Name: ATAC 基因组在原发性人类 T 淋巴细胞中的染色体全易接近染色质 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 8 s
Description: 了解ATAC-seq高通量测序技术，用于识别人类T淋巴细胞中的染色质可及性区域。该方法通过转座酶反应和计算分析，揭示基因组调控元件的位置，为表观基因组学研究提供高效工具。

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本工作由以色列科学基金会（资助号 748/14）、玛丽·居里整合资助（CIG）- FP7-PEOPLE-20013-CIG-618763 以及规划与预算委员会和以色列科学基金会资助的 I-CORE 项目（资助号 41/11）支持。

所有实验程序均经巴伊兰大学机构审查委员会批准，且实验方案遵循该委员会提供的指导方针。
1. 初始人CD4+细胞的纯化及向辅助性T细胞1（Th1）和Th2细胞的极化
注意：此处描述的实验流程从冻存的人外周血单个核细胞（PBMCs）开始。第一步是使用磁珠和分离柱分离CD4+细胞，通常可获得超过95%纯度的CD4+细胞。然而，该步骤可能因各实验室偏好的实验方案而有所不同。T细胞活化与极化方案经Jenner et al.（2009）18 的方法修改而来。从一千万个PBMCs中分离CD4+细胞，可获得400万至600万个CD4+细胞。将细胞分至两个培养瓶中，在Th1和Th2极化条件下培养，仅需一周即可分别获得300万至500万个Th1和Th2细胞。
注意：开始前将离心机冷却至 4 °C。
<ol>
	<li>在含有10 mL RPMI培养基（添加1%青霉素-链霉素、2 mM L-谷氨酰胺和10%热灭活胎牛血清）的50 mL离心管中解冻1 mL人外周血单个核细胞（PBMCs，107个细胞）。在500 × g条件下离心5分钟。弃去上清液，用无菌25 mL移液管将细胞重悬于15 mL添加物的RPMI培养基中。用无菌25 mL移液管将细胞转移至T75培养瓶中。</li>
	<li>将细胞置于加湿培养箱中过夜（37 °C，5% CO2）。</li>
	<li>用无菌25 mL移液管将悬浮细胞转移至50 mL离心管中。通过台盼蓝染色排除法测定细胞数量和活力。</li>
	<li>根据生产商说明书（见材料/设备表），使用CD4+微珠和分离柱通过阳性选择法从1000万个活的非贴壁PBMCs中分离CD4+细胞，并作如下修改：将107个PBMCs用30 µL CD4微珠在120 µL含0.5% BSA的PBS中进行标记。</li>
	<li>通过重组人IL-2（rhIL-2，10 ng/mL）、包被平板的抗CD3抗体（5 µg/mL）和可溶性抗CD28抗体（2 µg/mL）激活CD4+ T细胞，持续72小时。对于Th1极化，添加rhIL-12（20 ng/mL）和抗IL-4抗体（10 µg/mL）；对于Th2极化，添加rhIL-4（40 ng/mL）和抗IFN-γ抗体（10 µg/mL）。</li>
	<li>在rhIL-2（10 ng/mL）和相同极化细胞因子（Th1用rhIL-12，Th2用rhIL-4）存在下，继续培养细胞7天。</li>
</ol>
2. 细胞核分离
注意：ATAC-seq 实验需使用完整细胞核。裂解缓冲液中含 0.05% 辛基苯基聚乙二醇（见材料/设备表），已针对从原代人 Th1 和 Th2 细胞中分离细胞核进行优化。建议使用本实验室的试剂和细胞对此步骤进行优化。若去污剂不足导致细胞未充分裂解，残留过多完整细胞，将降低转座反应效率。细胞裂解效率通过台盼蓝染色阳性细胞（即细胞核）数量占细胞总数的比例来确定。 
注意：配制裂解缓冲液（10 mM Tris-HCl，pH 7.5，10 mM NaCl，3 mM MgCl2）。将配备摆动吊篮转子的离心机预冷至 4 °C。使用摆动吊篮离心机而非固定角转子离心机进行细胞沉淀，可减少细胞或细胞核的损失。弃去上清液时应小心移液，以避免细胞核或细胞的损失。
<ol>
	<li>使用前立即向冷裂解缓冲液中加入新鲜的壬基苯基聚乙二醇（终浓度为0.05%）和100倍浓度的蛋白酶抑制剂（终浓度为1倍）。将缓冲液保持在冰上。</li>
	<li>采用台盼蓝染色法计数T细胞，以确定其数量和活力。活力低于90%会导致非特异性消化增加。</li>
	<li>将0.5 × 106个T细胞（Th1或Th2）转移至1.5 mL微量离心管中，在4 °C下以500 × g离心5分钟。</li>
	<li>用1 mL预冷的磷酸盐缓冲液（PBS）重悬细胞沉淀，在4 °C下以500 × g离心5分钟。</li>
	<li>用1 mL冷裂解缓冲液（含壬基苯基聚乙二醇和蛋白酶抑制剂）重悬细胞沉淀。将离心管置于冰上，轻轻吹打以避免破坏细胞核。</li>
	<li>在微量离心管置于冰上的同时，迅速取10 µL样品，使用自动细胞计数仪进行细胞计数。此步骤不得超过五分钟，以避免损伤细胞核。裂解的细胞比例应至少达到80%。</li>
	<li>立即进行转座反应。将制备好的细胞核保持在冰上。</li>
</ol>
3. 转座反应
注意：在此步骤中，分离的细胞核与原核来源的 Tn5 转座酶（TDE1）在含有高通量测序接头的条件下进行孵育。高活性 Tn5 能够同时将 DNA 片段化，并将接头连接到基因组的开放区域（即标签化过程）。细胞核与 Tn5 转座酶的比例对于优先切割开放染色质区域至关重要。本方案针对 100,000 个细胞核在 100 μL 反应体系中进行了优化，但反应体系可按比例缩小。
<ol>
	<li>将热振荡仪的温度设置为 37 °C。</li>
