2017年10月16日
本文描述了一种以甘露聚糖为例,通过凝胶电泳(PACE)进行多糖结构分析的实验方案。
本实验的总体目标是表征植物细胞壁多糖。该方法有助于我们回答植物细胞壁生物学领域中的关键问题,包括葡甘露聚糖的结构与含量。该技术的主要优势在于无需特殊培训或昂贵设备。
通常,初次使用该方法的研究人员在凝胶结果的解读方面会遇到困难,因此包含并理解文中所述的所有对照至关重要。酒精不溶性残渣(AIR)需按照文本方案中的描述,从收获的植物材料中预先制备。取六毫克 AIR 置于 15 毫升离心管中,并加入水,使其最终浓度为每毫升含两毫克 AIR。
涡旋以获得均匀的悬浮液。将500微克分装至微量离心管中。在30°C下使用真空离心机干燥分装样品,过夜。
用一摩尔氢氧化钠在室温下处理 AIR,包括用于无酶对照的一份等分试样,处理一小时。一小时后,向每根试管中加入 200 微升水和 20 微升一摩尔盐酸,以中和氢氧化钠。取一微升溶液点在 pH 试纸指示条上,检测 pH 是否约为 6 至 7。
向每根试管中加入50微升1摩尔的乙酸铵缓冲液(pH 6.0),并加水至总体积为500微升。开始此操作时,向AIR等分试样和缓冲液中加入预定量的甘露聚糖酶。同时设置适当的阴性对照以及阳性对照。
涡旋混匀,然后短暂离心,使反应混合物聚集在管底。在37摄氏度下轻轻振荡孵育过夜。次日,于95摄氏度孵育20分钟以终止反应。
以最大速度离心10分钟。保留上清液,并将每个沉淀物重新悬浮于250 µL水中。再次离心,并保留上清液。
合并两份上清液,并在30摄氏度下用真空离心机干燥约三小时。在进行衍生化操作前,按照文本方案中的描述配制所需的试剂。将0.2摩尔的ANTS储备液加热至60摄氏度,以彻底溶解其中的固体。
向每个样品中加入5 µL ANTS、5 µL 2-吡啶硼烷和10 µL 衍生化缓冲液。短暂离心以收集至管底,充分涡旋混匀,然后再短暂离心一次。将样品在37 °C避光条件下孵育过夜。
次日,在30摄氏度下使用真空离心浓缩仪干燥样品,约两小时。将每个样品重悬于寡糖标准品和100微升3摩尔尿素中。避光保存于-20摄氏度,直至使用时取出。
凝胶灌注设备的组装取决于具体品牌。本演示中所用设备中,一块凝胶相当于50毫升。在50毫升离心管中,混合20.2毫升水、5毫升10x PACE缓冲液、24.6毫升40%丙烯酰胺/双丙烯酰胺、200微升APS以及20微升TEMED。
轻轻倒置以混匀,注意避免引入气泡。使用血清学移液管或其他大容量移液管将分离胶倒入玻璃板中,至距离玻璃板顶部约四厘米处。小心地在凝胶上层覆盖异丙醇。
让凝胶聚合20至30分钟。倒去上层液体。用吸水纸吸干残留的多余液体。
接下来,制备浓缩胶。在15毫升离心管中,加入6.8毫升水、1毫升10× PACE缓冲液、2.8毫升丙烯酰胺/双丙烯酰胺、80微升APS和8微升TEMED,颠倒混匀后,覆盖于已聚合的分离胶上方。
轻轻插入梳子,避免梳齿下方滞留气泡。待凝胶聚合后,用湿润的纸巾包裹,再用塑料膜包好,于4°C保存备用。为便于追踪加样顺序,并在拔出梳子后识别加样孔位置,可使用永久性记号笔在玻璃板上标记加样孔的位置。
取下梳子。用一倍浓度的 PACE 缓冲液填充孔。使用 10 微升微量注射器,向孔中加入 2 微升的标准品和样品。
避免使用最外侧的泳道,因为这些泳道通常电泳效果较差,且样品之间应留出一个空泳道。组装好电泳装置的上层室,将凝胶放入含有1× PACE缓冲液的预冷电泳槽中,并用1× PACE缓冲液充满上层室。
接通电源,以 200 伏电压电泳 30 分钟。30 分钟后,将电压升至 1,000 伏,持续运行 1 小时 40 分钟。电泳过程中需避光保护凝胶。
首先用湿润的无尘布擦拭凝胶成像系统,确保其无灰尘。从 PACE 电泳槽中取出凝胶,在凝胶仍位于玻璃板之间时快速观察,以确定染料前沿是否仍在凝胶上。使用楔形工具打开凝胶,当凝胶仍附着在一块玻璃板上时,若染料前沿仍在凝胶上,则使用披萨切刀切除浓缩胶以及凝胶底部。
在透射仪表面加入约五毫升水,然后将凝胶直接转移至透射仪上。使用软件将滤光片设置为 UV 605,并打开长波紫外透射仪。在不同曝光时间下拍摄多张图像,每次拍摄之间务必关闭紫外光,以避免荧光降解。
确保至少有两张图像中没有饱和条带。将文件保存为高分辨率的 TIFF 图像。下图显示了一个典型的PACE细胞壁甘露聚糖含量测定的凝胶结果。
泳道一、二和三分别显示了浓度为5、10和50皮摩尔的市售寡糖分子量标记物。泳道四显示了魔芋葡甘露聚糖经甘露聚糖酶消化的结果,该泳道作为酶消化及在酶和缓冲盐存在下衍生化反应的阳性对照。泳道五显示了野生型拟南芥茎的PACE指纹图谱。
第6泳道显示了缺乏主要茎部甘露聚糖合酶的拟南芥植株茎部的PACE指纹图谱。与野生型相比,甘露聚糖含量极少,这由所有甘露聚糖酶衍生的寡糖条带强度降低可见。第10泳道显示了含有半乳葡甘露聚糖的松木的PACE指纹图谱,其释放的寡糖图谱明显不同于拟南芥。
第7、8、9和11泳道为不同的阴性对照,显示出由星号标记的非特异性条带,这些条带应在分析中排除。观看本视频后,您应能够充分理解如何利用PACE技术分析甘露聚糖的结构。一旦掌握,该技术可应用于其他多糖的研究,只需更换不同的糖苷水解酶即可。
除了拟南芥外,我们还成功地将该技术应用于许多其他植物物种,以及其他非植物物种,如酵母甘露聚糖。
本文介绍了一种利用凝胶电泳(PACE)对多糖进行结构分析的实验方案,重点针对甘露聚糖。该方法旨在加深对植物细胞壁多糖及其特性的理解。
对甘露聚糖等植物细胞壁多糖进行结构表征,有助于阐明酶与底物相互作用的机制,从而在农用化学品和生物基材料研发中支持靶点验证。PACE 方法提供了一种门槛低、可重复的定量寡糖指纹图谱生成方法,有利于酶工程研发流程中的检测方法开发和先导化合物筛选。该方法依赖于明确的糖基水解酶和荧光检测,可在需要对多糖修饰具有预测可信度的早期发现工作中实现可扩展、跨功能的应用。
PACE 方法适用于从靶点结合到先导化合物优化的发现连续过程,特别适用于需要对碳水化合物活性酶进行功能验证或对多糖生物合成进行调控的工作流程。