Name: 微流控干纺及再生丝素纤维的表征 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
Description: 学习使用微流控干纺技术制备再生丝素纤维，并研究相对湿度对纤维结构与拉伸性能的影响。该方法模拟天然纺丝过程，为生物仿生材料开发提供重要参考。

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本工作由国家自然科学基金（21674018）、国家重点研发计划（2016YFA0201702 / 2016YFA0201700）、上海市教育发展基金会和上海市教育委员会支持的“曙光计划”（15SG30）、东华大学杰出青年教授计划（A201302）、中央高校基本科研业务费专项资金以及“111 计划”（编号：111-2-04）资助。

警告：使用前请查阅所有相关的化学品安全技术说明书。用于制备模具的多种化学试剂具有急性毒性。请使用个人防护装备（安全眼镜、手套、实验服、长裤和封闭式鞋底的鞋子）。
1. 丝素蛋白水溶液的微流控纺丝
<ol>
	<li>丝素蛋白水溶液纺丝液的制备4,15,16
	<ol>
		<li>蚕茧脱胶
		<ol>
			<li>去除胶质 家蚕 用 Na 重复处理茧两次2CO3 水溶液（水中0.5 wt%） 100 °C 每次30分钟，然后用去离子水清洗蚕丝以去除丝胶。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>脱胶蚕茧的溶解
		<ol>
			<li>将脱胶蚕茧丝在空气中干燥；然后按 1:10 (w/v) 的比例将脱胶蚕茧丝溶于 9.0 M LiBr 水溶液中 40 °C 2小时。例如，每1克丝素加入10 mL溴化锂（LiBr）图1a).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>离心与过滤
		<ol>
			<li>将RSF溶液用去离子水稀释1.5倍。离心并过滤以去除杂质。将RSF溶液分装至250 mL离心瓶中进行离心。 4 °C 10 分钟，1,234.8 × g。使用滤器过滤 RSF 溶液 20 µm 滤膜和真空泵。考虑到实验效果，建议使用双层滤纸床。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>透析
		<ol>
			<li>将RSF溶液在去离子水中透析 5 °C 使用纤维素半透膜（截留分子量：14,000 ± 2,000）透析3天。共约1 L的丝素蛋白（RSF）溶液分装于4个透析袋中，将这些透析袋置于盛有10 L反渗透（RO）去离子水的桶中。 
			注意：去离子水的 pH 值应高于 6，以避免在浓缩过程中发生凝胶化。本实验方案中，去离子水的 pH 值无需调节。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>浓缩
		<ol>
			<li>通过强制气流将RSF水溶液浓缩至20 wt% 5 °C。加入 3 M CaCl2 将水溶液加入到丝素蛋白（RSF）溶液中，使钙浓度达到 1.0 mmol/g Ca2+ 终浓度；然后通过强制气流浓缩至38-47 wt%。</li>
			<li>在载玻片上称取一滴RSF溶液，然后于烘箱中60 °C干燥2 h 105 °C. 
			注意：干燥后剩余固体的重量与干燥前液滴重量的百分比即为蛋白质和CaCl₂的总浓度。2. 在扣除 CaCl₂ 质量后计算得出 RSF 浓度2至少进行了四次重复测量。我们之前的研究表明，Ca的浓度2+ 极大地影响了再生丝素蛋白水溶液的流变性能和可纺性。同时，添加 Ca2+ 促使β-折叠结构的有限形成及丝素蛋白（RSF）的聚集17在天然纺丝液中，CaCl2 在纺丝原液储存过程中，被认为对防止纺丝前发生凝胶化起着重要作用。18</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>微流控芯片的制备8,19
	<ol>
		<li>制备光刻掩模
		<ol>
			<li>在 CAD 程序中设计微通道。打印 CAD 文件以制备高分辨率透明掩膜19.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>制备模具
		<ol>
			<li>清洁载玻片
			<ol>
				<li>在通风橱中，将载玻片置于浓硫酸与30 vol%过氧化氢溶液（10:1）的混合液中，在加热板上煮沸20分钟。 
				警告：硫酸和过氧化氢蒸气具有极高毒性。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>清洗载玻片
			<ol>
				<li>用去离子水清洗载玻片，并用高纯度氮气吹干。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>包被膜
			<ol>
				<li>使用自制的涂覆装置，在载玻片上涂覆 SU-8 光刻胶，间隙为 100 µm 涂层棒底面与玻璃上表面之间</li>
			</ol>
			</li>
			<li>旋涂
			<ol>
				<li>使用匀胶机在40.3 × g条件下旋转30秒，将光刻胶均匀涂布在玻璃载片上形成薄膜。该均匀薄膜的厚度约为 85 µm.</li>
			</ol>
			</li>
			<li>凝固
			<ol>
				<li>在带有温度控制程序的烤箱中固化光刻胶。将温度从室温升至 65 °C 在 2 °C/分钟，并保持在 65 °C 2 分钟。继续加热升温至 65 °C 至 95°C 并保持在 95 °C 15分钟。关闭烘箱，自然冷却至室温。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>紫外线照射
			<ol>
				<li>使用透明掩模通过光刻法将涂有光刻胶的玻片侧面暴露于紫外光下照射12秒19. 
				注意：紫外光的波数为 365 nm，曝光能量为 273.6 mJ/cm²2. 
				注意：使用紫外灯和烘箱时，应采取适当的安全防护措施。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>按照步骤1.2.2.5中所述固化光刻胶。</li>
			<li>开发中
			<ol>
				<li>将光刻胶在显影液中进行30秒的超声清洗。用异丙醇和显影液交替清洗载玻片，直至载玻片上无任何沉淀物。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>在带有温度控制程序的烘箱中固化光刻胶。将温度从室温升至 170 °C 在 2 °C/分钟，并保持在 170 °C 30 分钟。关闭烘箱，于烘箱内自然冷却至室温。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>软光刻
		<ol>
			<li>将8.8 g液态聚二甲基硅氧烷（PDMS）预聚物倒入模具中，并在 65 °C，以及15分钟 80 °C液态PDMS预聚物由PDMS和固化剂组成（通常按10:1（w/w）比例混合）。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>打孔
		<ol>
			<li>使用直径为1.2 mm的钻头在通道起始处的PDMS复制件上打孔。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>密封
		<ol>
			<li>通过氧等离子体处理两层PDMS表面，将带有微通道的PDMS复制品与无图案的平坦PDMS层密封结合。 
			注意：芯片的整体制备过程大约需要72小时。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>RSF 纤维的制备
	<ol>
		<li>纺丝液的注射
		<ol>
			<li>将RSF纺丝液注入微通道中 2 µL/min 通过注射泵。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>环境调控
		<ol>
			<li>使用加湿器将相对湿度调节至40 ± 5 RH%或50 ± 5 RH%。在40 ± 5 RH%条件下，初生纤维的固化速度比50 ± 5 RH%时更快。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>RSF纤维的制备
		<ol>