	<li>将 100,000 个细胞核转移至 1.5 mL 微量离心管中。</li>
	<li>在 4 °C 条件下以 500 × g 离心 10 分钟，并小心去除上清液。</li>
	<li>按照 表 1 中的规定，向细胞核中加入转座反应组分。</li>
	<li>通过轻柔吹打重悬沉淀。</li>
	<li>在热振荡仪中于 37 °C 孵育转座反应体系 30 分钟，同时轻柔振荡（500 rpm）。 
	注意：DNA 纯化步骤使用固相可逆固定化磁珠19（见 材料/设备表）或 PCR 纯化柱进行。纯化结束后，用 20 µL 的 10 mM Tris-HCl（pH 8.0）洗脱 DNA 片段。洗脱缓冲液中应避免含有 EDTA。</li>
</ol>
4. ATAC-seq 文库的 PCR 富集
注意：此步骤旨在扩增ATAC-seq文库 即， 插入接头的DNA片段。为了能够在同一高通量测序通道中混合多个ATAC-seq文库（&#34;多重检测&#34;使用未加索引的引物1（Ad1_noMx）1 对所有样本使用相同的引物2，并使用不同索引（带条形码）的引物2（Ad 2.1 - 2.24）1 每个样本的引物序列见补充材料 材料/设备清单.
<ol>
	<li>初始PCR扩增 
	注意：引物1（Ad1_noMx）和引物2的工作浓度为25 µM。所有引物均从100 µM的原始储备液稀释至25 µM。在所有PCR反应中，使用引物1（Ad1_noMx）以及一条带索引的引物2。
	<ol>
		<li>按照表2中指定的组分，将其加入无菌PCR管中。</li>
		<li>将PCR管放入热循环仪中，并按照表3中详述的循环条件进行PCR扩增。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>确定额外扩增循环次数 
	注意：额外PCR循环次数应足以产生足够量的文库片段用于成功的下一代测序运行，同时应尽量减少以避免GC含量和片段大小偏差20。确定最佳文库片段扩增所需PCR循环次数（N）的方法是定量PCR（qPCR）。
	<ol>
		<li>将引物1（Ad1_noMx）和引物2（用于初始文库扩增）从25 µM稀释至6.25 µM。</li>
		<li>按照表4中所述，将各组分加入光学PCR管或PCR板中。</li>
		<li>将样品放入qPCR仪中，并按照表5中指定的条件进行循环反应。</li>
		<li>为估算所需的额外扩增循环次数（N），以循环数为横轴，相对荧光强度（RFU）为纵轴作图。</li>
		<li>所需额外扩增循环次数（N）为qPCR反应达到平台期时循环数的1/3。图2展示了三个ATAC-seq文库的示例，其平台期出现在约2,350相对荧光单位（RFU，粗绿色线）。当扩增产物达到最大值的三分之一（783 RFU，纵轴标记值）时所对应的循环数，其中两个文库为8个循环（红色和蓝色扩增曲线），第三个文库为9个循环（粉色曲线）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>最终PCR扩增
	<ol>
		<li>对剩余的45 µL PCR反应产物进行扩增。将步骤4.1.2中获得的含有扩增反应液的PCR管放入热循环仪中，运行表6中描述的PCR程序。使用先前确定的（步骤4.2.5）扩增循环次数（N）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. ATAC-Seq 文库的片段大小选择
注意：根据我们的经验，对扩增后的ATAC-seq文库进行片段大小选择可改善下一代测序结果，因为它能从最终的ATAC-seq文库中去除高分子量的文库片段。 
注意：使用前将磁珠在室温下放置30分钟，使其恢复至室温。 
使用无核酸酶的水新鲜配制70%乙醇。
<ol>
	<li>通过混匀重悬磁珠。</li>
	<li>向ATAC-seq文库（步骤4.3.1中获得）中加入无核酸酶水，定容至100 µL。</li>
	<li>向100 µL扩增后的文库中加入50 µL（0.5倍体积）重悬的DNA结合磁珠。用移液器吹打至少10次以混匀。室温孵育5分钟。如有必要，短暂离心微管。</li>
	<li>将管置于合适的磁力架上2分钟，使磁珠与上清液分离。2分钟后，将上清液转移至新的微管中。</li>
	<li>用移液器测量上清液体积，并加入0.7倍体积的磁珠。用移液器吹打至少10次以混匀。</li>
	<li>室温孵育5分钟，然后置于磁力架上2分钟。</li>
	<li>孵育2分钟后，弃去上清液。在管仍置于磁力架上的情况下，加入200 µL新鲜配制的70%乙醇洗涤磁珠。</li>
	<li>将微管保留在磁力架上30秒，然后弃去乙醇。重复步骤5.7进行最后两次乙醇洗涤。</li>
	<li>彻底去除残留乙醇，在磁力架上让磁珠空气干燥5分钟。如有必要，短暂离心微管。用P10移液器吸头去除乙醇残留痕迹。</li>
	<li>将微管从磁力架上取下，加入22 µL 10 mM Tris-HCl（pH 8.0）。切勿使用含EDTA的缓冲液洗脱ATAC-seq文库。</li>
	<li>室温孵育2分钟，然后将管置于磁力架上。</li>
	<li>待溶液澄清后，将20 µL洗脱的文库转移至新的无菌微管中。</li>
	<li>将经片段大小筛选的ATAC-seq文库储存于-20 °C。</li>
</ol>
6. ATAC-Seq 文库的质量分析
<ol>
	<li>通过实时 PCR 验证 ATAC-seq 文库的质量 
