2018年1月28日
该方法通过将凝胶浸泡在SYBR Green I/氮蓝四唑溶液中,然后暴露于阳光或蓝光光源下,实现对凝胶中DNA的选择性染色和定量。该过程可产生可见的沉淀物,且几乎不需要任何设备,非常适合野外使用。
DNA染色方案包含三个基本步骤。第一步是将凝胶放入SYBR Green I和硝基蓝四氮唑(即NBT)的溶液中。如果是聚丙烯酰胺凝胶,则需搅拌25分钟;如果是琼脂糖凝胶,则需搅拌1小时。
最后一步是将凝胶暴露于蓝光光源下,例如蓝色LED灯或阳光。在此步骤中,会出现一些沉淀条带。这些条带与DNA浓度直接相关,随后可使用办公扫描仪对凝胶进行数字化,以定量分析DNA。
对于聚丙烯酰胺凝胶,需制备非变性聚丙烯酰胺凝胶。随后将样品加入凝胶,并开始电泳过程。同时配制SYBR Green I稀释至1.2X的工作液以及20毫摩尔的NBT溶液。
将凝胶放入塑料容器中,加入16.75 mil的稀释SYBR Green I染料和325 mil的20毫摩尔NBT溶液。然后用Parafilm和铝箔覆盖容器,在60 rpm条件下搅拌25分钟。最后去除铝箔和Parafilm,将凝胶暴露于阳光或蓝光光源下。
对于条带定量和标准曲线,将凝胶放入办公扫描仪中,然后使用图像分析软件分析图像。最后绘制归一化信号相对于浓度的图。制备琼脂糖凝胶。
将含有氨苄青霉素抗性基因的质粒加入到孔中,然后将凝胶切成两部分,每部分使用不同的染料进行染色。随后切下质粒条带,并通过化学转化方法将其转入含有氨苄青霉素的培养基中的感受态细胞。使用1×TAE缓冲液制备1%琼脂糖凝胶,每孔加入约4微升质粒,浓度约为每微升100纳克。
然后在电泳槽中以100伏电压运行凝胶1小时。将凝胶的一半用SYBR Green I和NBT法染色,另一半用SYBR Green I UV法染色。对于琼脂糖凝胶,SYBR Green I NBT法使用浓度为1.2X的SYBR Green I和2毫摩尔的NBT进行。
将凝胶放入塑料容器中,加入适量溶液以完全覆盖凝胶,并将搅拌时间延长至一小时。对于琼脂糖凝胶,通常采用SYBR Green I染色法,即用1X SYBR Green I溶液覆盖凝胶,搅拌一小时。随后将凝胶置于紫外透射仪上照射两分钟,以观察条带。
凝胶染色后,用解剖刀切下质粒条带,并使用商业化的提取试剂盒提取质粒。将DNA浓度调整至每微升9.1纳克,用于转化化学感受态的大肠杆菌XL 10。最后,计数菌落。
计算菌落形成单位。将结果绘制成图,并比较SYBR Green I NBT与SYBR Green I UV所得结果。在DNA所在位置出现紫色甲臜沉淀。
实验中加载了DNA标准品以绘制校准曲线,在1,500个碱基对处的检测限为192皮克。使用琼脂糖凝胶可通过市售试剂盒回收样品,且不会干扰提取过程。采用蓝光LED进行样品回收时,部分回收产物的质量优于使用SYBR Green I染料配合透射仪的方法。
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该方法利用SYBR Green I/氮蓝四唑溶液实现对凝胶中DNA的选择性染色和定量。该过程所需设备极少,适用于野外应用。
这种DNA染色方法无需特殊设备即可直接观察和定量核酸,有助于在资源有限的条件下快速进行靶标验证。通过消除对紫外透射仪的依赖,该方法降低了早期发现工作流程中的安全风险和操作复杂性。该方法利用染料信号与DNA浓度之间可重复的关联性,提高了预测的可信度,有助于在先导化合物筛选流程中做出可行或终止的决策。
该方法适用于从核酸提取到功能检测验证的发现流程,尤其适用于设备获取受限或需要快速迭代的场景。