			<li>用针尖接触微流控通道出口处的丝素蛋白（RSF）液滴，将RSF纤维牵引至空气中，然后以3 cm/s的速度通过10 cm的空气间隙将其卷绕到滚轮上（图1b).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>将RSF纤维置于密封干燥器中保存24 h。</li>
		<li>纤维后处理
		<ol>
			<li>将初生纤维以 0.9 mm/s 的速度拉伸 4 倍-1 在自制设备中，将纤维浸入80 vol%乙醇溶液中，然后保持拉伸后的纤维固定，继续在该溶液中浸泡1小时。经此处理后，纤维长度由最初的15 mm变为60 mm。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>准备样品以进行表征
		<ol>
			<li>将后处理的纤维固定在标距为10 mm的纸框上。测量所需纤维数量至少为20根，用于拉伸试验、扫描电镜（SEM）、傅里叶变换红外光谱（FTIR）和广角X射线散射（WAXS）。后拉伸纤维的直径范围为5至 10 µm. 图1 显示了纤维制备及WAXD表征的示意图。采用材料试验系统在(25 ± 2) °C 且相对湿度为 (45 ± 5)%。拉伸速率为 2 mm/min，标距长度为 1 cm。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 丝素蛋白纤维晶体结构的同步辐射表征
<ol>
	<li>同步辐射表征4,13,17
	<ol>
		<li>光束线调节
		<ol>
			<li>将X射线的波长和光斑尺寸分别调节至0.07746 nm和3 × 2 µm2。 
			注：本实验方案使用上海同步辐射设施的BL15U1光束线完成。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>X射线光斑定位
		<ol>
			<li>确定X射线光斑的位置。 
			注：X射线光斑的位置由同步辐射设施的实验室技术人员进行调节。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>标准样品测试：二氧化铈（CeO2）
		<ol>
			<li>测试标准样品CeO2粉末。通过表征CeO2粉末以计算圆心位置及样品到探测器的距离。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>样品制备
		<ol>
			<li>将RSF纤维平行固定在纸框上，标距为10 mm。将纸框粘贴在测试台上。 
			注：保持纤维处于水平状态。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>同步辐射广角X射线衍射（SR-WAXD）测试
		<ol>
			<li>打开快门
			<ol>
				<li>确认室内无人后关闭光束线站的门，打开X射线光源的快门。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>聚焦
			<ol>
				<li>轻微移动纤维直至聚焦。通过软件远程调节纤维在x、y、z方向的位置（图1c）。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>样品曝光
			<ol>
				<li>通过软件远程上下移动纤维，使其位于X射线光斑处。在软件中按下开始按钮，使纤维暴露于X射线光束线20秒（图1c）。</li>
			</ol>
			</li>
			<li>背景衍射
			<ol>
				<li>以20秒的曝光时间测试空气背景的衍射。通过软件远程将纤维移离X射线光斑。在软件中按下“开始”按钮，使X射线光束线暴露于“空气介质”20秒。</li>
			</ol>
			</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>SR-WAXD数据处理13
	<ol>
		<li>软件校准
		<ol>
			<li>使用FIT2D（V12.077）处理WAXD数据。利用CeO2粉末的衍射数据校准圆心位置和样品到探测器的距离。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>二维衍射图样
		<ol>
			<li>使用FIT2D（V12.077）从纤维衍射图样中扣除空气背景。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>结晶度与晶粒尺寸
		<ol>
			<li>对散射角2θ函数的衍射强度进行积分。使用自动峰分离软件（版本4.12）12对强度积分进行解卷积。结晶度（xc）通过以下关系式估算： 
			<img alt="手性方程 \(X_c = \frac{I_c}{I_c + I_a}\)，分析化学公式。" src="/files/ftp_upload/56271/56271eq1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="方程"> 
			，其中Ic为晶态峰积分强度之和，Ia为非晶晕的积分强度4,11。对WAXD图样的积分得到[200]、[020]、[002]衍射峰的峰宽。利用这些峰的半高全宽（FWHM），结合谢乐公式（Scherrer公式）4确定沿a、b、c轴方向的晶粒尺寸。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>晶粒取向的确定
		<ol>
			<li>根据(020)和(210)衍射峰的方位角积分计算晶粒和非晶相的取向11。晶体取向可依据Herman取向函数进行定量计算。此处，(020)和(210)峰均采用两个高斯函数拟合，较窄的峰对应晶态取向，较宽的峰对应取向性非晶物质13。本研究中，通过(002)峰的方位角积分半高全宽（FWHM）比较RSF纤维的晶粒取向。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Asakura, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Some+observations+on+the+structure+and+function+of+the+spinning+apparatus+in+the+silkworm+Bombyx+mori%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Some observations on the structure and function of the spinning apparatus in the silkworm Bombyx mori.</a> Biomacromolecules. 8 (1), 175-181 (2007).</li>
<li>Vollrath, F., Knight, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+crystalline+spinning+of+spider+silk%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Liquid crystalline spinning of spider silk.</a> Nature. 410 (6828), 541-548 (2001).</li>
<li>Zhou, G. Q., Shao, Z. Z., Knight, D. P., Yan, J. P., Chen, X. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/adma.200800582/abstract">Silk Fibers Extruded Artificially from Aqueous Solutions of Regenerated Bombyx mori Silk Fibroin are Tougher than their Natural Counterparts.</a> Adv Mater. 21 (3), 366-370 (2009).</li>
<li>Sun, M. J., Zhang, Y. P., Zhao, Y. M., Shao, H. L., Hu, X. C. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/content/articlelanding/2012/jm/c2jm32576d">The structure-property relationships of artificial silk fabricated by dry-spinning process.</a> J Mater Chem. 22 (35), 18372-18379 (2012).</li>