	注意：在进行下一代测序之前，评估 ATAC-seq 文库的信噪比非常重要。这可以通过定量 PCR（qPCR）测定来自可及和不可及位点的 DNA 片段相对量来实现。不可及位点（阴性对照，chr1:48,137,860-48,137,934 和 chr1:193,093,748-193,093,827）由引物对 1 和 2 扩增；可及位点（阳性对照，chr19:30,336,166-30,336,253 和 chr19:11546154-11546237）由引物对 3 和 4 扩增。阳性与阴性位点的定义基于人类 CD4+ 细胞的染色质可及性（DHS-seq）图谱（ENCODE 编号 ENCSR000EQE 和 ENCSR000EQG）。阴性引物 1 位于一个大的异染色质基因间区域（距离 TRADB2 230 kb，距离 FOXD2 88 kb）。阴性对照区域 2 位于 CDC73 基因的第一个内含子内。阳性引物对 3 位于 Cyclin E（CCNE1）基因下游的开放染色质区域，而阳性引物对 4 位于蛋白激酶 C 底物 80K-H（PRKCSH）基因启动子中心区域。重要的是，这些对照位点在 ENCODE 项目中其他人类细胞类型中也表现出相似的可及性模式3，表明它们可用于监测广泛人类细胞类型的 ATAC-seq 文库。所有引物对的扩增效率和特异性均通过在基因组 DNA（来自人 Th 细胞）系列稀释样本上进行 qPCR 及扩增产物的熔解曲线分析加以验证。
	<ol>
		<li>使用市售试剂盒提取基因组 DNA（参见 材料/设备表）。</li>
		<li>将扩增后的 ATAC-seq 文库稀释 10 倍（1 µL 文库 + 9 µL 无核酸酶水），并将基因组 DNA 稀释至约 5 ng/µL。</li>
		<li>为每对阳性与阴性对照引物配制反应体系（表 7），注意每个反应需设三个重复。</li>
		<li>按照 qPCR 预混液供应商推荐的程序，在 qPCR 热循环仪中孵育。</li>
		<li>使用 qPCR 仪器配套软件分析结果（参见 材料/设备表）。选择基因组 DNA 作为对照样本。所得数值代表可及区域（由阳性对照引物扩增）的富集程度。示例见 表 8。 
		注意：文库平均大小与浓度的估算：根据制造商说明，使用高灵敏度自动电泳系统测定 ATAC-seq 文库中 DNA 片段的大小分布。建议使用 dsDNA 高灵敏度试剂盒在荧光计上测定样本浓度，并至少使用每个 DNA 样本 2 µL。 
		注意：下一代测序——在文库多重化之前，使用以下公式计算每个 ATAC-seq 文库的摩尔浓度：(ng/µL × 106)/(660 × 文库片段平均长度)。为充分评估人类样本的开放染色质区域，每个 ATAC-seq 文库应达到 &#62; 3000 万条测序读长。若需初步判断文库是否适用于 NGS 测序，可先设定目标为约 1000 万条读长（在快速运行模式下的 DNA 测序仪中占测序通道的 5%）。请注意，若要推断核小体定位，需进行成对末端测序1。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
7. 下一代测序结果的分析
<ol>
	<li>通过分别检查每个文库的 FastQC 文件来评估测序读段的质量。</li>
	<li>在 Unix/Linux 环境中使用 Bowtie21 软件将读段比对至人类参考基因组（hg19 组装版本）。命令为 'bowtie -m 1 -q -S 基因组目录 reads.fastq output_aligned.sam'。其中“基因组目录”指存储 Bowtie 基因组索引的文件夹。参数 -m 1 表示不允许读段比对到基因组中的多个位点，-q 表示输入文件应为 fastq 格式，-S 表示输出为 SAM 格式。</li>
	<li>在 Unix/Linux 环境中使用 SAMtools22 的 rmdup 选项去除重复读段。命令为 'samtools view -S output_aligned.sam -b | samtools sort -o - output_aligned &#62; output_aligned.bam'， 
	samtools rmdup -s output_aligned.bam output_aligned_rmdup.bam'。第一条命令 view 将 SAM 格式转换为 BAM 格式，然后进行排序。rmdup 选项随后应用于排序后的 BAM 文件。可选地，可按照原始 ATAC-seq 论文1 中所述方法对转座子插入位点进行读段校正。此操作在 Unix/Linux 环境中使用 BEDtools 命令23 实现。命令为 'bamToBed -i output_aligned_rmdup.bam &#62; output_aligned_rmdup.bed'，'shiftBed -i output_aligned_rmdup.bed -p 4 -m -5 -g 基因组 &#62; output_aligned_rmdup_adjusted.bed'。第一条命令 bamToBed 将 BAM 格式转换为 BED 格式，以便后续使用 shiftBed 命令。基因组文件是一个以制表符分隔的文件，包含基因组中每条染色体的长度，该文件通常存放于 BEDtools 目录中。</li>
	<li>在经位移校正的 BED 文件上，于 Unix/Linux 环境中使用基于模型的 ChIP-seq 分析软件 MACS224 进行峰呼叫（peak calling），参数设置如下：--nomodel --extsize 75 --shift -30。这些参数用于调整读段，使转座子插入位点位于每个测序读段的中心。</li>
</ol>

