存液
<ol>
	<li>细胞培养 
	注意：细菌菌株（例如，W3110 及其基因组简化菌株）可从菌种保藏机构获得。这些菌株通常以琼脂平板上的菌落形式提供。
	<ol>
		<li>将五根带硅胶塞的灭菌玻璃管、一支电子移液器、P-1,000、1,000-µL 移液器吸头，P-200，200-µL 移液器吸头，以及洁净工作台上的目标菌株（平板上的菌落）。</li>
		<li>将玻璃管管口置于本生灯火焰上灼烧，然后打开硅胶塞。打开试管后，将硅胶塞也在火焰上灼烧，随后轻轻将硅胶塞盖回玻璃管口。</li>
		<li>使用电子移液器和一次性血清移液管，向其中一支玻璃试管中加入 5 mL M63，向其余四支试管中各加入 4.5 mL M63。</li>
		<li>使用P-200枪头挑取单菌落，接种于含有5 mL M63培养基的玻璃试管中。</li>
		<li>涡旋混匀试管以制成悬浮液。然后，取0.5 mL该溶液转移至含有4.5 mL M63的四支试管之一，将溶液稀释10倍。</li>
		<li>重复步骤 2.1.5 中描述的过程，处理剩余的试管。此时已准备好包含五种不同浓度（稀释倍数分别为 1、10、100、1,000 和 10,000）的稀释系列。</li>
		<li>按照步骤2.1.2所述方法对玻璃试管管口和硅胶塞进行灭菌。用硅胶塞盖紧试管，注意避免折叠或皱褶硅胶塞，以防污染。</li>
		<li>将五个试管放入预热的摇床培养箱中 37 °C 以200 rpm振荡培养，过夜孵育或孵育10至30小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>甘油菌种保藏的培养物选择
	<ol>
		<li>将预热至室温的 M63 培养基、P-1,000、1,000-µL 移液器吸头和一次性比色皿置于洁净工作台。</li>
		<li>添加 1000 µL 用 P-1,000 将 M63 加入一次性比色皿中。将一次性比色皿放入分光光度计，在 600 nm 的固定波长下启动程序，测定空白样。</li>
		<li>将五支玻璃试管从摇床培养箱转移到超净工作台。</li>
		<li>弃去一次性比色皿中的 M63，加入 1,000 µL 将培养物用 P-1,000 加入同一一次性比色皿中。测定细胞培养物的光浊度（OD600) 如步骤 2.2.2 中所述。 
		注意：为避免污染并实现精确测量，需按所述方法将玻璃管和管塞暴露于火焰中，并在取样前涡旋混匀培养物。为确保结果可靠，建议进行多次重复测量，尤其是在细胞密度较低时。</li>
		<li>在五种细胞培养物中，选择一种处于对数生长期初期的培养物（OD600= 0.01 - 0.05）用于甘油菌种保存。 
		注意：如果多个培养物的密度均处于最佳范围内，通常选择密度最接近0.05的培养物。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>制备甘油菌种以用于重复实验。 
	注意：此处以制备十份储备液为例进行描述。可根据实验需求制备更大或更小的量。
	<ol>
		<li>将灭菌的60%甘油溶液、10个灭菌的1.5 mL微量离心管、P-1,000和P-200移液器、1,000-和200-µL 移液器吸头和微型离心管架置于洁净工作台。</li>
		<li>添加 250 µL 无菌60%甘油溶液和 750 µL 将选定的细胞培养物转移至1.5 mL微量离心管中，并用移液器吹打混匀。 
		注意：储存体积可变，但须始终保持60%甘油与细胞培养物1:3的比例，以获得终浓度为15%的甘油。</li>
		<li>将剩余的九个微量离心管放入微量离心管架中，并分装 100 µL 将步骤 2.3.2 中制备的混合物加入每个试管中。现在共有十个相同的甘油菌种，可供将来使用。</li>
		<li>将储备液存放在 -80 °C 超低温冰箱中80 °C.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 获取生长曲线
<ol>
	<li>设置酶标仪。 
	注意：引号中显示的术语表示此处所用酶标仪上使用的具体表述（参见材料表）。
	<ol>
		<li>打开软件。在“任务管理器”中打开“程序”，选择“创建新程序”。选择“标准程序”。</li>
		<li>打开“步骤”，并调整设置。打开“设置温度”，选择“开启孵育器”。将“温度”设为 37 °C，“梯度”设为 0 °C。继续下一步前勾选“预热”。打开“开始动力学”，将“运行时间”设为 24:00:00 或 48:00:00，“间隔”设为 00:30:00 或 01:00:00。 
		注意：读取整块 96 孔板大约需要 1 分钟。</li>
		<li>打开“振荡”，将“振荡模式”设为“线性”。勾选“震荡混匀”，并将“频率”设为 567 cpm。打开“读数”，勾选“吸光度”、“终点/动力学”和“单色仪”。将“波长”设为 600。</li>