<li>Martel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silk+Fiber+Assembly+Studied+by+Synchrotron+Radiation+SAXS%2FWAXS+and+Raman+Spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Chem+Soc%22%5BJournal%5D)">Silk Fiber Assembly Studied by Synchrotron Radiation SAXS/WAXS and Raman Spectroscopy.</a> J Am Chem Soc. 130 (50), 17070-17074 (2008).</li>
<li>Rammensee, S., Slotta, U., Scheibel, T., Bausch, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+mechanism+of+recombinant+spider+silk+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22P+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Assembly mechanism of recombinant spider silk proteins.</a> P Natl Acad Sci USA. 105 (18), 6590-6595 (2008).</li>
<li>Kinahan, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tunable+silk%3A+using+microfluidics+to+fabricate+silk+fibers+with+controllable+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Tunable silk: using microfluidics to fabricate silk fibers with controllable properties.</a> Biomacromolecules. 12 (5), 1504-1511 (2011).</li>
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<li>Peng, Q. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+spider+silk+from+aqueous+solutions+via+a+bio-inspired+microfluidic+chip%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Recombinant spider silk from aqueous solutions via a bio-inspired microfluidic chip.</a> Sci Rep. 6, (2016).</li>
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<li>Sampath, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((X-ray+diffraction+study+of+nanocrystalline+and+amorphous+structure+within+major+and+minor+ampullate+dragline+spider+silks%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">X-ray diffraction study of nanocrystalline and amorphous structure within major and minor ampullate dragline spider silks.</a> Soft Matter. 8 (25), 6713-6722 (2012).</li>
<li>Martel, A., Burghammer, M., Davies, R. J., Riekel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermal+Behavior+of+Bombyx+mori+silk%3A+Evolution+of+crystalline+parameters%2C+molecular+structure%2C+and+mechanical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Thermal Behavior of Bombyx mori silk: Evolution of crystalline parameters, molecular structure, and mechanical properties.</a> Biomacromolecules. 8 (11), 3548-3556 (2007).</li>
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<li>Jin, Y., Hang, Y. C., Zhang, Y. P., Shao, H. L., Hu, X. C. <a target="_blank" href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1179/1432891714Z.000000000397">Role of Ca2+ on structures and properties of regenerated silk fibroin aqueous solutions and fibres.</a> Mater Res Innov. 18, 113-116 (2014).</li>
<li>Koh, L. D., et al. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/profile/Enyi_YE/publication/272199400_Structures_Mechanical_Properties_and_Applications_of_Silk_Fibroin_Materials/links/569c445708ae6169e5627d01.pdf">Structures, mechanical properties and applications of silk fibroin materials.</a> Prog Polym Sci. 46, 86-110 (2015).</li>
<li>McDonald, J. C., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly%28dimethylsiloxane%29+as+a+material+for+fabricating+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Accounts+Chem+Res%22%5BJournal%5D)">Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic devices.</a> Accounts Chem Res. 35 (7), 491-499 (2002).</li>
<li>Knight, D. P., Vollrath, F. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1689793/">Liquid crystals and flow elongation in a spider's silk production line.</a> P Roy Soc B-Biol Sci. 266 (1418), 519-523 (1999).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