<ol><li>Buenrostro, J. D., Giresi, P. G., Zaba, L. C., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transposition+of+native+chromatin+for+fast+and+sensitive+epigenomic+profiling+of+open+chromatin%2C+DNA-binding+proteins+and+nucleosome+position%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position.</a> Nat Methods. 10 (12), 1213-1218 (2013).</li>
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</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

本文所述的ATAC-seq方案已成功用于分析原代细胞（人Th1、Th2细胞和B细胞）以及培养细胞系（MCF10A人乳腺癌细胞和U261胶质母细胞瘤细胞）中的可及染色质。将ATAC-seq应用于其他细胞类型时，可能需要对方案进行一定优化，尤其是在裂解步骤中。若非离子型去污剂浓度过高，则可能导致线粒体DNA污染比例升高。通过降低裂解缓冲液中的去污剂浓度，可在不减少细胞核得率的前提下降低此类污染。根据我们的经验，使用含0.05%去污剂的裂解缓冲液可获得最满意的结果。此外，采用水平转子而非固定角转子离心细胞核，可将离心力降低至500 ×g，从而减少沉淀中线粒体的含量。研究人员也可尝试其他类型的去污剂，例如毛地黄皂苷17。然而，即使裂解条件已优化，线粒体DNA污染仍不可避免。为彻底去除线粒体DNA，可使用CRISPR/Cas9系统15。在此方法中，ATAC-seq文库与靶向线粒体DNA的sgRNA及Cas9核酸酶共同孵育，以消化线粒体DNA15。
本...

ATAC-seq1,2 是一种稳健的方法，可用于鉴定调控性3开放染色质区域及核小体定位。该信息可用于推断转录因子的位置、身份及其活性。该方法在测量染色质结构定量变化方面的高灵敏度，使其可用于研究染色质因子（包括染色质重塑因子和修饰因子）的活性，以及RNA聚合酶II1的转录活性。因此，ATAC-seq为解析任何目标细胞类型中转录调控机制提供了一种强大且无偏倚的方法。本文描述了ATAC-seq在人原代Th1和Th2细胞中的应用。
在ATAC-seq中，携带下一代测序（NGS）接头的超活性Tn5转座酶将DNA片段化与接头标记DNA两个步骤耦合在一起即，该 &#34;转座与片段化（tagmentation）&#34; 过程1PCR扩增后，所获得的DNA文库即可用于下一代测序（图1通过分析ATAC-seq测序读段在局部区域的富集情况，可检测染色质可及性优先的标签化（tagmentation）现象。
与其他检测染色质可及性和核小体定位的方法（如DNase-seq4、FAIRE-seq5和MNase-seq6）相比，ATAC-seq具有实验流程短、起始材料需求量少的优势，因此已被广泛应用于多种生物体系，包括人类原代细胞1,7和临床样本8，以及单细胞生物9、植物10、果蝇11和多种哺乳动物12。
通过分析转录因子结合序列基序的富集情况，或将ATAC-seq与染色质免疫沉淀（ChIP）结合高通量DNA测序（ChIP-seq）技术联用，可揭示结合在可及位点上的转录因子的身份。该方法已成功用于鉴定在小鼠造血过程中起重要作用的谱系特异性转录因子13。由于ATAC-seq具有无偏性和全基因组覆盖的特点，因此可用于研究那些缺乏ChIP分析所需试剂（如特异性抗体）的生物体中的基因调控。例如，通过比较人类和黑猩猩颅神经嵴细胞的研究，发现了cis-调控区域的进化差异14；在小鼠早期胚胎发育过程中识别出调控元件的发育动态变化15；在单细胞生物C. owzarzaki的生活周期中观察到调控图景的变化9；以及跨20种哺乳动物物种的启动子和增强子的演化规律12。
ATAC-seq 还被用于测量单细胞中的染色质可及性，从而揭示细胞群体内的异质性，而这种异质性通常在全基因组研究中难以发现7,16。此外，ATAC-seq 还可用于研究在样本稀少的疾病状态下DNA调控区域发生的变化。例如，ATAC-seq 可用于研究急性髓系白血病（AML）发生过程中调控图景的变化17，或 Ras 驱动的肿瘤发生过程11。