		<li>点击“验证”以确认步骤正确。点击“保存”将其保存为新程序，以便将来使用。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>生长过程的实时记录
	<ol>
		<li>绘制一个 96 孔板示意图（8 × 12 表格），用于标明接种培养样品在 96 孔板上的位置。打印该表格，并在实验中作为参考。 
		注意：由于蒸发作用，微孔板边缘的孔中应仅加入空白培养基。</li>
		<li>在洁净工作台上放置一个带盖的灭菌 96 孔平底微孔板、P-1000 移液器、1000-µL 吸头、P-200 移液器、200-µL 吸头、若干 1.5-mL 微管、8 道多通道移液器、灭菌试剂储液槽、室温 M63 培养基以及甘油菌种（按步骤 2.3 制备）。</li>
		<li>向试剂储液槽中加入约 25 mL M63 培养基。此储液用于后续所有步骤。</li>
		<li>向微管中加入 900 µL M63 培养基，用于制备系列稀释液。</li>
		<li>将甘油菌种在室温下解冻。向解冻的甘油菌种中加入 900 µL M63 培养基并涡旋混匀。此操作使原始甘油菌种稀释 10 倍。</li>
		<li>取 100 µL 上述 10 倍稀释液，转移至另一含有 900 µL M63 培养基的微管中，并涡旋混匀。此操作得到 100 倍稀释液。</li>
		<li>重复步骤 3.2.6，直至达到所需的稀释倍数。</li>
		<li>使用 8 通道移液器（P-200）向微孔板边缘的孔中各加入 200 µL M63 培养基。 
		注意：这些孔可用作空白对照。</li>
		<li>根据参考表格（步骤 3.2.1），将步骤 3.2.4 至 3.2.7 制备的各稀释样品各取 200 µL 加入微孔板的相应孔中。加样前涡旋混匀稀释样品，并将同一样品在板上不同位置的多个孔中重复加入。</li>
		<li>将 96 孔微孔板放入酶标仪中。</li>
		<li>在“任务管理器”中打开“立即读取”，选择程序（第 3.1 节）。点击“确定”开始测量。将记录保存为新的实验文件，用于数据分析（第 4 节）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 数据分析
<ol>
	<li>将实时生长速率数据（第3.2节）的结果导出为文本文件至U盘。 
	注意：96孔板格式的结果（曲线）将在酶标仪上实时显示。每小时记录（OD值）可导出为表格，其中行和列代表孔位编号例如，A1，B1）和测量时间（例如，分别为 00:00:59。</li>
	<li>使用电子表格软件打开该文本文件。</li>
	<li>复制每小时的 OD600 将96孔微孔板的读数导出至新的工作表以进行进一步分析。</li>
	<li>从每个样本孔的每小时读数中减去零时间点的背景读数。 
	注意：为方便起见，可将含有 M63 的空白孔的平均值（步骤 3.2.8）用作背景值。</li>
	<li>计算连续五次 OD 的平均值600 通过读数来估算最大种群密度。 
	注意：五个连续 OD 值中的最大平均值600 测得的吸光度值定义为最大OD600 相应生长曲线的</li>
	<li>计算生长速率， µ （h-1），应用以下方程对所有连续的OD值对进行计算600: 
	<img alt="微生物生长速率计算公式；公式：μ = LN(Ci+1/Ci)/(ti+1 - ti)；科学分析" src="/files/ftp_upload/56197/56197eq1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程"> 
	注意：在此方程中，Ci 和 Ci+1 表示光密度（OD）600 任意两个连续时间点（ti 和 ti+1，分别）。LN 表示自然对数。</li>
	<li>根据每小时的OD计算随时间变化的生长速率变化600 根据步骤4.6读取数据。计算连续五个生长速率的平均值和标准差，以估算最大生长速率。 
	注：最大均值与最小标准差定义为相应生长曲线的最大生长速率。</li>
</ol>
5. 确认96孔板测序读数的全局偏差（可选）
注意：酶标仪和耗材96孔板均可能导致测量偏差。为获得高精度和可重复的定量结果，强烈建议确认96孔板的全局偏差。
<ol>
	<li>按照第 3.2.2 节所述，为偏倚测试准备 96 孔板和酶标仪。</li>
	<li>向一个灭菌的 50 mL 离心管中加入 20 mL M63 培养基，再将甘油菌种加入同一离心管中，涡旋混匀。将悬浮液转移至一个灭菌的试剂储液槽中。</li>
	<li>使用 8 通道移液器将 200 µL 悬浮液转移至 96 孔板中。</li>
	<li>将 96 孔板放入酶标仪中，并启动检测。</li>
	<li>记录每小时的 OD600 读数，并按第 4 节所述进行分析。比较各孔计算所得的最大生长速率和种群密度，以确定 96 孔板读数的位置偏倚。</li>
</ol>