在丝素蛋白（RSF）溶液透析过程中，pH值对后续的浓缩过程至关重要。如果去离子水的pH值低于6，RSF溶液在浓缩过程中更容易发生凝胶化。为防止凝胶化，需向RSF溶液中添加CaCl2，其添加浓度为每重量RSF加入1 mmol的CaCl2。
我们之前的研究已证明，可以通过微流控干法纺丝技术对丝素蛋白（RSF）水溶液进行纺丝8。此前微流控通道的几何结构采用简化的单级指数函数设计。而对于蜘蛛和家蚕，纺丝原液在形成纤维前，需经过两级指数衰减型纺丝管道进行牵伸1,20。本研究中，微流控通道的几何结构仿照家蚕纺丝管道的二级指数衰减函数进行设计1。微流控通道的宽度从初始的 2,065 µm 逐渐减小至末端的 265 µm，牵伸通道的长度为 21.5 mm。在之前的研究中，所获得的 RSF 纤维直径为 2 µm，因此必须使用一束 RSF 纤维进行...

蜘蛛和蚕能够在常温常压下从水性蛋白质溶液中产生优异的丝纤维。剪切流和拉伸流可在丝腺中诱导形成液晶结构1。近年来，人们高度关注模拟蜘蛛的纺丝过程，以制备高强度的人工纤维。然而，由于蜘蛛具有同类相食的习性，通过养殖蜘蛛无法高效且经济地大量生产蜘蛛丝蛋白。相比之下，通过养殖蚕可轻松获得大量蚕丝。此外，蚕与蜘蛛具有相似的纺丝过程和氨基酸组成。因此，许多研究人员选择蚕丝纤维蛋白作为替代材料，用于纺制人工动物丝。
蜘蛛和蚕通过其纺丝管将蛋白质溶液挤出，在空气中形成纤维。纺丝管内产生的高应力很可能使丝纤蛋白分子拉伸至更伸展的构象2。人工丝纤维已采用传统的湿法纺丝和干法纺丝工艺制备3,4，但这些方法未考虑纺丝管内产生的流体作用力。
首先，采用微流控方法研究了丝蛋白的组装过程5,6。随后，通过模拟剪切力和拉伸力，研究了再生丝素蛋白（RSF）的微流控制备过程7,8。利用微流控湿法纺丝可调控RSF纤维的杨氏模量和直径，但所制得纤维的拉伸强度低于100 MPa7。最终，研究人员成功采用微流控干法纺丝方法制备出高强度的RSF纤维，但纤维直径仅为2 µm8。最近，微流控湿法纺丝已成功应用于高强度重组蜘蛛丝纤维的制备。纺丝后在空气中牵伸可改善人工纤维的表面和内部缺陷9。
本研究介绍了用于再生丝素蛋白（RSF）纤维的改进型微流控纺丝工艺。该工艺旨在模拟蚕丝的纺丝过程，包括纺丝原液、剪切力以及干法纺丝过程。这种纺丝方法不仅能够制备高强度的人工蚕丝纤维，还可调节纤维的直径。首先，RSF纺丝原液在具有二阶指数衰减结构的仿生微通道中受到剪切和拉伸作用。其次，在微流控干法纺丝过程中，研究了相对湿度（RH）对纤维形貌和性能的影响10。与传统的纺丝喷丝板相比，我们的微流控系统具有高度仿生特性，能够在常温下通过干法或湿法纺丝从溶液中制备出高强度纤维。
由于同步辐射微聚焦X射线具有高分辨率、高亮度和高能量，可用于表征直径为几微米的单根纤维的微观结构4,11,12,13,14。本研究采用同步辐射广角X射线衍射（SR-WAXD）技术计算丝素蛋白（RSF）纤维的结晶度、晶粒尺寸和晶体取向。