<table><tbody><tr><td>50 mL 离心管</td><td>Lumitron</td><td>LUM-CFT011500-P</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>微量离心管</td><td>Axygen Inc</td><td>MCT-175-C</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>25 mL 刻度吸管</td><td>Corning Costar</td><td>4489</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>细胞培养瓶</td><td>Lumitron</td><td>LUM-TCF-012-250-P</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>Countes 自动细胞计数仪</td><td>Invitrogen</td><td>C10227</td><td></td></tr><tr><td>NucleoSpin 组织提取试剂盒</td><td>MACHEREY-NAGEL</td><td>740952.5</td><td></td></tr><tr><td>外周血单个核细胞&amp;nbsp;(PBMC)</td><td>ATCC</td><td>&amp;nbsp;PCS&amp;shy;800&amp;shy;011</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>RPMI 1640 培养基</td><td>Biological Industries</td><td>01-103-1A</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>L-谷氨酰胺溶液 (200 mM)</td><td>Biological Industries</td><td>03-020-1B</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>青霉素-链霉素双抗溶液</td><td>Biological Industries</td><td>03-031-1B</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>胎牛血清 (FBS)，&amp;nbsp;热灭活，欧洲级</td><td>Biological Industries</td><td>04-127-1</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>MACS CD4 磁珠，人源</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-045-101</td><td></td></tr><tr><td>MACS MS 分离柱</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-201</td><td></td></tr><tr><td>抗人 CD4 FITC 抗体</td><td>Biogems</td><td>06121-50</td><td></td></tr><tr><td>小鼠 IgG1 同型对照 FITC 抗体</td><td>Biogems</td><td>44212-50</td><td></td></tr><tr><td>抗人 CD3 抗体 (OKT3)</td><td>Tonbo biosciences</td><td>40-0037</td><td></td></tr><tr><td>抗人 CD28 SAFIRE 纯化抗体</td><td>Biogems</td><td>10311-25</td><td></td></tr><tr><td>重组人 IL2</td><td>Peprotech</td><td>200-02</td><td></td></tr><tr><td>重组人 IL4</td><td>Peprotech</td><td>200-04</td><td></td></tr><tr><td>重组人 IL12 p70</td><td>Peprotech</td><td>200-12</td><td></td></tr><tr><td>体内应用级抗人 IL-4 抗体 (MP4-25D2)</td><td>Tonbo</td><td>40-7048</td><td></td></tr><tr><td>LEAF&amp;nbsp;纯化抗人 IFN-&amp;gamma; 抗体</td><td>BioLegend</td><td>506513</td><td></td></tr><tr><td>氯化钠 (NaCl)，分析纯</td><td>Carlo Erba</td><td>479687</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>氯化镁六水合物，分子生物学级</td><td>Calbiochem</td><td>442611</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>MP Biomedicals</td><td>800682</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>Tris，超纯，纯度 99.9%</td><td>MP Biomedicals</td><td>819620</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>NP-40 替代物（壬基苯基聚乙二醇）</td><td>Calbiochem</td><td>492016</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>蛋白酶抑制剂</td><td>Sigma</td><td>P2714</td><td>该蛋白酶抑制剂混合物为粉末状。配制成 100 倍溶液时，用 1 mL 分子生物学级水溶解。</td></tr><tr><td>磁性固相逆转固定化磁珠：AMPure XP 磁珠</td><td>Beckman</td><td>63881</td><td></td></tr><tr><td>PCR 纯化试剂盒</td><td>HyLabs</td><td>EX-GP200</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>Nextera DNA 文库制备试剂盒（TDE1 转座酶和 TD 缓冲液）</td><td>Illumina</td><td>FC-121-1030</td><td></td></tr><tr><td>NEBNext 高保真 2 x PCR 预混液</td><td>New England BioLabs</td><td>M0541</td><td></td></tr><tr><td>NEBNext Q5 热启动高保真 PCR 预混液</td><td>New England BioLabs</td><td>M0543</td><td></td></tr><tr><td>SYBR Green I&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>S7585</td><td></td></tr><tr><td>&amp;nbsp;CFX Connect 实时荧光定量 PCR&amp;nbsp;检测&amp;nbsp;系统</td><td>Bio-rad</td><td>185-5200</td><td>可使用其他供应商的产品。必须具备适用于微量离心管的转子。</td></tr><tr><td>CFX Manager 软件</td><td>Bio-rad</td><td>1845000</td><td></td></tr><tr><td>qPCR 预混液：iTaq 通用 SYBR Green 超混合液</td><td>Bio-rad</td><td>172-5124</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>Qubit 2.0 荧光计</td><td>Invitrogen</td><td>Q32866</td><td></td></tr><tr><td>Qubit dsDNA HS 检测试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>Q32854</td><td></td></tr><tr><td>微量离心管用磁力架</td><td>Invitrogen</td><td>12321D</td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>带 15 mL 离心管和微量离心管转子的制冷摆动转子离心机</td><td>Thermo Scientific</td><td>75004527</td><td>可使用其他供应商的产品。必须具备适用于微量离心管的转子。</td></tr><tr><td>恒温混匀仪</td><td>MRC</td><td></td><td>可使用其他供应商的产品。</td></tr><tr><td>High Sensitivity D1000 ScreenTape</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5584</td><td></td></tr><tr><td>High Sensitivity D1000 试剂</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-5585</td><td></td></tr><tr><td>4200 TapeStation 系统</td><td>Agilent Technologies</td><td>G2991AA</td><td>基于胶带的电泳平台&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>High Sensitivity DNA 试剂盒</td><td>Agilent Technologies</td><td>5067-4626</td><td>用于高灵敏度 TapeStation 分析的试剂</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>引物名称及序列</td><td>公司</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ad1_noMX: 5'-AATGATACGGCGACCACCGAGA&lt;br/&gt; TCTACACTCGTCGGCAGCGTC&lt;br/&gt; AGATGTG-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad1-noMx: 5'-P5 序列-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.1_TAAGGCGA: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAG&lt;br/&gt; AT[TCGCCTTA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.1_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.2_CGTACTAG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAG&lt;br/&gt; AT[CTAGTACG]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.2_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.3_AGGCAGAA: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[TTCTGCCT]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.3_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.4_TCCTGAGC: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAG&lt;br/&gt; AT[GCTCAGGA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.4_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.5_GGACTCCT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[AGGAGTCC]GTCTCGTGGG&lt;br/&gt; CTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.5_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.6_TAGGCATG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[CATGCCTA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.6_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.7_CTCTCTAC: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[GTAGAGAG]GTCTCGTGGG&lt;br/&gt; CTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.7_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.8_CAGAGAGG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[CCTCTCTG]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.8_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.9_GCTACGCT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[AGCGTAGC]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.9_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.10_CGAGGCTG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACG&lt;br/&gt; AGAT[CAGCCTCG]GTCTCGTGG&lt;br/&gt; GCTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.10_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.11_AAGAGGCA: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACG&lt;br/&gt; AGAT[TGCCTCTT]GTCTCGTGGG&lt;br/&gt; CTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.11_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.12_GTAGAGGA: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACG&lt;br/&gt; AGAT[TCCTCTAC]GTCTCGTGGG&lt;br/&gt; CTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.12_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.13_GTCGTGAT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[ATCACGAC]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.13_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.14_ACCACTGT: 5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[ACAGTGGT]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.14_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.15_TGGATCTG: 5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[CAGATCCA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.15_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.16_CCGTTTGT: 5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[ACAAACGG]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.16_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;Ad2.17_TGCTGGGT: 5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[ACCCAGCA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.17_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;Ad2.18_GAGGGGTT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[AACCCCTC]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.18_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.19_AGGTTGGG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[CCCAACCT]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.19_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;Ad2.20_GTGTGGTG: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[CACCACAC]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.20_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>&amp;nbsp;Ad2.21_TGGGTTTC: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[GAAACCCA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt; TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.21_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.22_TGGTCACA: 5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[TGTGACCA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt;TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.22_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.23_TTGACCCT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[AGGGTCAA]GTCTCGTGGGC&lt;br/&gt;TCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.23_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td>Ad2.24_CCACTCCT: 5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGA&lt;br/&gt; GAT[AGGAGTGG]GTCTCGTGGG&lt;br/&gt;CTCGGAGATGT-3'</td><td>IDT</td><td></td><td>Ad2.24_预期索引序列读取：5'-P7 序列-[索引序列]-转座酶序列-3'</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>F1: 5'-CCTTTTTATTTGCCCATACACTC-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>R1: 5'-CCCAGATAGAAAGTTGGAGAGG-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>F2: 5'-TTGAGGGATGCCATAACAGTC-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>R2: 5'-CTGCTGAACAACATCCTTCAC-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>F3: 5'-GGTTTGCAGGTTGCGTTG-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>R3: 5'-AGAGGAATCTGGGAGTGACG-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>F4: 5'-TGCTCATTCCGTTTCCCTAC-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>R4: 5'-AGCCGGAAAGAAAGTTCCTG-3'</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