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</ol>

感谢土屋浩平提供CFU实验示例。本研究部分得到了日本文部科学省科学研究费补助金（C）项目编号26506003（授予BWY）的资助。

该实验方案的关键步骤包括制备共同的对数生长期细胞储备液，以及在微孔板的不同位置设置多个孔进行相同样品的重复实验。以往，微生物学家通常从过夜预培养物开始培养。尽管这种方法可能缩短细菌生长的滞后期，但难以获得可重复的生长曲线。如图2所示，使用共同甘油储备液进行的独立测量得到了几乎完全一致的生长曲线，从而提供了可重复且精确的结果。如图3所示，位于不同位置的孔所测得的读数略有差异，这被视为测量的全局背景值。在对细菌生长进行定量评估时，应考虑这一背景值。为消除全局偏差的影响，强烈建议在微孔板的不同位置接种多个重复孔以进行实验重复。
除了处理误差外，还应考虑由实验设备和耗材引起的修改及故障排除问题。目前市面上有多种先进的酶标仪，它们在特性上存在广泛差异，例如光波长调节方式、加热或冷却模式，以及振荡的方式和频率。根据我们的经验，在高通量研究中应重视蒸发问题，因为液体体积的变化会显著影响OD600的读数。蒸发主要由酶标仪所采用的加热方式以及微孔板的结构引起。...