<table><tbody><tr><td>&lt;em&gt;B. mori&lt;/em&gt; 蚕茧</td><td>中国浙江省桐乡市农户</td><td></td><td></td></tr><tr><td>碳酸钠，无水，99.8%</td><td>上海凌峰化学试剂有限公司，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>溴化锂，99.1%</td><td>上海中锂实业有限公司，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>氯化钙，无水，96.0%</td><td>上海凌峰化学试剂有限公司，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>乙醇，无水，99.7%</td><td>国药集团化学试剂有限公司，中国</td><td>10009218</td><td>分析纯</td></tr><tr><td>SU-8 光刻胶</td><td>MicroChem Corp.，美国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>显影液</td><td>MicroChem Corp.，美国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184</td><td>道康宁公司（Dow Corning），美国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>异丙醇</td><td>上海凌峰化学试剂有限公司，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>浓硫酸</td><td>平湖化学试剂厂，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>30 体积% 过氧化氢</td><td>上海金路化学试剂有限公司，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>丙酮</td><td>上海正兴化工试剂厂，中国</td><td></td><td>分析纯</td></tr><tr><td>氧气等离子体处理</td><td>DT-01，苏州欧米伽机电科技有限公司，中国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>注射泵</td><td>&amp;nbsp;KD Scientific，美国</td><td></td><td>KDS 200P</td></tr><tr><td>加湿器</td><td>SEN 电气</td><td></td><td></td></tr><tr><td>钻机</td><td>杭州博阳机械有限公司，中国</td><td></td><td>台式钻床 Z406c</td></tr><tr><td>材料试验系统</td><td>Instron，美国</td><td></td><td>型号：5565</td></tr><tr><td>PeakFit</td><td>Systat Software, Inc.，美国</td><td></td><td>版本 4.12</td></tr></tbody></table>