通过atac-seq技术绘制原代人t淋巴细胞全基因组染色质可及性图谱

Mapping Genome-wide Accessible Chromatin in Primary Human T Lymphocytes by ATAC-Seq

利用高通量测序的转座酶可及性染色质分析（ATAC-seq）是一种用于鉴定染色质开放（可及）区域的方法。这些区域代表调控性DNA元件（例如启动子、增强子、基因座控制区、绝缘子）结合的位点。绘制可及染色质图谱是全基因组范围内识别活性调控元件的有力方法。该信息可作为一种无偏倚的手段，用于发现调控基因表达程序的相关转录因子网络及染色质结构机制。ATAC-seq 是一种稳健且灵敏的技术，可替代 DNase I 超敏感性分析结合下一代测序（DNase-seq）和甲醛辅助分离调控元件（FAIRE-seq），用于全基因组染色质可及性分析，也可替代微球菌核酸酶敏感位点测序（MNase-seq）以确定核小体定位。本文提供了一种针对人类原代免疫细胞优化的详细 ATAC-seq 实验方案 即 CD4+ 淋巴细胞（辅助性T细胞1（Th1）和Th2细胞）。本综合性实验方案从细胞收获开始，详细描述染色质标签化（tagmentation）的分子生物学操作、下一代测序的样本制备流程，并包含用于解析结果的计算分析方法与注意事项。此外，为节省时间和成本，我们在测序前引入了质量控制步骤，以评估ATAC-seq文库的质量。重要的是，本方案所阐述的原理可适用于其他人源免疫与非免疫原代细胞及细胞系。这些操作指南对于不熟悉下一代测序技术的实验室也具有实用价值。