微生物学研究通常始于细菌细胞的培养以及细菌生长曲线的测定，这些是细菌生理学的基本现象1,2,3。由于细菌培养是一种基础性实验方法，相关的基本培养原理在已发表的研究文献和教科书中均有广泛记载。在实验操作层面，长期以来人们主要关注培养基和培养条件的优化，而对生长速率的控制——这可能更深入地揭示微生物生理特性——却研究较少4。对于指数生长期的细菌而言，细胞状态的一个关键参数是生长速率，已有研究报道该参数与基因组、转录组和蛋白质组之间存在协调关系5,6,7,8。因此，对细菌生长进行定量评估对于理解微生物生理学至关重要。
为了评估细菌生长，用于估算生物量的实验方法已得到充分建立9,10，其原理基于检测生化、物理或生物学参数，例如光学浊度。此外，用于捕捉生长变化动态特性的分析方法通常基于已确立的非线性模型11,12,13，例如逻辑斯蒂方程。生长动态通常通过定时取样培养物中的细胞生长来获得，方法包括测量光学浊度或进行菌落形成单位（CFU）测定。这些培养与检测方法的局限性在于，所得数据点并不能真实反映种群动态，因为测量间隔通常以小时计，且在取样时培养条件（e.g.，温度和通气的变化）受到干扰。培养与分析技术必须结合技术进步和认知发展进行更新。微孔板读数仪的最新进展使得能够实时观察细菌生长，并显著降低人工成本。利用这些先进设备，近期关于细菌生长的研究已报道了适用于高通量测量的分析方法14,15。
本实验方案旨在以高通量的方式评估细菌生长的精确动态，这对于最终解答“生长速率如何确定”以及“哪些因素影响生长速率”等定量研究问题具有重要价值。该方案涵盖了可重复且精确量化细菌生长时所需考虑的全部因素。实验方法与分析过程在正文中有详细描述。本方法能够以高通量的方式对细菌生长进行精确且可重复的分析。微生物学研究人员可利用本方案从其实验证据中获得更多的定量结果。该方案也可用于系统生物学研究，以推导出概念性结论或实现对生长过程的理论性整体认识。

<table><tbody><tr><td>K&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Wako</td><td>164-04295</td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Wako</td><td>166-04255</td><td></td></tr><tr><td>(NH&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Wako</td><td>019-03435</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;-7H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Wako</td><td>138-00415</td><td></td></tr><tr><td>硫胺素盐酸盐（Thiamine-HCl）</td><td>Wako</td><td>201-00852</td><td></td></tr><tr><td>葡萄糖（glucose）</td><td>Wako</td><td>049-31165</td><td></td></tr><tr><td>盐酸（HCl）</td><td>Wako</td><td>080-01066</td><td></td></tr><tr><td>七水合硫酸亚铁（FeSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;-7H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O）</td><td>Wako</td><td>094-01082</td><td></td></tr><tr><td>氢氧化钾（KOH）</td><td>Wako</td><td>168-21815</td><td></td></tr><tr><td>甘油（Glycerol）</td><td>Wako</td><td>075-00611</td><td></td></tr><tr><td>离心管（50 mL，已灭菌）</td><td>WATSON</td><td>1342-050S</td><td></td></tr><tr><td>移液器吸头，200 &amp;micro;L</td><td>WATSON</td><td>110-705Y</td><td></td></tr><tr><td>移液器吸头，1,000 &amp;micro;L</td><td>WATSON</td><td>110-8040</td><td></td></tr><tr><td>微量离心管（1.5 mL）</td><td>WATSON</td><td>131-715C</td><td></td></tr><tr><td>8通道移液器</td><td>WATSON</td><td>NT-8200</td><td></td></tr><tr><td>PASORINA 搅拌器</td><td>AS ONE</td><td>2-4990-02</td><td></td></tr><tr><td>玻璃量筒（200 mL）</td><td>AS ONE</td><td>1-8562-07</td><td></td></tr><tr><td>精密pH计</td><td>AS ONE</td><td>AS800 / 1-054-01</td><td></td></tr><tr><td>Pipetman P-200</td><td>GILSON</td><td>1-6855-05</td><td></td></tr><tr><td>Pipetman P-1000</td><td>GILSON</td><td>1-6855-06</td><td></td></tr><tr><td>一次性血清移液管（10 mL）</td><td>SANPLATEC</td><td>SAN27014</td><td></td></tr><tr><td>一次性血清移液管（25 mL）</td><td>SANPLATEC</td><td>SAN27015</td><td></td></tr><tr><td>微量离心管架</td><td>BM Bio</td><td>801-02Y</td><td></td></tr><tr><td>涡旋振荡器（Vortex）</td><td>BM Bio</td><td>BM-V1</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 96孔微孔板（平底，透明），带盖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Corning, 3370</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 试剂储液槽（50 mL）</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Corning, 4870</td><td></td></tr><tr><td>Stericup GV PVDF 滤器（250 mL，0.22 &amp;micro;m）</td><td>Merck Millipore</td><td>SCGVU02RE</td><td></td></tr><tr><td>Pipet-Aid XP</td><td>DRUMMOND</td><td>4-000-101</td><td></td></tr><tr><td>生物摇床（Bioshaker，BR-23UM MR）</td><td>TAITEC</td><td>0053778-000</td><td></td></tr><tr><td>废弃细胞收集管（1.5 mL）</td><td>Kartell</td><td>1938 / 2-478-02</td><td></td></tr><tr><td>DU 730 生命科学紫外/可见分光光度计</td><td>Beckman Coulter</td><td>A23616</td><td></td></tr><tr><td>EPOCH2</td><td>BioTek</td><td>2014-EP2-002 / EPOCH2T</td><td></td></tr><tr><td>烧杯（500 mL）</td><td>IWAKI</td><td>82-0008</td><td></td></tr><tr><td>生物洁净工作台</td><td>Panasonic</td><td>MCV-B131F</td><td></td></tr><tr><td>玻璃试管</td><td>NICHIDEN RIKA GLASS</td><td>P-10M~P-30 /101019</td><td></td></tr><tr><td>硅橡胶塞</td><td>ShinEtsu Polymer</td><td>T-19</td><td></td></tr><tr><td>细菌菌株</td><td>菌种保藏机构；日本国家生物资源项目（NBRP）</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