微流控干法纺丝及再生丝素蛋白纤维的表征

Microfluidic Dry-spinning and Characterization of Regenerated Silk Fibroin Fibers

本实验方案展示了一种模拟家蚕吐丝过程的方法。在天然吐丝过程中，收缩的丝道通过剪切力和拉伸力使丝蛋白变得致密且有序。本研究设计了一种仿生微流控通道，以模拟家蚕丝道的特定几何结构。将高浓度掺杂的再生丝素蛋白（RSF）纺丝液通过该微通道挤出，在常温常压下进行干法纺丝制备纤维。在后续处理过程中，初生纤维在乙醇水溶液中进行牵伸并储存。采用同步辐射广角X射线衍射（SR-WAXD）技术分析单根RSF纤维的微观结构，测试时将纤维固定于样品台上，使纤维轴方向垂直于X射线微束。根据WAXD数据计算纤维的结晶度、晶粒尺寸和晶体取向。二维WAXD图谱中赤道附近出现的衍射弧表明，经过后处理的RSF纤维具有较高的取向度。

采用微流控纺丝方法成功制备了高强度的再生丝素纤维（RSF）。拉伸后的 RSF 纤维 C44R40 的应力-应变曲线和 SEM 图像如图 2所示。拉伸测试中至少测量了 10 根纤维。应力-应变曲线根据纤维断裂应力和断裂应变的平均值进行选取。纤维的广角 X 射线衍射（WAXD）数据如图 3所示。根据 WAXD 数据计算了纤维的结晶度和晶粒取向。在样品命名中，使用 C 和 R 分别表示纺丝液中 RSF 的浓度和相对湿度。例如，在 40 ± 5% 相对湿度（RH）下，由 44 wt% RSF 纺丝液纺制并以 4 倍拉伸比进行后拉伸的纤维记为 C44R40。其他纤维根据相同命名规则分别记为 C44R50、C47R40 和 C47R50。
<img alt="脱胶过程、微流控芯片装置及用于材料研究的X射线纤维分析示意图。" class="xfig...