本实验方案的最终产物是通常浓度为 3 - 20 ng/µL 的 ATAC-seq 文库。在用于 DNA 完整性分析的系统上检测时（见材料/设备表），文库呈现梯状条带2（图 3A）。DNA 片段的平均长度通常约为 450 - 530 bp。
在进行下一代测序之前，对ATAC-seq文库进行适当的质量控制对于节省时间和成本至关重要。我们认为，当阳性对照相对于阴性对照的富集倍数分别超过25倍和75倍（引物对3和4）时，并且文库呈现出前述的核小体阶梯状条带模式，则该文库适用于下一代测序（NGS）（图3B）。在分析qPCR数据时，我们还需确认以基因组DNA为模板的反应中，阴性对照和阳性对照引物的Cq值相近，并且在不同实验中，以ATAC-seq DNA片段为模板的反...

转座酶可及性染色质测序（ATAC-seq）是一种全基因组范围检测染色质可及性的方法。本方案为针对人淋巴细胞（Th1/Th2）优化的逐步ATAC-seq实验流程，涵盖从分子实验到最终计算分析的完整步骤。该方案适用于无下一代测序方法经验的研究人员。

通过ATAC-Seq技术绘制原代人T淋巴细胞全基因组染色质可及性图谱

利用高通量测序的转座酶可及性染色质检测（ATAC-seq）是一种用于鉴定开放（可及）染色质区域的方法……

该高通量转座酶方法的总体目标是鉴定人类基因组中可接近的染色质区域。该方法有助于回答表观基因组学领域的关键问题，例如调控元件在全基因组范围内的定位。该技术的主要优势在于其稳健性强、实验周期相对较短，且与DNase-seq或FAIRE-seq等其他染色质可及性检测方法相比，所需起始材料更少。尽管该方法可揭示人类T淋巴细胞的调控图谱，但也适用于其他系统，例如其他人原代细胞、癌细胞、人类临床样本以及其他哺乳动物和生物体的细胞。将一毫升含一千万个人类外周血单个核细胞（PBMCs）的冻存样本解冻，并转移至含有十毫升添加补充物的RPMI培养基的50毫升离心管中。随后，在4°C条件下以500 × g离心五分钟。接下来，弃去上清液，并将细胞重悬于15毫升添加了补加物的RPMI培养基中。然后，将细胞转移至T-75培养瓶中，在加湿条件下过夜培养。次日，用无菌的25毫升移液管将悬浮细胞转移至50毫升离心管中。然后，使用台盼蓝排斥法计数活细胞。接着，利用磁珠分离柱从1000万个活的、非贴壁的外周血单个核细胞（PBMCs）中分离CD4阳性细胞。细胞分离后，根据文本方案在Th1和Th2极化条件下接种并激活T细胞，然后分离其细胞核。首先，配制新鲜的裂解缓冲液，并将其置于冰上保持低温。同时，为转座反应做好准备，将温控振荡器预热至37摄氏度。接着，将五十万个T细胞加入1.5毫升微量离心管中，在4摄氏度下以500 × g离心5分钟。接着，用一毫升冷的 PBS 洗涤细胞，并重复离心步骤，但此次将细胞悬浮于一毫升冷的裂解缓冲液中。通过轻柔吹打混匀细胞，以防止细胞核过度破坏。然后，迅速取 10 微升等分试样，以观察细胞裂解的比例。务必保持细胞处于低温环境并快速操作。在五分钟内开始转座反应。首先，将100,000个细胞核转移至一个1.5毫升的微量离心管中，在低温离心机中以500 ×g离心10分钟。然后，轻轻吸去上清液。接着，向细胞核中加入转座反应组分。随后，用移液枪轻轻吹打重悬细胞核，并在500 RMP的恒温振荡器中孵育30分钟，以完成转座反应。接下来，进行DNA纯化步骤，并将DNA片段洗脱于20微升Tris盐酸溶液中。然后，通过PCR对ATAC-测序文库进行初步扩增。随后，利用定量PCR评估最终扩增所需的额外循环次数。根据测定结果，确定ATAC-测序文库最终PCR扩增所需的循环数，然后进行最终扩增。优化DNA文库片段的大小有助于提高下一代测序的效果。首先，将磁珠升温至室温，并用无核酸酶的水配制新鲜的70%乙醇。接着，向ATAC-测序文库中加入无核酸酶的水，使总体积达到100 µL。然后，加入50 µL重悬的DNA结合磁珠。将珠子用移液器至少吹打10次混入DNA中，静置5分钟。若管壁或管盖上有珠子液滴粘附，可短暂离心管子。随后将样品置于磁力架上2分钟，然后将上清液转移至新的微量离心管中。测量收集物的体积，并加入其体积70%的磁珠悬浮液。像之前一样混匀磁珠，室温孵育5分钟后再进行后续操作。然后将磁珠置于磁力架上分离2分钟，弃去上清液。将珠子仍置于磁铁上时，加入200 µL 70%乙醇。静置30秒后弃去乙醇，并重复乙醇洗涤一次。最后彻底去除残留的乙醇，在磁铁上让珠子空气干燥5分钟，完成洗涤步骤。如有必要，短暂离心管子，并用10微升移液器吸除任何可见的乙醇。现在将管子从磁铁上取下，加入22微升三羟甲基氨基甲烷盐酸盐（Tris hydrochloride）。两分钟后，将管子放回磁力架上，静置使溶液澄清。然后，收集含有已制备文库的20微升洗脱液，并在-20摄氏度下保存。该方案所获得的ATAC-测序文库浓度通常为每微升3至20纳克。在DNA完整性分析系统中检测时，其呈现梯状条带特征。除上述指标外，另一项重要的质量控制是阳性对照的富集情况。相对于阴性对照，引物对三的富集倍数应至少达到25倍，引物对四的富集倍数应至少达到75倍。在初始获得一千万条读长后，若样本在FastQC报告文件中的所有关键参数均通过，且峰识别（peak calling）获得1,000至2,000个峰，则可对文库进行更深的测序，使读长总数超过三千万条。在符合质量标准的文库中，仅有6%至20%的测序读段比对到线粒体基因组。其余唯一的读段比对到参考人基因组，其中7%至12%位于ATAC-测序峰区域内。观看本视频后，您应能够充分理解如何构建ATAC-seq文库、提交并完成高通量测序，以及分析所获得的数据。一旦掌握，ATAC-seq文库构建可在一到两个工作日内完成。在尝试该实验流程时，需注意可能需要首先优化某些步骤，例如细胞数量以及细胞核分离步骤中裂解缓冲液的组成。在完成本实验流程后，还可进一步开展染色质免疫沉淀等其他方法，以回答更多科学问题，例如在所研究的样本中，哪些转录因子会结合到开放的染色质区域？