精确、高通量的细菌生长分析

Precise, High-throughput Analysis of Bacterial Growth

细菌生长是现代微生物生理学发展以及系统水平上细胞动态研究的核心概念。近期研究报道了细菌生长与全基因组事件（如基因组缩减和转录组重排）之间的相关性。准确分析细菌生长对于理解基因功能与细胞组分在生长依赖性上的协调至关重要。因此，需要以高通量方式对细菌生长进行精确的定量评估。新兴技术的发展提供了新的实验工具，使得研究细菌生长的方法得以更新。本文介绍的实验方案采用酶标仪并结合高度优化的实验流程，可实现对细菌生长的可重复且精确的定量评估。该方案已被用于评估多种先前报道的菌株的生长情况 大肠杆菌 菌株。本方案的主要步骤如下：在小瓶中制备大量细胞储备液，以用于重复实验并获得可重复的结果；使用96孔板进行高通量生长评估；以及手动计算两个主要参数（即、最大生长速率和种群密度）以表征生长动态。与传统的菌落形成单位（CFU）测定法相比，该方法更为高效，可提供更详细的生长变化时间记录；CFU方法通过在琼脂平板上对玻璃试管中随时间培养的细胞进行计数来评估生长情况，但本方法在低种群密度下的检测限更为严格。综上所述，所述方法适用于细菌生长的精确且可重复的高通量分析，可用于得出概念性结论或进行理论推断。

本方法通过使用96孔板读数仪，以连续、高通量的方式记录细菌动态生长过程，可在不同时间间隔（从数分钟到数小时乃至数天）进行多次光密度测定。在一个实验中即可精确获取表达不同基因组的多种大肠杆菌（E. coli）菌株的生长曲线（图1A）。与本方法相比，传统方法（菌落形成单位测定法，CFU法）通常需要更长的取样时间间隔（图1B），且当需处理多个培养样本时工作量较大。此外，CFU法在每个时间点取样时需消耗少量细胞培养液，无法用于重复测量。同时，由于检测时间点数量有限，可能遗漏用于准确计算生长速率和最大OD600所需的关键采样点。然而，CFU法的检测下限较低，为103 - 104 个细胞/mL，比光学浊度法（OD600 = 0.001，检测下限约为105 - 106 个细胞/mL）至少敏感两个数量级。本方法为在系统水平...