本文介绍了一种用于再生丝素蛋白单丝的微流控纺丝及其微观结构表征的实验方案。

该方案展示了一种模拟家蚕吐丝过程的方法。在天然吐丝过程中，收缩的吐丝管能够……

本实验的总体目标是利用微流控干法纺丝方法，观察相对湿度对再生丝素蛋白纤维结构和拉伸性能的影响。该方法有助于解答仿生纺丝领域中的关键问题，例如剪切力和干法纺丝过程。该技术的主要优势在于微流控通道的设计可模拟蚕的纺丝管结构。该方法可深入了解丝素蛋白的干法纺丝过程，也可用于重组蜘蛛丝的湿法纺丝过程。通常，初次接触该方法的研究人员会遇到一定困难。因为，制备纺丝液需要两周时间，同时也需要确保其具有良好的纺丝性能。该方法的可视化演示非常关键。因为，如果你缺乏经验，纺丝液将很难制备，而纺丝时间对成功制备也至关重要。首先将家蚕（Bombyx mori）蚕茧置于含有0.5%碳酸钠的水溶液中进行脱胶。将浸没的蚕茧在100°C条件下孵育30分钟。然后更换碳酸钠溶液，再次重复孵育一次。完成后，用去离子水清洗蚕丝以去除丝胶。将脱胶后的蚕茧蚕丝在空气中晾干，然后将其浸入9.0摩尔的溴化锂溶液中，质量比为1:10。在40摄氏度下孵育蚕丝2小时，直至蚕丝完全溶解。接下来，使用去离子水将再生丝素蛋白溶液在250毫升瓶中稀释1.5倍。离心该溶液，然后使用真空泵通过双层滤纸床（孔径20微米）过滤，以去除任何杂质。取250毫升过滤后的再生丝素蛋白溶液放入纤维素半透膜透析袋中，每个透析袋在10升反渗透去离子水中于5摄氏度下透析三天。透析后，使用强制气流将溶液在5摄氏度下浓缩至原始重量的20%。接着，向浓缩后的溶液中加入3摩尔的氯化钙水溶液，使钙离子的终浓度达到每克1.0毫摩尔。再次通过强制气流将再生丝素蛋白溶液浓缩至初始重量的44%。首先将载玻片放入浓硫酸与30%过氧化氢溶液按10:1比例配制的混合液中煮沸20分钟。处理完毕后，用去离子水清洗载玻片，再用高纯度氮气吹干。接着，将载玻片放入自制的涂覆装置中，使涂覆棒底面与载玻片上表面之间的间隙为100微米。用SU-8光刻胶填充间隙，然后以40.3 ×g的离心力旋涂光刻胶30秒，形成厚度约为85 µm的均匀薄膜。接着，将带有光刻胶的载玻片放入具有温度控制程序的烘箱中。以每分钟2 °C的升温速率从室温升至65 °C，并在65 °C下保持2分钟。然后，以每分钟2摄氏度的速率将载玻片从65摄氏度加热至95摄氏度，并在95摄氏度下保持15分钟。此时关闭烘箱，使载玻片在烘箱内自然冷却至室温。接着，将带有光刻胶的载玻片置于紫外光下，并在载玻片上方对准含有适当微通道结构的光掩模。将载玻片侧面暴露于紫外光下12秒。曝光后，将载玻片放回烘箱中，按之前条件加热。烘烤完成后，将光刻胶在显影液中进行超声清洗30秒。然后，交替使用异丙醇和显影液清洗载玻片，直至载玻片上无沉淀物残留。将光刻胶置于具有温度控制程序的烘箱中固化：以每分钟2摄氏度的速率从室温升至170摄氏度，于170摄氏度保持30分钟，随后关闭烘箱，使样品在烘箱内自然冷却至室温。接下来，将固化的 SU-8 模具放入铝盒中

microfluidic-dry-spinning-characterization-regenerated-silk-fibroin

Research

科研

JoVE Journal

Chemistry

化学

微流控干纺及再生丝素纤维的表征

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尽管蜘蛛丝具有优异的机械和生化特性，但无法通过传统方法大量采集这种材料。本文介绍了一种高效制备人造蜘蛛丝纤维的策略，这对于研究蜘蛛丝生成及其作为新一代生物材料应用的科研人员而言，是一项重要的工艺过程。...

实验室规模的合成蜘蛛丝生产

蜘蛛丝纤维具有卓越的力学性能。通过静电纺丝技术可将人工改造的Araneus diadematus Fibroin...

包含电纺重组蜘蛛丝蛋白无纺网的空气过滤装置

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基于丝素蛋白的自驱动微搅拌器的反应性喷墨打印及推进力分析

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通过将纳米复合材料定向且局部地渗入三维多孔微流控网络，可制备出具有三维（3D）微结构的复合梁。该制造方法具有灵活性，可使用不同的热固性材料和纳米填料，从而实现多种功能性的三维增强纳米复合宏观产品。...

通过微流控渗透法制备三维微结构纳米复合材料

故意设计的金属有机框架材料的合成、活化与表征具有挑战性，特别是当构筑单元不相容或热力学上不利于目标物相而有利于非期望多晶型时。本文描述了溶剂辅助配体交换、毛细管粉末X射线衍射及活化方法的应用 通过 超临界CO₂2...

功能化金属有机框架的合成与表征

本实验方案的目的是将干细胞归巢因子 SDF-1α 负载至硫酸葡聚糖-壳聚糖纳米颗粒中。对所得颗粒的粒径、Zeta 电位，以及其中 SDF-1α 的含量、活性和 体外...

SDF-1α-壳聚糖-硫酸葡聚糖纳米颗粒的制备与表征

本文描述了一种合成和表征带有超分子基团包覆胶体的实验方案。这些超分子胶体在紫外光照射下，通过激活表面锚定分子之间的氢键，从而引发自组装过程。...

超分子胶体的合成与表征

学习使用微流控干纺技术制备再生丝素纤维，并研究相对湿度对纤维结构与拉伸性能的影响。该方法模拟天然纺丝过程，为生物仿生材料开发提供重要参考。

微流控干法纺丝及再生丝素蛋白纤维的表征

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