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Research

科研

JoVE Journal

Genetics

遗传学

ATAC 基因组在原发性人类 T 淋巴细胞中的染色体全易接近染色质

染色质免疫沉淀与超深度高通量测序（ChIP-seq）相结合，可识别并定位特定组织或细胞系中的蛋白质-DNA 相互作用。本文以转录因子 TCF7L2 为例，概述了如何制备高质量的 ChIP...

高质量染色质免疫沉淀DNA模板的制备用于高通量测序（ChIP-seq）

我们描述了一种串联染色质免疫沉淀测序（tChIP-Seq）的逐步实验方案，该方法可用于分析特定细胞类型的全基因组组蛋白修饰。...

TChIP-Seq：细胞类型特异性表观基因组分析

本文介绍了一种在活化的人类CD4+淋巴细胞上进行转座酶可及染色质测序（ATAC-seq）的实验方案。通过引入一种新的裂解缓冲液，该方案经过优化，可将线粒体DNA读段的污染从50%降至3%。...

线粒体DNA污染低的原代人CD4+ T淋巴细胞ATAC-seq检测

在此，作者展示了MULTI-seq在表型分析及后续配对的单细胞RNA测序（scRNA-seq）和单细胞ATAC测序（scATAC-seq）中的应用价值，用于表征视网膜中的转录组和染色质可及性谱型。...

利用单细胞RNA测序和单细胞ATAC测序对视网膜基因表达与染色质可及性进行多重分析

ATAC-Seq 在癌症表观遗传学研究中的优化

我们介绍一种针对脂肪细胞的高通量测序转座酶可及染色质分析（ATAC-seq）方案，该方法专门利用携带核荧光标记的转基因报告小鼠分离的脂肪组织，通过细胞核分选实现。...

使用荧光激活细胞核分选技术对脂肪组织进行脂肪细胞特异性ATAC-Seq

本文介绍了一种细胞核制备的实验方案。在将心脏组织经显微解剖和酶解离为单个细胞后，祖细胞被冷冻保存，随后分离出纯度高且具有活性的细胞，用于单核RNA测序以及基于高通量测序的单核转座酶可及性染色质分析。...

从小鼠心脏前体细胞中分离细胞核用于单细胞分辨率下的表观基因组和基因表达谱分析

本文概述了一种从小鼠骨髓中分离中性粒细胞并构建ATAC-seq文库的实验方案，旨在确保中性粒细胞的高存活率和高质量文库的制备。文章提供了骨髓细胞制备、免疫磁珠分选及文库构建的详细步骤，为中性粒细胞研究领域的新手研究人员提供了有价值的参考指南。...

小鼠骨髓来源中性粒细胞的ATAC-Seq文库制备

本文介绍了一种快速简便的ATAC-seq实验方案，仅需30 µL线虫沉淀，即可应用于秀丽隐杆线虫（Caenorhabditis...

完整 Caenorhabditis elegans L4 幼虫中的染色质可及性分析

本文介绍一种相对快速且简便的方法，用于绘制哺乳动物全基因组复制时间图谱，涵盖从细胞分离到测序结果基础分析的全过程。按照本方案操作后，将获得一份代表性复制程序的基因组图谱。...

通过DNA含量测定进行哺乳动物全基因组复制时间的确定

了解ATAC-seq高通量测序技术，用于识别人类T淋巴细胞中的染色质可及性区域。该方法通过转座酶反应和计算分析，揭示基因组调控元件的位置，为表观基因组学研究提供高效工具。

通过ATAC-Seq技术绘制原代人T淋巴细胞全基因组染色质可及性图谱

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