对细菌生长进行定量评估对于从系统层面理解微生物生理学至关重要。本文介绍了一种实验操作方案和分析方法，可实现对细菌生长的精确、高通量分析，这是系统生物学研究中的一个关键课题。

细菌生长是现代微生物生理学发展以及细胞动态研究中的一个核心概念，以及在……

本实验的总体目标是以高通量方式精确分析细菌生长。通过该方法，可同时检测多种培养基或不同菌株。该方法有助于回答系统生物学和微生物学领域的关键问题，例如细胞生长的决定因素是什么。该技术的主要优势在于，它能够使研究人员精确评估细菌细胞生长曲线中的最大生长速率和最大种群密度等全局参数。尽管该方法可用于研究大肠杆菌（E. coli）的生长，也可应用于其他微生物，例如环境细菌的生长测定与筛选。首先，将五支带有硅胶塞的灭菌玻璃试管、移液管和目标菌株放置于洁净工作台上。打开硅胶塞前，将玻璃试管口部置于本生灯火焰上灼烧。试管打开后，将硅胶塞也短暂过火灭菌，然后轻轻盖回玻璃试管上。接下来，使用电子移液器和一次性血清移液管，向其中一根玻璃试管中加入 5 毫升 M63，向其余四根试管中各加入 4.5 毫升 M63。使用 p200 吸头挑取一个菌落，并接种到含有 5 毫升 M63 的玻璃试管中。涡旋振荡试管，制成菌悬液。然后，取0.5毫升该溶液转移至装有4.5毫升M63的四支试管中的一支，将溶液稀释10倍。对剩余试管重复此操作。对玻璃试管管口和硅胶塞进行灭菌后，用硅胶塞盖紧试管。然后，将五个试管放入已预热至37 °C的摇床培养箱中，以200 rpm振荡培养。培养过夜或10至30小时。培养结束后，用移液器（p1000）向一次性比色皿中加入1,000 μL M63。将一次性比色皿放入分光光度计中。在600纳米的固定波长下启动程序，测定空白样。将五个玻璃试管从摇床培养箱转移至洁净工作台。弃去一次性比色皿中的 M63 溶液，使用 p1000 加入 1,000 微升培养物至同一一次性比色皿中，然后测定细胞培养物的光浊度。接着，向一个 1.5 毫升微量离心管中加入 250 微升灭菌的 60% 甘油溶液和 750 微升选定的细胞培养物，通过移液混匀。将剩余的九个微量离心管放入微管架中，并向每个管中加入100微升已配制的混合液。将储备液置于-80摄氏度超低温冰箱中保存。设置酶标仪时，首先打开软件，在任务管理器中打开实验方案，选择创建新方案。然后，选择标准程序。打开操作界面并调整设置。打开设定温度，选择并开启培养箱。然后，将温度设置为 37°C，梯度设置为 0°C。继续下一步之前，请检查预热状态。打开起始动力学程序，运行时间设置为 24 或 48 分钟，然后将间隔设置为 30 分钟或 1 小时。打开摇板机并设置摇动模式为线性。勾选连续摇动，并将频率设为 567 cpm。接着，打开读数功能，选择吸光度，终点法/动力学法及单色器。将波长设置为 600。最后，单击验证以确认程序正确，然后单击保存，将其另存为新程序以供将来使用。为实时记录生长情况，向已灭菌的试剂储液槽中加入约 25 毫升 M63 培养基。然后，向微管中加入 900 微升 M63 培养基，以准备进行连续稀释。接着，向解冻的甘油菌种中加入 900 微升 M63 培养基，并涡旋混匀。将100微升10倍稀释液转移至另一含有900微升M63的微量离心管中，并涡旋混匀。重复此步骤，直至达到所需稀释倍数。随后，使用八通道移液器向已灭菌的96孔平底微量培养板边缘的孔中各加入200微升M63。根据参考表格，将每种稀释后的样品各 200 微升加入至微孔板的孔中。为避免因加热和接种效率导致的分布不均，切勿使用微孔板边缘的孔进行样品加载，并将同一样品加入微孔板上不同位置的多个孔中。将 96 孔微孔板放置于酶标仪上。立即打开读取程序并选择任务管理器中的相应程序。单击“确定”开始测量。最后，将记录保存为新的实验文件，以供数据分析。此处展示的是在实验开始前制作的参考表格示例。绘制了一个 8 行 × 12 列的 96 孔板示意图，用于标明接种培养样品在 96 孔板上的位置。通过将 OD600 的所有连续数值对代入公式计算生长速率。通过计算连续五个生长速率的平均值和标准差，来估算最大生长速率。总共60个细胞培养物的生长速率以热图形式显示。颜色从白色到红色的渐变表示生长速率从低到高。一旦掌握，若操作得当且步骤正确，该技术可在数分钟内完成。观看本视频后，您应能充分理解如何准备样本并将其加入微孔板，以高通量方式精确测量细菌生长情况。在进行该实验时，重要的是要记住在实验开始前建立参考表格，以避免细胞培养密度过低，并确保细胞在24小时内开始生长。采用此方法后，还可进行其他操作，例如实验操作的自动化和计算分析，以回答更多问题，如群体扩增的决定因素及其动态规律。该技术一经建立，便为系统生物学和微生物学领域的研究人员开辟了道路，可用于探究细胞生长的基本原理，并优化培养基的组成成分。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

细菌生长的精确、高通量分析

来源：Kurokawa, M., et al．细菌生长的精确高通量分析．J. Vis. Exp.

使用微孔板读数仪进行精确且高通量的细菌生长分析

来源： Cabeen, M. T., 等单细胞微流控分析 芽孢杆菌属 subtilis. J. Vis. Exp.

在微流控系统中以单细胞分辨率追踪细菌生长

ScanLag 是一种高通量方法，可并行测量数千个细胞的生长延迟（即滞后时间）以及菌落的生长速率。利用 ScanLag...

ScanLag：菌落生长与滞后期的高通量定量分析

开发了一种高通量、实时的检测方法，可同时实现：（1）筛选靶向胞内细菌病原体的真核细胞穿透性抗菌剂；（2）评估抗菌剂对真核细胞的细胞毒性。随后，该技术经过改进，并结合数字分配技术，从而能够便捷地开展高分辨率的剂量-反应以及二维和三维协同作用研究。...

高通量、实时、双读数检测细胞内抗菌活性与真核细胞毒性

在微量滴定板中培养放射性标记的细菌，可实现高通量取样，从而对核苷酸池含量（包括(p)ppGpp）进行多次技术重复和生物学重复检测。可监测由生理应激源引发的生长转换及其从应激中恢复过程中的效应。...

使用微量滴定板放射性标记法结合薄层色谱进行体内多重复测定大肠杆菌（Escherichia coli）的(p)ppGpp水平

本方法通过一种简单的活体报告基因检测法，在细菌细胞中定量分析RNA结合蛋白（RBPs）与其同源及非同源结合位点的结合亲和力。该检测基于报告基因的表达抑制作用。...

一种用于定量细菌中蛋白质-RNA 结合的检测方法

这种基于分子的方法通过量化独特的基因组DNA条形码，可精确且准确地检测微生物，从而评估细菌的适应性。该方案描述了计算沙门氏菌（Salmonella）菌株竞争指数的方法；然而，该技术可轻松适用于需要对任何遗传上可改造的生物体进行绝对定量的各种实验方案。...

基于数字PCR的竞争指数用于高通量分析细菌适应性 沙门菌

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多尺度分析细菌在胁迫处理下的生长

通过高通量延时成像技术，对固定化的酵母细胞在微菌落生长过程中的生长表型进行精确测量。同时，可监测其胁迫耐受性、蛋白质表达及蛋白质定位，从而生成整合型数据集，用于研究环境差异、遗传差异以及同基因型细胞间基因表达异质性如何调控细胞生长。...

高通量活体成像微菌落以测量生长与基因表达的异质性

高通量酵母质粒过表达筛选

学习使用高通量方法精确分析细菌生长，同时测试多种培养基或菌株。该技术可评估最大生长速率和群体密度，适用于大肠杆菌及其他微生物的系统生物学研究。

精确、高通量的细菌生长分析

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